جمعه 7 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 14، شماره 10 - ( 7-1395 )
جلد 14 شماره 10 صفحات 636-629 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Nazanin S, Mohammadghasemi F, Ebrahimi H, Rafati Sajedi H, Chatrnour G. Ovarian and uterine alterations following forced swimming: An immunohistochemical study. IJRM 2016; 14 (10) :629-636
URL: http://ijrm.ir/article-1-698-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-698-fa.html
سیدسعادت سیده نازنین، محمدقاسمی فهیمه، ابراهیمی حنان، رفعتی ساجدی هانیه، چترنور گلایول. تغییرات تخمدان و رحم به دنبال شنای تحمیلی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1395; 14 (10) :629-636
1- مرکز تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم پزشکی گیلان، رشت، ایران
2- گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی گیلان، رشت، ایران ، parsahistolab@gmail.com
2- گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی گیلان، رشت، ایران ، parsahistolab@gmail.com
چکیده: (4697 مشاهده)
مقدمه: ورزش فیزیکی هم در انسان و هم در حیوانات به عنوان یک تحریک استرس زا شناخته شده و منجر به اختلالات تولید مثل می شود
هدف: هدف این مطالعه ارزیابی اثر شنای تحمیلی بر تغییرات تخمدان و رحم موش است.
مواد و روشها: موش ها (تعداد=24) به سه گروه تقسیم شدند. A) کنترل B) شنا در آب oC10 و C) شنا در آب oC23. همه حیوانات روزانه 5 دقیقه؛ به مدت 5 روز متوالی در هفته برای مدت دو هفته شنا میکردند. سنجش الایزا برای ارزیابی سطوح سرمی استرادیول، FSH و تستوسترون مورد استفاده قرار گرفت. برای مطالعه سلولهای آپوپتوتیک یا بیان رسپتور استروژن در سلولهای پوششی رحم و تخمدان از روش ایمونوهیستو شیمی استفاده شد.
نتایج: شنا در هر دو گروه، سطوح سرمی FSH و استرادیول را بدون اثر معنیدار بر سطوح تستوسترون سرم و درصد آپوپتوز در بافت تخمدان و رحم را در مقایسه با کنترل کاهش داد (05/0p<). کاهش معنیدار در تعداد رسپتورهای استروژنی در رحم و تخمدان، فولیکولهای ثانویه و گراف در گروه های B و C در مقایسه با کنترل مشاهده شد (05/0p<). هر چند که تعداد فولیکولهای بدوی و اولیه به طور معنیدار در تخمدان کاهش نیافت.
نتیجه گیری: این مطالعه نشان میدهد شنای تحمیلی برای دو هفته سطوح سرمی FSH و استرادیول را بدون تأثیر بر آپوپتوز در تخمدان و یا رحم موشهای ماده کاهش میدهد و این امر در یک دوره زمانی طولانی ممکن است دارای اثر سو، بر باروری باشد.
هدف: هدف این مطالعه ارزیابی اثر شنای تحمیلی بر تغییرات تخمدان و رحم موش است.
مواد و روشها: موش ها (تعداد=24) به سه گروه تقسیم شدند. A) کنترل B) شنا در آب oC10 و C) شنا در آب oC23. همه حیوانات روزانه 5 دقیقه؛ به مدت 5 روز متوالی در هفته برای مدت دو هفته شنا میکردند. سنجش الایزا برای ارزیابی سطوح سرمی استرادیول، FSH و تستوسترون مورد استفاده قرار گرفت. برای مطالعه سلولهای آپوپتوتیک یا بیان رسپتور استروژن در سلولهای پوششی رحم و تخمدان از روش ایمونوهیستو شیمی استفاده شد.
نتایج: شنا در هر دو گروه، سطوح سرمی FSH و استرادیول را بدون اثر معنیدار بر سطوح تستوسترون سرم و درصد آپوپتوز در بافت تخمدان و رحم را در مقایسه با کنترل کاهش داد (05/0p<). کاهش معنیدار در تعداد رسپتورهای استروژنی در رحم و تخمدان، فولیکولهای ثانویه و گراف در گروه های B و C در مقایسه با کنترل مشاهده شد (05/0p<). هر چند که تعداد فولیکولهای بدوی و اولیه به طور معنیدار در تخمدان کاهش نیافت.
نتیجه گیری: این مطالعه نشان میدهد شنای تحمیلی برای دو هفته سطوح سرمی FSH و استرادیول را بدون تأثیر بر آپوپتوز در تخمدان و یا رحم موشهای ماده کاهش میدهد و این امر در یک دوره زمانی طولانی ممکن است دارای اثر سو، بر باروری باشد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Contarteze R, Manchado F, Gobatto C, Mello M. Biomarkers of stress in rats exercised in swimming at intensities equal and superior to the maximal estable lactate phase. Revista Brasileira de Medicina do Esporte 2007; 13: 169-174. [DOI:10.1590/S1517-86922007000300008]
2. Warren M, Perlroth N. The effects of intense exercise on the female reproductive system. J Endocrinol 2001; 170: 3-11. [DOI:10.1677/joe.0.1700003]
3. Olive D. Exercise and fertility:an update. 60TCurr Opin Obstet Gynecol60T 2010; 22: 259-263. [DOI:10.1097/GCO.0b013e32833c7227]
4. Gudmundsdottir SL, Flanders WD, Augestad LB. Physical activity and fertility in women: the North-Trøndelag Health Study. Hum Reprod 2009; 24: 3196-3204. [DOI:10.1093/humrep/dep337]
5. Jana K, Dutta A, Chakraborty P, Manna I, Firdaus SB, Bandyopadhyay D, et al. Alpha-lipoic acid and N-acetylcysteine protects intensive swimming exercise-mediated germ-cell depletion, pro-oxidant generation, and alteration of steroidogenesis in rat testis. 53TMol Reprod Dev53T 2014; 81: 833-850. [DOI:10.1002/mrd.22354]
6. Constantin N, Warren M. Menstrual dysfunction in swimmers: a distinct entity. 60TJ Clin Endocrinol Metab60T 2013; 80: 2740-2744.
7. Mingoti GZ, Pereira RN, CM. M. Fertility of male adult rats submitted to forced swimming stress. 60TBraz J Med Biol Res60T 2003; 36: 677-681. [DOI:10.1590/S0100-879X2003000500016]
8. Walters. KA. Role of androgens in normal and pathological ovarian function. Reproduction 2015; 149: 193-218. [DOI:10.1530/REP-14-0517]
9. Yoshihiro J. Ono, Akiko Tanabe, Yoko Nakamura, Hikaru Yamamoto, Atsushi Hayashi, Tomohito Tanaka, et al. A Low-Testosterone State Associated with Endometrioma Leads to the Apoptosis of Granu-losa Cells. Plos One 2014; 9: e115618. [DOI:10.1371/journal.pone.0115618]
10. Nakao C, Ookawara T, Kizaki T, Oh-Ishi S, Miyazaki H, Haga S, et al. Effects of swimming training on three superoxide dismutase isoenzymes in mouse tissues. J Appl Physiol 2000; 88: 649-656. [DOI:10.1152/jappl.2000.88.2.649]
11. Nagaraja HS, Jeganathan PS. Forced swimming stress-induced changes in thephysiological and biochemical parameters inalbino rats. 60TIndian J Physiol Pharmacol60T 1999; 43: 53-59.
12. Seyed Saadat S, Mohammadghasemi F, Khajeh Jahromi S, Homafar M, Haghiri M. Melatonin protects uterus and oviduct exposed to nicotine in mice. I60Tnterdiscip Toxicol60T 2014; 7: 41-46. [DOI:10.2478/intox-2014-0007]
13. Sarani SA, Ghaffari-Novin M, Warren MA, Dockery P, ID. C. Morphological evidence for the 'implantation window' in human luminal endometrium. Hum Reprod 1999; 14: 3101-3106. [DOI:10.1093/humrep/14.12.3101]
14. Mohammadghasemi F, Khajeh Jahromi S, Hajizadeh H, Homafar MA, N. S. The Protective Effects of Exogenous Melatonin on Nicotine-induced Changes in Mouse Ovarian Follicles. J Reprod Infertil 2012; 13: 143-150.
15. Caligioni C. Assessing reproductive status/stages in mice. Curr Protoc Neurosci 2009; 41: 1-11 [DOI:10.1002/0471142301.nsa04is48]
16. Qiu S, Wu C, Lin F, Chen L, Huang Z, Jiang Z. Exercise Training Improved Insulin Sensitivity and Ovarian Morphology in Rats with Polycystic Ovary Syndrome. Horm Metab Res 2009; 41: 880-885. [DOI:10.1055/s-0029-1234119]
17. Chand D, Lovejoy DA. Stress and reproduction: controversies and challenges. 53TGen Comp Endocrinol53T 2011; 171: 253-257. [DOI:10.1016/j.ygcen.2011.02.022]
18. Jurkowski J, Jones NL, Walker C, Younglai E, Sutton JR. Ovarian hormonal responses to exercise. 53TJ Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol53T 1978; 44:109-114. [DOI:10.1152/jappl.1978.44.1.109]
19. Tipton M, Bradford C. Moving in extreme environments: open water swimming in cold and warm water. 60TExtrem Physiol Med60T 2014; 3: 1-11. [DOI:10.1186/2046-7648-3-12]
20. Ganong W. The renin-angiotensin system and the central nervous system. Fed Proc 1977; 36: 1771-1775.
21. Axelson J. Forced swimming alters vaginal estrous cycles, body composition, and steroid levels without disrupting lordosis behavior or fertility in rats. Physiol Behav 1987; 41: 471-479. [DOI:10.1016/0031-9384(87)90083-7]
22. Dorrington J, Bendell JJ, Khan S. Interactions between FSH, estradiol-17β and transforming growth factor-β regulate growth and differentiation in the rat gonad. 53TJ Steroid Biochem Mol Biol53T 1993; 44: 441-447. [DOI:10.1016/0960-0760(93)90248-U]
23. Hansen P. Effects of heat stress on mammalian reproduction. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci 2009; 364: 3341-3350. [DOI:10.1098/rstb.2009.0131]
24. Cooke PS, Buchanan DL, Young P, Setiawan T, Brody J, Korach K, et al. Stromal estrogen receptors mediate mitogenic effects of estradiol on uterine epithelium. 60TProc Natl Acad Sci U S A60T 1997; 94: 6535-6540. [DOI:10.1073/pnas.94.12.6535]
25. Gleicher N, Weghofer A, Barad D. The role of androgens in follicle maturation and ovulation induction: friend or foe of infertility treatment? Reprod Biol Endocrinol 2011; 17: 116. [DOI:10.1186/1477-7827-9-116]
26. Wang H, Eriksson H, Sahlin L. Estrogen receptors alpha and beta in the female reproductive tract of the rat during the estrous cycle. 53TBiol Reprod53T 2000; 63: 1331-1340.
27. Faraone-Mennella MR, Marini M, Ferone A, Cacace O, Liguoro A, Margonato V, et al. Physical exercise activates the poly(ADP-ribosyl)ation system in rat testes. J Biol Regul Homeost Agents 2010; 24: 325-333.
28. Mooren F, Lechtermann A, Völker K. Exercise-induced apoptosis of lymphocytes depends on training status. Med Sci Sports Exerc 2004; 36: 1476-1483. [DOI:10.1249/01.MSS.0000139897.34521.E9]
29. Jin JJ, Ko IG, Kim SE, Shin MS, Kim SH, Jee YS. Swimming exercise ameliorates multiple sclerosis-induced impairment of short-term memory by suppressing apoptosis in the hippocampus of rats. J Exerc Rehabil 2014; 10: 69-74. [DOI:10.12965/jer.140103]
30. Peters EM, Van Eden M, Tyler N, Ramautar A, Chuturgoon AA. Prolonged exercise does not cause lymphocyte DNA damage or increased apoptosis in well-trained endurance athletes. Eur J Appl Physiol 2006; 98: 124-131. [DOI:10.1007/s00421-006-0227-4]
31. Ozawa M, Tabayashi D, Latief T, Shimizu T, Oshima I, Kanai Y. Alterations in follicular dynamics and steroidogenic abilities induced by heat stress during follicular recruitment in goats. Reproduction 2005; 129: 621-630. [DOI:10.1530/rep.1.00456]
32. De Rensisa F, Scaramuzzib RJ. Heat stress and seasonal effects on reproduction in the dairy cow-a review. Theriogenology 2003; 60: 1139-1151. [DOI:10.1016/S0093-691X(03)00126-2]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
