شنبه 1 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 11، شماره 7 - ( 7-1392 )
جلد 11 شماره 7 صفحات 0-537 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Monsefi M, Fereydouni B, Rohani L, Talaei T. Mesenchymal stem cells repair germinal cells of seminiferous tubules of sterile rats. IJRM 2013; 11 (7) :537-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-442-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-442-fa.html
منصفی ملیحه الزمان، فریدونی بنت الهدی، روحانی لیلی، طلایی طاهره. سلول های بنیادی مزانشیمی درموش های صحرایی نر عقیم سلول های زایای لوله های سمینفروس را ترمیم می کنند . International Journal of Reproductive BioMedicine. 1392; 11 (7) :537-0
1- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران ، lrz420@126.com
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
3- دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز
4- گروه آناتومی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
3- دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز
4- گروه آناتومی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
چکیده: (2590 مشاهده)
مقدمه: سلولهای بنیادی مزانشیمی سلولهایی تمایز نیافته بوده که قادر به تقسیم شدن و تمایز به سایر انواع سلولها هستند. پیوند این سلولها به اعضاء مختلف بدن برای درمان بیماریهای متعددی بهکار برده میشود.
هدف: هدف تحقیق حاضر، بررسی درمان بیضه عقیم شده به وسیله سلولهای بنیادی مزانشیمی بود.
مواد و روشها: در این تحقیق تجربی، سلولهای بنیادی مزانشیمی جهت پیوند از مغز استخوان موشهای صحرایی نژاد ویستار استخراج شدند. همچنین برای مهار اسپرماتوژنز، موشهای دریافتکننده پیوند mg/kg 40 بوسولفان را دریافت نمودند. سلولهای بنیادی مزانشیمی نشاندار شده با BrdU به درون بیضه چپ تزریق و برای فهم بهبود عقیمی از مطالعات مورفومتری و ایمینوهیستوشیمی استفاده شد.
نتایج: تعداد سلولهای اسپرماتوگونیوم (1/57±25/38)، اسپرماتوسیت اولیه (1/62±55/41) و اسپرم106×(1/30±4/95) در حیوانات تیمار شده با بوسولفان در مقایسه با گروه کنترل [به ترتیب (1/78±33/35، 2/00± 64/44) و 106×(1/82±10/50)] ازکاهش معناداری برخوردار بود اما سلول درمانی به اسپرماتوژنز این حیوانات کمک مؤثری نمود [به ترتیب (1/99±32/78، 2/01± 63/59) و اسپرم 106×(1/33±9/81)]. سلولهای بنیادی مزانشیمی نشانهگذاری شده با BrdU در لولههای سمینیفروس بیضههای عقیم شده به اسپرماتوگونیوم، اسپرم و نیز سلولهای بینابینی متمایز شدند.
نتیجهگیری: بیضه موشهای صحرایی عقیم شده سلولهای بنیادی مزانشیمی پیوند شده را قبول کردند و سلولهای بنیادی مزانشیمی پیوند شده در لولههای سمینفروس به سلولهای ژرمینال متمایز گردیدند.
هدف: هدف تحقیق حاضر، بررسی درمان بیضه عقیم شده به وسیله سلولهای بنیادی مزانشیمی بود.
مواد و روشها: در این تحقیق تجربی، سلولهای بنیادی مزانشیمی جهت پیوند از مغز استخوان موشهای صحرایی نژاد ویستار استخراج شدند. همچنین برای مهار اسپرماتوژنز، موشهای دریافتکننده پیوند mg/kg 40 بوسولفان را دریافت نمودند. سلولهای بنیادی مزانشیمی نشاندار شده با BrdU به درون بیضه چپ تزریق و برای فهم بهبود عقیمی از مطالعات مورفومتری و ایمینوهیستوشیمی استفاده شد.
نتایج: تعداد سلولهای اسپرماتوگونیوم (1/57±25/38)، اسپرماتوسیت اولیه (1/62±55/41) و اسپرم106×(1/30±4/95) در حیوانات تیمار شده با بوسولفان در مقایسه با گروه کنترل [به ترتیب (1/78±33/35، 2/00± 64/44) و 106×(1/82±10/50)] ازکاهش معناداری برخوردار بود اما سلول درمانی به اسپرماتوژنز این حیوانات کمک مؤثری نمود [به ترتیب (1/99±32/78، 2/01± 63/59) و اسپرم 106×(1/33±9/81)]. سلولهای بنیادی مزانشیمی نشانهگذاری شده با BrdU در لولههای سمینیفروس بیضههای عقیم شده به اسپرماتوگونیوم، اسپرم و نیز سلولهای بینابینی متمایز شدند.
نتیجهگیری: بیضه موشهای صحرایی عقیم شده سلولهای بنیادی مزانشیمی پیوند شده را قبول کردند و سلولهای بنیادی مزانشیمی پیوند شده در لولههای سمینفروس به سلولهای ژرمینال متمایز گردیدند.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Junqueira L. Basic Histology. 12th Ed. MC Grow Hill, USA: 2010. Peruquetti RL, Taboga SR, Azeredo-Oliveira MTV. Morphological changes of mammalian nucleoli during spermatogenesis and their possible role in the chromatoid body assembling. Hindawi Publishing Corporation: ISRN Cell Biol; 2012. Available at http: //www.hindawi.com/isrn/cell.biology/2012/829854/.
2. Dominici M, Le Blanc K, Mueller I, Slaper-Cortenbach I, Marini FC, Krause DS, et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytother 2006; 8: 315-317. [DOI:10.1080/14653240600855905]
3. Norbert Pa, Christoph VS. Tissue Engineering: From Lab to Clinic. Springer, USA: 2012.
4. Zhang Y, Khan D, Delling J, Tobiasch E. Mechanisms Underlying the Osteo- and Adipo-Differentiation of Human Mesenchymal Stem Cells. Sci World J 2012; 2012:793823. [DOI:10.1100/2012/793823]
5. Murphy J, Fink D, Hunsiker E, Barry F. Stem cell therapy in a caprine model of osteoarthritis. Arthrit Rheum 2003; 48: 3464-3474. [DOI:10.1002/art.11365]
6. Jung YL, Chang HJ, Jin AJ, Seong MK, Chung HR, Yun H, et al. Therapeutic effects of human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells after intrathecal administration by lumbar puncture in a rat model of cerebral ischemia. Stem Cell Res Ther 2011; 2: 38-42. [DOI:10.1186/scrt79]
7. Miranda B, Sushil S, Matthew H, Roger S, Charles SC, Jarek A, et al. Autologous bone marrow mononuclear cells enhance recovery after acute ischemic stroke in young and middle-aged rats. J Cereb Blood Flow Metab 2010; 30: 140-149. [DOI:10.1038/jcbfm.2009.198]
8. Melanie K, Vandana K, Thomas GH, John MC, Brenda R, Richard AG. Stem Cell-Derived Extracellular Matrix Enables Survival and Multilineage Differentiation within Superporous Hydrogels. Biomacromol 2012; 13: 963-973. [DOI:10.1021/bm300332w]
9. Choi YJ, Ok DW, Kwon DN, Chung JI, Kim HC, et al. Murine male germ cell apoptosis induced by busulfan treatment correleates with loss of c-kitexpression in a Fas/FasL-and P53-independent manner. FEBS Lett 2004; 575: 41-51. [DOI:10.1016/j.febslet.2004.08.034]
10. Bancroft JD, Stevens A. Theory and practical of histology techniques. New York: Churchill Living stone: 1991.
11. Olukole SG, Obayemi TE. Histomorphometry of the testes and epididymis in the domesticated adult African great cane rat (Thryonomys swinderianus). Int J Morphol 2010; 28: 1251-1254. [DOI:10.4067/S0717-95022010000400042]
12. Seed J, Chapin RE, Clegg ED, Dostal LA, Foote RH, Hurtt E. Methods for assessing sperm motility, morphology and counts in the rat, rabbit & dog: a consensus report. ILSI Risk Science Institute Expert Working Group on Sperm Evaluation. Reprod Toxicol 1996;10: 237-244. [DOI:10.1016/0890-6238(96)00028-7]
13. Da Silveira RC, Leite MN, Reporedo MM, De Almeida RN. Evaluation of long-term exposure to Mikania glomerata (Sprengel) extract on male Wistar rats'reproductive organs, sperm production and testosterone level. J Contracep 2003; 67: 327-331. [DOI:10.1016/S0010-7824(02)00523-1]
14. Honaramooz A, Behboodi E, Hausler CL, Blash S, Ayres S, et al. Depletion of endogenous germ cells in male pigs and goats in preparation for germ cell transplantation. J Androl 2007; 26: 698-705. [DOI:10.2164/jandrol.05032]
15. Caplan AI. Adult mesenchymal stem cells for tissue engineering versus regenerative medicine. J Cell Physiol 2007; 213: 341-347. [DOI:10.1002/jcp.21200]
16. Mangi AA, Noiseux N, Kong D, He H, Rezvani M, Ingwall JS, et al. Mesenchymal stem cells modified with Akt prevent remodeling and restore performance of infarcted hearts. Nat Med 2003; 10: 10. [DOI:10.1038/nm912]
17. Taylor DA, Atkins BZ, Hungspreugs P, Jones TR, Reedy MC, Hutcheson KA, et al. Regenerating functional myocardium: improved performance after skeletal myoblast transplantation. Nat Med 1998; 4: 929-933. [DOI:10.1038/nm0898-929]
18. Caplan AI, Dennis JE. Mesenchymal stem cells as trophic mediators. J Cell Biochem 2006; 98: 1076-1084. [DOI:10.1002/jcb.20886]
19. McLaren A. Germ and somatic cell lineages in the developing gonad. Mol Cell Endocrinol 2000; 163: 3-9. [DOI:10.1016/S0303-7207(99)00234-8]
20. Gilbert S. Developmental biology. 8th Ed, USA: Sinauer Associates Inc: 2010.
21. Nayernia K, Lee JH, Drusenheimer N, Nolte J, Wulf G, Dressel R, et al. Derivation of male germ cells from bone marrow stem cells. Lab Invest 2006; 86: 654-663. [DOI:10.1038/labinvest.3700429]
22. Yazawa T, Mizutani T, Yamada K, Kawata H, Sekiguchi T, Yoshino M, et al. Differentiation of adult stem cells derived from bone marrow stroma into Leydig or adrenocortical cells. Endocrinology 2006; 147: 4104-4111. [DOI:10.1210/en.2006-0162]
23. Akbarzadeh Najar R, Jedi-Tehrani M, Sadeghi MR, Zarnani AH, Salehkhou Sh, Hoseinzadeh F, et al. Spermatogonial Stem Cell Transplantation in Mice. Cell J 2008; 65: 1-10.
24. Easley CA, Phillips BT, McGuire MM, Barringer JM, Valli H, Hermann BP, et al. Direct differentiation of human pluripotent stem cells into haploid spermatogenic cells. Cell Rep 2012; 2: 440-446. [DOI:10.1016/j.celrep.2012.07.015]
25. Panula S, Medrano JV, Kee K, Bergström R, Nguyen HN, Byers B, et al. Human germ cell differentiation from fetal- and adult-derived induced pluripotent stem cells. Hum Mol Genet 2011; 20: 752-762. [DOI:10.1093/hmg/ddq520]
26. Brinster RL, Avarbock MR. Germ Line transmission of donor haplotype following spermatogonial transplantation. Proc Natl Acad Sci USA 1994; 91: 11303-11307. [DOI:10.1073/pnas.91.24.11303]
27. Haddad S, Carvalho TL, Anselmo-Franci JA, Petenusci SO, Favaretto AL. Ultrasound stimulation of rat testes damaged by busulfan. Ultrasound Med Biol 1997; 23: 1421-1425. [DOI:10.1016/S0301-5629(97)00185-3]
28. Lue Y, Erkkila KY, Liu P, Ma K, Wang C, Hikim AS, Swerdloff R. Fate of bone marrow stem cells transplanted in to the testis potential implication for men with testicular failure. Am J Pathol 2007; 170: 899-908. [DOI:10.2353/ajpath.2007.060543]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
