دوره 13، شماره 5 - ( 4-1394 )                   جلد 13 شماره 5 صفحات 296-291 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Bakhtiary Z, Shahrooz R, Ahmadi A, Zarei L. Protective effects of ethyl pyruvate on sperm quality in cyclophosphamide treated mice. IJRM. 2015; 13 (5) :291-296
URL: http://ijrm.ssu.ac.ir/article-1-648-fa.html
بختیاری زهرا، شهروز رسول، احمدی عباس، زارعی لیلا. اثرات محافظتی اتیل پیروات روی کیفیت اسپرم موش های تحت درمان با سیکلوفسفامید. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1394; 13 (5) :296-291

URL: http://ijrm.ssu.ac.ir/article-1-648-fa.html


1- بخش بافت شناسی و جنین شناسی مقایسه ای، دانشکده دامپزشکی دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران ، sara_bakhtiari1@yahoo.com
2- بخش بافت شناسی و جنین شناسی مقایسه ای، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
3- مرکز تحقیقات سالید تومور، دانشگاه علوم پزشکی ارومیه، ارومیه، ایران
چکیده:   (1852 مشاهده)
مقدمه: یکی از موثرترین عوامل ایجاد کننده اختلال در روند اسپرماتوژنز استرس اکسیداتیو ناشی از شیمی درمانی با داروی سیکلوفسفامید (CP) بوده که از طریق دخالت در روند اسپرماتوژنز منجر به کاهش کیفیت اسپرم می شود.
هدف: این مطالعه جهت بررسی اثرات اتیل پیروات (EP) در کاهش عوارض جانبی ناشی از CP روی دستگاه تولید مثل طراحی گردید.
مواد و روش ها: در مطالعه حاضر تعداد 24 موش نر بالغ به طور تصادفی به سه گروه مساوی تقسیم شده و به مدت 35 روز تحت درمان قرار گرفتند. گروه کنترل سرم فیزیولوژی (0/1 میلی لیتر، روزانه به صورت تزریق داخل صفاقی) دریافت نمود. به گروه CP سیکلوفسفامید (15 میلی گرم به ازاء هرکیلو گرم وزن بدن هفته ای یکبار به صورت تزریق داخل صفاقی) تجویز شد، و گروه CP+EP علاوه بر CP اتیل پیروات (EP) را با دز 40 میلی گرم به ازاء هرکیلو گرم وزن بدن به طور روزانه به صورت تزریق داخل صفاقی دریافت نمود. در پایان دوره درمان موش ها به طریق جابجایی مهره های گردن آسان کشی شدند. سپس، اپی دیدیم در محیط مایع لوله رحمی انسان (1 میلی لیتر) و CO2 برای نیم ساعت در انکوباتور قرار داده شدند تا اسپرم ها شناور شوند. پس از آن، تعداد، تحرک، قابلیت زنده ماندن (از طریق رنگ آمیزی eosin-nigrosin)، شکستگی DNA (با رنگ آمیزی acridine orange)، بلوغ هسته و شکل ظاهری اسپرم (رنگ آمیزی aniline blue) مورد ارزیابی قرار گرفت.
نتایج: میانگین تعداد (1/28±15/87)، تحرک (2/75±35/77)، قابلیت زنده ماندن (40±3/03)، بلوغ هسته (36±2) و شکل ظاهری اسپرم (61/75±0/75) در گروه CP نسبت به گروه EP به طور معنی دار کاهش یافت، در حالی که EP موجب افزایش معنی دار این پارامترها گردید. همچنین درصد اسپرم های با DNA  آسیب دیده در گروهCP (41/75±3/75) در مقایسه با گروه کنترل (2±0/71) و گروه EP (22/5±4/13) به طور معنی دار افزایش نشان داد.
نتیجه گیری: نتایج این مطالعه اثرات بهبود بخشی EP را روی کیفیت اسپرم حیوانات درمان شده با CP نشان داد.
نوع مطالعه: Original Article |

فهرست منابع
1. El-Sayyad HI, Ismail MF, Shalaby FM, Abou-El-Magd RF, Gaur RL, Fernando A, et al. Histopathological effects of cisplatin, doxorubicin and 5-flurouracil (5-FU) on the liver of male albino rats. Int J Biol Sci 2009; 5: 466-473. [DOI:10.7150/ijbs.5.466]
2. Weigl NI, Cleton FJ, Osanto S. Free radicals and antioxidants in chemotherapy-induced toxicity. Cancer Treat Rev 1997; 23: 209-240. [DOI:10.1016/S0305-7372(97)90012-8]
3. Robair B, Hales BF. Mechanisms of action of cyclophosphamide as a male-mediated developmental toxicant. Adv Exp Med Biol 2003; 518: 169-180. [DOI:10.1007/978-1-4419-9190-4_14]
4. Brock N. Oxazaphosphorinecytostatics: past-present-future. Seventh Cain Memorial Award lecture. Cancer Res 1989; 49: 1-7.
5. Howell S, Shalet S. Gonadal damage from chemotherapy and radiotherapy. Endocrinol Metab Clin North Am 1998; 27: 927-943. [DOI:10.1016/S0889-8529(05)70048-7]
6. Ludeman SM, The chemistry of the metabolites of cyclophosphamide. Curr Pharm Des 1999; 5: 627-643.
7. Arumugam N, Silvakumar V, Thanislass J, Devaraj H. Effects of acrolein on rat liver antioxidant defense system. Indian J Exp Biol 1997; 35: 1373-1374.
8. Mythili Y, Sudharsan PT, Sulvakumar E, Varalakshmi P. Protective effect of DL-α-lipoic acid on cyclophosphamide induced oxidative cardiac injury. Chem Biol Interact 2004; 151: 13-19. [DOI:10.1016/j.cbi.2004.10.004]
9. Gonzalez-Flecha B, Reides C, Cutrin JC, Liesuy SF, Boveris A. Oxidative stress produced by suprahepatic occlusion and reperfusion. Hepatology 1993; 18: 881-889. [DOI:10.1002/hep.1840180421]
10. Sikka SC. Relative impact of oxidative stress on male reproductive function. Curr Med Chem 2001; 8: 851-862. [DOI:10.2174/0929867013373039]
11. Qureshi MS, Pennington JH, Goldsmith HJ, Cox PE. Cyclophosphamide therapy and sterility. Lancet 1972; 2: 1290-1291. [DOI:10.1016/S0140-6736(72)92657-8]
12. Chapman RM. Gonadal injury resulting from chemotherapy. Am J Ind Med 1983; 4: 149-161. [DOI:10.1002/ajim.1983.4.1-2.149]
13. Vernet P, Aitken RJ, Drevet JR. Antioxidant strategies in the epididymis. Mol Cell Endocrinol 2004; 216: 31-39. [DOI:10.1016/j.mce.2003.10.069]
14. Murata M, Suzuki T, Midorikawa K, Oikawa S, Kawanishi S. Oxidative DNA damage induced by a hydroperoxide derivative of cyclophosphamide. Free Radic Biol Med 2004; 37: 793-802. [DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2004.05.009]
15. Greco E, Romano S, Iacobelli M, Ferrero S, Baroni E, Minasi MG. ICSI in cases of sperm DNA damage: beneficial effect of oral antioxidant treatment. Hum Reprod 2005; 20: 2590-2594. [DOI:10.1093/humrep/dei091]
16. Hughes CM, Lewis SE, McKelvey-Martin VJ, Thompson W. The effects of antioxidant supplementation during Percoll preparation on human sperm DNA integrity. Hum Reprod 1998; 13: 1240-1247. [DOI:10.1093/humrep/13.5.1240]
17. Rezvanfar MA, Sadrkhanlou RA, Ahmadi A, Shojaei-Sadee H, A Mohammadirad, Salehnia A, et al. Protection of cyclophosphamide-induced toxicity in reproductive tract histology, sperm characteristics, and DNA damage by an herbal source; evidence for role of free-radical toxic stress. Hum Exp Toxicol 2008; 27: 901. [DOI:10.1177/0960327108102046]
18. ShalizarJalali A, Hasanzadeh SH, Malekinejad H. Achillea millefolium inflorescence aqueous extract ameliorates cyclophosphamide-induced toxicity in rat testis: stereological evidences. Chinese J Natural Med 2012; 10: 247-254. [DOI:10.3724/SP.J.1009.2012.00247]
19. Wang X, Perez E, Liu R, Yan LJ, Mallet RT, Yang SH. Pyruvate protects mitochondria from oxidative stress in human neuroblastoma SK-N-SH cells. Brain Res 2007; 1132: 1-9. [DOI:10.1016/j.brainres.2006.11.032]
20. Jagtap JC, Chandele A, Chopde BA, Shastry P. Sodium pyruvate protects against H(2)O(2) mediated apoptosis in human neuroblastoma cell line-SK-NMC. J Chem Neuroanat 2003; 26: 109-118. [DOI:10.1016/S0891-0618(03)00037-1]
21. Hinoi E, Takarada T, Tsuchihashi Y, Fujimori S, Moriguchi N, Wang L, et al. A molecular mechanism of pyruvate protection against cytotoxicity of reactive oxygen species in osteoblasts. Mol Pharmacol 2006; 70: 925-935. [DOI:10.1124/mol.106.024398]
22. Suffoletto BP, Salcido DD, Logue ES, Caprio TW, Menegazzi JJ. Ethyl pyruvate enhances intra-resuscitation hemodynamics in prolonged ventricular fibrillation arrest. Resuscitation 2009; 80: 1411-1416. [DOI:10.1016/j.resuscitation.2009.08.014]
23. Johansson AS, Palmblad J. Ethyl pyruvate modulates adhesive and secretory reactions in human lung epithelial cells. Life Sci 2009; 84: 805-809. [DOI:10.1016/j.lfs.2009.03.012]
24. Cai B, Brunner M, Wang H, Wang P, Deitch EA, Ulloa L. Ethyl pyruvate improves survival in awake hemorrhage. J Mol Med 2009; 87: 423-433. [DOI:10.1007/s00109-009-0441-8]
25. Atashfaraz E, Farokhi F, Najafi GH. Protective Effect of Ethyl Pyruvate on Epididymal Sperm Characteristics, Oxidative Stress and Testosterone Level in Methotrexate Treated Mice. J Reprod Infertil 2013; 14: 190-196.
26. Selvakumar E, Prahalathan C, Sudharsan PT, and Varalakshmi P. Protective effect of lipoic acid on cyclophosphamide-induced testicular toxicity. Clinia Chimica Acta 2006; 367: 114-119. [DOI:10.1016/j.cca.2005.11.034]
27. Yang R, Shaufl AL, Killeen ME, Fink MP. Ethyl pyruvate ameliorates liver injury secondary to severe acute pancreatitis. J Surg Res 2009; 153: 302-309. [DOI:10.1016/j.jss.2008.04.004]
28. Hedrich H. The Laboratory mouse: Handbook of experimental animals. 2nd Ed. New York, USA: Academic press 2006; 439-446.
29. Zobeiri F, Sadrkhanlou RA, Salami S, Mardani K, Ahmadi A. The effect of ciprofloxacin on sperm DNA damage, fertility potential and early embryonic development in NMRI mice. Veterinary Research Forum 2012; 3: 131-135.
30. Mehraban F, Jafari M, Akbartabar Toori M, Sadeghi H, Joodi B, Mostafazade M, et al. Effects of date palm pollen (Phoenix dactylifera L.) and Astragalus ovinus on sperm parameters and sex hormones in adult male rats. Iran J Reprod Med 2014; 12: 705-712.
31. Erenpreiss J, Bars J, Lipatnikova V, Erenpreisa J, Zalkalns J. Comprative study of cytochemical tests for sperm chromatin integrity. J Androl 2001; 22: 45-53.
32. Bakhtiary Z, Shahrooz R, Ahmadi A, Zarei L. Evaluation of antioxidant effects of crocin on sperm quality in cyclophosphamide treated adult mice. Veterinary Research Forum 2014; 5: 213-218.
33. Meistrich ML. Relationship between spermatogonial stem cell survival and testis function after cytotoxic therapy. Brit J Cancer 1986; 53: 89-101.
34. Kumar TR, Doreswamy K, Shrilatha B, Muralidhara. Oxidative stress associated DNA damage in testis of mice: induction of abnormal sperms and effects on fertility. Mutat Res 2002; 513: 103-111. [DOI:10.1016/S1383-5718(01)00300-X]
35. Koppers AJ, De luliis GN, Finnie JM, McLaughlin EA, Aiyken RJ. Significance of mitochondrial reactive oxygen species in the generation of oxidative stress in spermatozoa. J Clin Endocrinol Metab 2008; 93: 3199-3207. [DOI:10.1210/jc.2007-2616]
36. Das UB, Mallick M, Debnath JM, Ghosh D. Protective effect of ascorbic acid on cyclophosphamide- induced testicular gametogenic and androgenic disorders in male rats. Asian J Androl 2002; 4: 201-207.
37. Ghosh D, Das UB, Misro M. Protective role of alpha-tocopherol- succinate (provitamin-E) in cyclophosphamide induced testicular gametogenic and steroidogenic disorders: a correlative approach to oxidative stress. Free Radic Res 2002; 36: 1209-1218. [DOI:10.1080/1071576021000016472]
38. Manda K, Bhatia AL. Prophylactic action of melatonin against cyclophosphamide-induced oxidative stress in mice. Cell Biol Toxicol 2003; 19: 367-372. [DOI:10.1023/B:CBTO.0000013342.17370.16]
39. Iwasaki A, Gagnon C. Formation of oxygen reactive species in spermatozoa of infertile patients. Fertil Steril 1992; 57: 409-416. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)54855-9]
40. Twigg J, Irvine DS, Aitken RJ. Oxidative damage to DNA in human spermatozoa does not preclude pronucleus formation at intra cytoplasmic sperm injection. Hum Reprod 1998; 13: 1864-1871. [DOI:10.1093/humrep/13.7.1864]
41. Duru NK, Moshedi M, Oehninger S. Effects of hydrogen peroxide on DNA and plasma membrane integrity of human spermatozoa. Fertil Steril 2000; 74: 1200-1207. [DOI:10.1016/S0015-0282(00)01591-0]
42. Lee J, Kwon W, Jo Y,Suh G, Youn Y. Protective effects of ethyl pyruvate treatment on paraquat-intoxicated rats. Hum Exp Toxicol 2008; 27: 49-54. [DOI:10.1177/0960327108088976]
43. Wang Q, Ding Q, Zhou Y, Gou X, Hou L, Chen S, et al. Ethyl pyruvate attenuates spinal cord ischemic injury with a wide therapeutic window through inhibiting high-mobility group box 1 release in rabbits. Anesthesiology 2009; 110: 1279-1286. [DOI:10.1097/ALN.0b013e3181a160d6]

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به International Journal of Reproductive BioMedicine می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2022 CC BY-NC 4.0 | International Journal of Reproductive BioMedicine

Designed & Developed by : Yektaweb