شنبه 1 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 11، شماره 3 - ( 2-1392 )
جلد 11 شماره 3 صفحات 0-195 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Golshan Iranpour F, Rezazadeh Valojerdi M. The epididymal sperm viability, motility and DNA integrity in dead mice maintained at 4-6oC. IJRM 2013; 11 (3) :195-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-399-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-399-fa.html
گلشن ایرانپور فرهاد، رضازاده ولوجردی مجتبی. زنده ماندن، حرکت و سلامت DNA اسپرم ناحیه اپیدیدیم موش مرده نگهداری شده در حرارت oC4-6. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1392; 11 (3) :195-0
1- گروه زیست پزشکی، بخش علوم تشریح، دانشگاه علوم پزشکی اصفهان، اصفهان، ایران ، fgolshaniranpour@yahoo.com
2- بخش جنین شناسی، مرکز رویان، تهران، ایران
2- بخش جنین شناسی، مرکز رویان، تهران، ایران
چکیده: (2183 مشاهده)
مقدمه: وقتی که یک حیوان نر میمیرد، اسپرم ها دربدن حیوان دچار دژنرسانس خواهند شد. به دلیل ساختار منحصربفرد کروماتین در اسپرم، ممکن است این دژنرسانس با دیگر سلولها متفاوت باشد. به هرحال تحقیقی وجود ندارد که بطور مستقیم سلامت DNA اسپرم را با نگهداری جسد حیوان در یخچال بررسی کند.
هدف: هدف از این مطالعه، بررسی زنده ماندن، حرکت توتال و سلامت DNA سلول های اسپرم پس از مرگ جانور است.
مواد و روشها: در این مطالعه تجربی، 24 موش نر از نژاد سفید سوئیسی با ایجاد در رفتگی گردنی کشته شدند و پس از آن تا مدت 12 روز در یخچال (دمای 4 تا 6 درجه سانتیگراد) نگهداری گردیدند. در روزهای صفر (بلافاصله پس از مرگ بعنوان گروه کنترل)، 1، 2، 3، 5، 7، 10 و 12 پس از مرگ، ناحیه اپیدیدیم این موش ها برداشته شده و در محیط کشت Ham’s F10 فشرده شدند. درصد اسپرم هایی که زنده، متحرک و دارای DNA دو رشته ای در هسته خود بودند، اندازه گیری شدند. زنده ماندن و سلامت DNA اسپرم ها به ترتیب بوسیله رنگ آمیزی های ائوزین -نیگروزین و آکریدین اورانج مورد بررسی قرار گرفت.
نتایج: نتایج بدست آمده از این مطالعه نشان داد که زنده ماندن و تحرک توتال سلولهای اسپرم بطور معنی داری در طول 12 روز پس از مرگ کاهش می یابد (0/001>p). بر خلاف زنده بودن و تحرک ، سلامت DNA در این مدت تغییرات معنی داری را نشان نداد (حتی 12 روز پس از مرگ).
نتیجهگیری: این مطالعه پیشنهاد می کند که DNA اسپرم حتی 12 روز پس از مرگ تغییری نمی یابد.
هدف: هدف از این مطالعه، بررسی زنده ماندن، حرکت توتال و سلامت DNA سلول های اسپرم پس از مرگ جانور است.
مواد و روشها: در این مطالعه تجربی، 24 موش نر از نژاد سفید سوئیسی با ایجاد در رفتگی گردنی کشته شدند و پس از آن تا مدت 12 روز در یخچال (دمای 4 تا 6 درجه سانتیگراد) نگهداری گردیدند. در روزهای صفر (بلافاصله پس از مرگ بعنوان گروه کنترل)، 1، 2، 3، 5، 7، 10 و 12 پس از مرگ، ناحیه اپیدیدیم این موش ها برداشته شده و در محیط کشت Ham’s F10 فشرده شدند. درصد اسپرم هایی که زنده، متحرک و دارای DNA دو رشته ای در هسته خود بودند، اندازه گیری شدند. زنده ماندن و سلامت DNA اسپرم ها به ترتیب بوسیله رنگ آمیزی های ائوزین -نیگروزین و آکریدین اورانج مورد بررسی قرار گرفت.
نتایج: نتایج بدست آمده از این مطالعه نشان داد که زنده ماندن و تحرک توتال سلولهای اسپرم بطور معنی داری در طول 12 روز پس از مرگ کاهش می یابد (0/001>p). بر خلاف زنده بودن و تحرک ، سلامت DNA در این مدت تغییرات معنی داری را نشان نداد (حتی 12 روز پس از مرگ).
نتیجهگیری: این مطالعه پیشنهاد می کند که DNA اسپرم حتی 12 روز پس از مرگ تغییری نمی یابد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Christian N, Songsasen S, Leibo SP. Presence of motile sperm in mice 24 hours postmortem. Theriogenology 1993; 39: 201. [DOI:10.1016/0093-691X(93)90056-B]
2. Songsasen N, Tong J, Leibo SP. Birth of live mice derived by in vitro fertilization with spermatozoa retrieved up to twenty-four hours after death. J Exp Zoology 1998; 280: 189-196.
https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-010X(19980201)280:2<189::AID-JEZ10>3.0.CO;2-H [DOI:10.1002/(SICI)1097-010X(19980201)280:23.0.CO;2-H]
3. An TZ, Wadas S, Edashige K, Sakurai T, Kasaei M. Viable spermatozoa can be recovered from refrigerated mice up to 7 days after death. Cryobiology 1999; 38: 27-34. [DOI:10.1006/cryo.1998.2141]
4. Kishikawa H, Tateno H, Yanagimachi R. Fertility of mouse spermatozoa retrieved from cadavers and maintained at 4 degree C. J Reprod Fertil 1999; 116: 2127-222.
5. Kaneko T, Nakagata N. Relation between storage temperature and fertilizing ability of freeze-dried mouse spermatozoa. Comp Med 2005; 55: 140-144.
6. Ward MA, Kaneko T, Kusakabe H, Biggers JD, Whittingham DG, Yanagimachi R. Long-term preservation of mouse spermatozoa after freeze-drying and freezing without cryoprotection. Biol Reprod 2003; 69: 2100-2108. [DOI:10.1095/biolreprod.103.020529]
7. Ben K, Hamilton MS, Alexander NJ. Vasectomy-induced autoimmunity: Immunol 1988; 13: 73-84.
8. Mdhluli MC, van der Horst. The effect of oleanolic acid on sperm motion characteristics and fertility of male Wistar rats. Lab Anim 2002; 36: 432-437. [DOI:10.1258/002367702320389107]
9. Eliasson R. Supravital staining of human spermatozoa. Fertil Steril 1977; 28: 1257. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)42927-4]
10. Tejada RI, Mitchell JC, Norman A, Marik JJ, Friedman S. A test for the practical evaluation of male fertility by acridine orange (AO) fluroscence. Fertil Steril 1984; 42: 87-91. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)47963-X]
11. Varghese AC, Bragias FM, Mukhopadhyay D, Kundu S, Pal M, Bhattacharyya AK. Human sperm DNA integrity in normal and abnormal semen samples and its correlation with sever Sperm characteristics. Andrologia 2009; 41: 207-215. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2009.00917.x]
12. Hoshi K, Katayose H, Yanagid K, Kimura Y, Sato A. The relationship between acridine orange fluorescence of sperm nuclei and the fertilizing ability of human sperm. Fertil Steril 1996; 66: 634-639. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)58581-1]
13. Nichi M, Goovaerts IGF, Cortada CNM, Barnabe VH, De Clercq JBP, Bols PEJ. Roles of lipid proxidation and cytoplasm droplets on invitro fertilization capacity of sperm collected from bovine epididymides stored at 4 and 34 degree C. Theriogenology 2007; 67: 334-340. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2006.08.002]
14. Kaneko T, Fukumoto K, Haruguchi Y, Kondo T, Machida H, Koga H, et al. Fertilization of C5713L/6 mouse sperm collected from cauda epididymides after preservation or transportation at 4 degree C using laser-microdissected oocytes. Cryobiology 2009; 59: 59-62. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2009.04.006]
15. Fan ZQ, Li XW, Liu Y, Meng QG, Wang YP, Hou YP, et al. Piezo-assisted in vitro fertilization of mouse oocytes with spermatozoa retrieved from epididymides stored at 4 degree C. J Reprod Dev 2008; 54: 107-112. [DOI:10.1262/jrd.19118]
16. Ganan N, Gomendio M, Roldan ERS. Effect of storage of domestic cat (Felis Catus) epididymides at 5 degree C on sperm quality and cryopreservation. Theriogenology 2009; 72: 1268-1277. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2009.07.023]
17. Soler AJ, Perez-Guzman MD, Gard JJ. Storage of red deer epididymides for four days at 5 degrees C: effects on sperm motility, viability and morphological integrity. J Exp Zoology A Com Exp Biol 2003; 1: 295.
18. Kikuchi K, Nagai T, Kashiwazaki N, Ikeda H, Noguchi J, Shimada A, et al. Cryopreservation and ensuing in vitro fertilization ability of boar spermatozoa from epididymides stored at 4 degree C. Theriogenology 1998; 50: 615-623. [DOI:10.1016/S0093-691X(98)00166-6]
19. Kaabi M, Paz P, Alvarez M, Arel E, Boixo JC, Rouissi H, et al. Effect of handling conditions on quality of ram spermatozoa recovered post-mortem. Theriogenology 2003; 15; 60: 1249-1259.
20. Ward WS, Coffey DS. DNA packaging and organization in mammalian spermatozoa: comparison with somatic cells. Biol Reprod 1991; 44: 569-574. [DOI:10.1095/biolreprod44.4.569]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
