سه شنبه 4 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 14، شماره 2 - ( 11-1394 )
جلد 14 شماره 2 صفحات 140-133 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Rafiee F, Nejati V, Heidari R, Ashraf H. Protective effect of methanolic extract of Berberis integerrima Bunge. root on carbon tetrachloride-induced testicular injury in Wistar rats. IJRM 2016; 14 (2) :133-140
URL: http://ijrm.ir/article-1-719-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-719-fa.html
رفیعی فرشته، نجاتی وحید، حیدری رضا، اشرف حسین. اثر محافظتی عصاره متانولی ریشه زرشک زرافشانی در برابر آسیب بیضه ای ناشی از تتراکلریدکربن در موش های صحرایی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1394; 14 (2) :133-140
فرشته رفیعی* 
1، وحید نجاتی2 ، رضا حیدری2 ، حسین اشرف2
1، وحید نجاتی2 ، رضا حیدری2 ، حسین اشرف2
1- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران ، Fr.rafiee@gmail.com
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
چکیده: (2808 مشاهده)
مقدمه: اثر حفاظت بافتی ترکیبات دارای خواص آنتی اکسیدانی به اثبات رسیده است. آلکالوئیدهای موجود در گیاه زرشک از آنتی اکسیدان ها به شمار میروند.
هدف: با توجه به اثرات حفاظتی گیاه زرشک در بافتهای مختلف، در این مطالعه اثر حفاظتی ریشه گیاه زرشک زرافشانی در برابر آسیبهای بیضهای القا شده توسط تتراکلرید کربن در موشهای صحرایی مورد بررسی قرار گرفت.
مواد و روشها: 40 موش نر بالغ به طور تصادفی در 5 گروه تقسیم بندی شدند: 1: کنترل نرمال، 2: شم: دریافت تتراکلریدکربن رقیق شده در روغن زیتون (50%) به میزان 1 میلی لیتر بر کیلوگرم وزن بدن، به صورت درون صفاقی دو بار در هفته و به مدت 4 هفته، 3 و 4: گروه های شم + عصاره زرشک (250 و 500 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن) به مدت 28 روز، و 5: گروه شم + سیلیمارین (50 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن) به مدت 28 روز. پس از 28 روز سطح تستوسترون سرم، وزن مطلق بیضه، فعالیت کاتالاز، سطح مالون دی آلدهید و پارامترهای هیستولوژیکی مورد بررسی قرار گرفتند.
نتایج: در موشهای تحت تیمار با عصاره زرشک یا سیلیمارین سطوح وزن مطلق بیضه و تستوسترون، قطر لولههای سمنی فروس، ضخامت اپی تلیوم، ضریب تمایز لولهای، ضریب اسپرمیوژنز و فعالیت کاتالاز در مقایسه با گروه شم به طور معنی دار افزایش (001/0˂p) و ضخامت بافت بینابینی و سطح مالون دی آلدهید در مقایسه با گروه شم به طور معنیدار کاهش یافت (001/0˂p). اثر عصاره زرشک در دوز 500 میلیگرم بر کیلوگرم وزن بدن بیشتر از داروی استاندارد سیلی مارین بود.
نتیجه گیری: با توجه به نتایج حاضر پیشنهاد شده است که اثرات محافظتی زرشک احتمالا به دلیل اثرات آنتی اکسیدانی ترکیبات فعال زیستی آن می باشد.
هدف: با توجه به اثرات حفاظتی گیاه زرشک در بافتهای مختلف، در این مطالعه اثر حفاظتی ریشه گیاه زرشک زرافشانی در برابر آسیبهای بیضهای القا شده توسط تتراکلرید کربن در موشهای صحرایی مورد بررسی قرار گرفت.
مواد و روشها: 40 موش نر بالغ به طور تصادفی در 5 گروه تقسیم بندی شدند: 1: کنترل نرمال، 2: شم: دریافت تتراکلریدکربن رقیق شده در روغن زیتون (50%) به میزان 1 میلی لیتر بر کیلوگرم وزن بدن، به صورت درون صفاقی دو بار در هفته و به مدت 4 هفته، 3 و 4: گروه های شم + عصاره زرشک (250 و 500 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن) به مدت 28 روز، و 5: گروه شم + سیلیمارین (50 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن) به مدت 28 روز. پس از 28 روز سطح تستوسترون سرم، وزن مطلق بیضه، فعالیت کاتالاز، سطح مالون دی آلدهید و پارامترهای هیستولوژیکی مورد بررسی قرار گرفتند.
نتایج: در موشهای تحت تیمار با عصاره زرشک یا سیلیمارین سطوح وزن مطلق بیضه و تستوسترون، قطر لولههای سمنی فروس، ضخامت اپی تلیوم، ضریب تمایز لولهای، ضریب اسپرمیوژنز و فعالیت کاتالاز در مقایسه با گروه شم به طور معنی دار افزایش (001/0˂p) و ضخامت بافت بینابینی و سطح مالون دی آلدهید در مقایسه با گروه شم به طور معنیدار کاهش یافت (001/0˂p). اثر عصاره زرشک در دوز 500 میلیگرم بر کیلوگرم وزن بدن بیشتر از داروی استاندارد سیلی مارین بود.
نتیجه گیری: با توجه به نتایج حاضر پیشنهاد شده است که اثرات محافظتی زرشک احتمالا به دلیل اثرات آنتی اکسیدانی ترکیبات فعال زیستی آن می باشد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Khaki A, Fathiazad F, Nouri M, Khaki AA, Ghanbari Z, Ghanbari M, et al. Anti-oxidative Effects of Citro-flavonoids on Spermatogenesis in Rat. Afr J Pharm Pharmaco 2011; 5:721–725. [DOI:10.5897/AJPP11.277]
2. Abraham P, Wilfred G, Cathrine SP. Oxidative damage to lipids and proteins of the lungs, testis and kidney of rats during CCl4 intoxication. Clinical Acta 1999; 289:177–179. [DOI:10.1016/S0009-8981(99)00140-0]
3. Mahmoud SM, Moneim AAE. The Protective Effect of Pomegranate (Punica granatum) Juice against Carbon Tetrachloride-Induced Oxidative Stress in Brain Tissue of Adult Male Albino Rats. Life Sci 2013; 10:151-158.
4. Ganie SA, Haq E, Hamid A, Qurishi Y, Mahmood Z, Zargar BA, et al. Carbon tetrachloride induced kidney and lung tissue damages and antioxidant activities of the aqueous rhizome extract of Podophyllum hexandrum. BMC Complement Altern Med 2011; 11:1-10. [DOI:10.1186/1472-6882-11-17]
5. Parola M, Leonarduzzi G, Biasi F, Albano E, Biocca ME, Poli G, et al. Vitamin E dietary supplementation protects against carbon tetrachloride-induced chronic liver damage and cirrhosis. Hepatology 1992; 16:1014-1021. [DOI:10.1002/hep.1840160426]
6. Qian ZJ, Jung WK, Kim SK. Free radical scavenging activity of a novel antioxidative peptide purified from hydrolysate of bullfrog skin, Ran catesbeiana shaw. Bioresour Technol 2008; 99:1690-1698. [DOI:10.1016/j.biortech.2007.04.005]
7. Lobo V, Patil A, Phatak A, Chandra N. Free radicals, antioxidants and functional foods: Impact on human health. Pharmacogn Rev 2010; 4: 118-126. [DOI:10.4103/0973-7847.70902]
8. Arayne MS, Sultana N, Bahadur SS. The berberis story: Berberis vulgaris in therapeutics. Pak J Sci 2007; 20: 83-92.
9. Ivanovska N, Phlipov S. Study on the antiinflammatory action of Berberis vulgaris root extract, alkaloid fractions and pure alkaloid. Int J Ethnopharmacol 1999; 64: 161-166.
10. Yin I, Hu R, Chen M, Tang J, Li F, Yang Y, et al. Effects of Berberine on glucose metabolism in vitro. Metabolism 2002; 51: 1439-1443. [DOI:10.1053/meta.2002.34715]
11. Doggrell SA. Berberine-a novel approach to cholesterol lowering. Expert Opinion Investin Drugs 2005; 14: 683-685. [DOI:10.1517/13543784.14.5.683]
12. Roy A, Kumar Sahu R, Gupta R, Pandey P. Hepato protective activity of Berberis coriaceae on liver damage induced by ccl4 in rats. Pharmacology online 2011; 3: 838-842.
13. Majd A, Mehrabian S, Mostafai H, Rahmani H. Antioxidant and anticancer effect of aqueous extract of berberis integerrima. J Biol Sci 2008; 1:31-38.
14. Ashraf H, Heidari R, Nejati V. Antihyperglycemic and Antihyperlipidemic Effects of Fruit Aqueous Extract of Berberis integerrima Bge. in Streptozotocin-induced Diabetic Rats. Iran J Pharm Res 2014; 13: 1313-1318.
15. Ashraf H, Heidari R, Nejati V, Ilkhanipoo M. Preventive Effect of Berberis Integerrima on the Serum Levels of Glucose and Lipids in Streptozotocin (STZ)-Induced Diabetes in Rats. J Fasa Univ Med Sci 2012; 2: 148-155.
16. Ashraf H, Zare S. Preventive Effects of Aqueous Extract of Berberis integerrima Bge. Root on Liver Injury Induced by Diabetes Mellitus (Type 1) in Rats. Iran J Pharm Res 2015; 14: 335-343.
17. Ashraf H, Heidari R, Nejati V, Ilkhanipoor M. Aqueous extract of Berberis integerrima root improves renal dysfunction in streptozotocin induced diabetic rats. Avicenna J Phytomed 2013; 3: 82-90.Eidi A, Zarin Ghalam J, Rezazade Sh, Adeli R. Hepatoprotective effect of Berberis vulgaris L. extract on CCl4-induced toxicity in rats. Kowsar Med J 2011; 16: 169-173.
18. Eidi A, Zarin Ghalam J, Rezazade Sh, Adeli R. Hepatoprotective effect of Berberis vulgaris L. extract on CCl4-induced toxicity in rats. Kowsar Med J 2011; 16: 169-173.
19. OECD 2002. Acute oral toxicity. Acute oral toxic class method guideline 423 adopted 23.03.1996. In: Eleventh Addendum to the, OECD, guidelines for the testing of chemicals organization for economical co‐operation and development, Paris, June, 2000.
20. Abdel-Wahhab KGE, Khadrawy YA, Mannaa FAE. Aged garlic extract enhances paraoxonase 1 activity and suppress oxidative stress in CCl4 intoxicated rats. Comunicata Scientiae 2012; 3: 55-63.
21. Osman M, Ahmed M, Mahfouz S, Elaby S. Biochemical Studies on The Hepatoprotective Effects of Pomegranate and Guava Ethanol Extracts. N Y Sci J 2011; 4: 2741.
22. Dehkhargani SF, Malekinejad H, Shahrooz R, Sarkhanloo RA. Detrimental Effect of Atrazine on Testicular Tissue and Sperm quality: Implication for Oxidative stress and Hormonal Alterations. Iran J Toxicol 2011; 5: 426-435.
23. Gott L. A simple method for determination of serum catalase activity and revision of reference range. Clin Chim Acta 1991; 196: 143-151. [DOI:10.1016/0009-8981(91)90067-M]
24. Esterbauer H, Cheesman KH. Determination of aldehydic lipid peroxidation products: Malonaldehyde and 4-hydroxynonenal. Methods Enzymol 1990; 186: 407-421. [DOI:10.1016/0076-6879(90)86134-H]
25. Vendramini V, Sasso-Cerri E, Miraglia SM. Amifostine reduces the seminiferous epithelium damage in doxorubicin-treated prepubertal rats without improving the fertility status. Reprod Biol Endocrinol 2010; 8: 3. [DOI:10.1186/1477-7827-8-3]
26. Abdullah Nejad A, Goals A, Dabiri SH, Javadi AB. Effects of garlic juice on diabetes-induced testicular damage in rats. Iran J Endocrinol Metab 2009; 11: 443-453.
27. Malekinegad H, Mirzakhani N, Razi M, Cheraghi H, Alizadeh A, Dardmeh F. Protective effects of Melatonin and Glycyrrhiza glabra Extract on Ochratoxin A-Induced Detrimental impact on Testes in Mature Male Rats. Hum Exp Toxicol 2010; 29: 110-123.
28. Rezvanfar MA, Sadrkhanlou AR, Ahmadi A, Shojaei-Sadee H, Rezvanfar M, Mohammadirad A, et al.Protection of cyclophosphamide-induced toxicity in reproductive tract histology, sperm characteristic, and DNA damage by an herbal source; evidence for role of free radical toxic stress. Hum Exp Toxicol 2008; 27: 901-910. [DOI:10.1177/0960327108102046]
29. Danladi J, Ahmed SA, Akpulu SP, Owolagba GK, Iduh MU, Mairiga AA. Protective effect of cool extraction of Black Seed (Nigella Sativa) oil against CCl4-Induced oxidative damages in wistar rats testis.IOSR-J Pharm Bio Sci 2013; 5: 68-74.
30. Khan MR, Ahmed D. Protective effects of (Digera muricata L.) Mart. on testis against oxidative stress of carbon tetrachloride in rat. Food Chem Toxicol 2009; 47:1393-1399. [DOI:10.1016/j.fct.2009.03.020]
31. Wang T, Sun NL, Zhang WD, Li HL, Lu GC, Yuan BJ, et al. Protective effects of dehydrocavidine on carbon tetrachloride-induced acute hepatotoxicity in rats. J Ethnopharmacol 2008; 117: 300-308. [DOI:10.1016/j.jep.2008.02.010]
32. Curtis SJ, Mortiz M, Sondgrass PJ. Serum enzyme derived from liver cell fractions. The response of carbon tetrachloride intoxication in rats. Gastroentrology 1972; 62: 84-92.
33. Khan RA. Protective effects of Launaea procumbens on rat testis damage by CCl4. Lipids Health Dis 2012; 11:103. [DOI:10.1186/1476-511X-11-103]
34. Mohamed M, Sulaiman SA, Jaafar H, Salam Sirajudeen KN. Antioxidant Protective Effect of Honey in Cigarette Smoke-Induced Testicular Damage in Rats. Int J Mol Sci 2011; 12: 5508-5521. [DOI:10.3390/ijms12095508]
35. Shalizar Jalali A, Hassanzadeh SH, Malekinejad H. Chemoprotective effect of Crataegus monogyna aqueous extract against cyclophosphamide-induced reproductive toxicity. Vet Res Forum 2011; 2: 266–273.
36. Pashaeian N, Safavi SE, Gharamaleki NM. Study of the effect of ginseng on testicular function after immobilization stress in rat. Int J Biosci 2015; 6: 184-191. [DOI:10.12692/ijb/6.4.184-191]
37. Pradeep K, Mohan CVR, Gobianand K, Karthikeyan S. Silymarin modulates the oxidant–antioxidant imbalance during diethylnitrosamine induced oxidative stress in rats. Eur J Pharmacol 2007; 560: 110-116. [DOI:10.1016/j.ejphar.2006.12.023]
38. Szymonik-Lesiuk S, CzechowskA G, Stryjecka-Zimmer M, Słomka M, Madro A, Celiński k, et al. Catalase, superoxide dismutase, and glutathione peroxidase activities in various rat tissues after carbon tetrachloride intoxication. J Hepatobiliary Pancreat Surg 2003; 10: 309-331. [DOI:10.1007/s00534-002-0824-5]
39. Jeong TC. Pretreatment of male BALB/c mice B-iononepotentiates thioacetamide -induced hepatotoxicity. Toxicol Lett 1999; 105: 39-45. [DOI:10.1016/S0378-4274(98)00386-5]
40. Janbaz KH, Saeed S, Gilani AH. Protective effect of rutin on Paracetamol and CCl4- induced hepatotoxicity inrodents. Fitoterapia 2002; 73: 557-564. [DOI:10.1016/S0367-326X(02)00217-4]
41. Yousef MI, Salama AF. Propolis protection from reproductive toxicity caused by aluminium chloride in male rats. Food Chem Toxicol 2009; 47: 1168-1175. [DOI:10.1016/j.fct.2009.02.006]
42. Bruckner JV, Ramanathan R, Lee KM, Muralidhara S. Mechanisms of circadian rhythmicity of carbon tetrachloride hepatotoxicity. J Pharmacol Exp Ther 2002; 300: 273–281. [DOI:10.1124/jpet.300.1.273]
43. Chance B, Greenstein DS, Roughton RJW. The mechanism of catalase action. Steady-state analysis. Arch Biochem Biophys 1952; 37: 301-321. [DOI:10.1016/0003-9861(52)90194-X]
44. Stefanovic A, Stevuljevic JK, Spasic S, Stanojevic NB, Bujisic N. The influence of obesity on the oxidative stress status and the concentration of leptin in type 2 diabetes mellitus patients. Diabetes Res Clin Pract 2008; 79: 156-163. [DOI:10.1016/j.diabres.2007.07.019]
45. Predes FS, Monterio JC, Paula T, Dmatta P. Evalution of rat testes treated with arctium lappa 1: Morphometric study. Braz J Morphol Sci 2007; 24: 112-117.
46. Ashraf H, Heidari R, Nejati V, Ilkhanipoor M. Effects of aqueous extract of Berberis integrrima root on some physiological parameters in streptozotocin-induced diabetic rats. Iran J Pharm Res 2013; 12: 425-434.
47. Taheri S, Zarei A, Changizi Ashtiyani S, Rezaei A, Zaheiri S. Evaluation of the effects of hydroalcoholic extract of Berberis vulgaris root on the activity of liver enzymes in male hypercholesterolemic rats. Avicenna J Phytomed 2012; 2: 153-161.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
