پنجشنبه 6 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 16، شماره 2 - ( 11-1396 )
جلد 16 شماره 2 صفحات 92-83 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Ghobadi F, Rahmanifar F, Mehrabani D, Tamadon A, Dianatpour M, Zare S et al . Endometrial mesenchymal stem stromal cells in mature and immature sheep: An in vitro study. IJRM 2018; 16 (2) :83-92
URL: http://ijrm.ir/article-1-968-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-968-fa.html
قبادی فرناز، رحمانی فر فرهاد، مهربانی داود، تمدن امین، دیانت پور مهدی، زارع شاهرخ و همکاران.. سلول های بنیادی مزانشیمی استرومال اندومتریوم در گوسفند: مطالعه ای برون تنی کاربردی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1396; 16 (2) :83-92
فرناز قبادی1 
، فرهاد رحمانی فر2 ، داود مهربانی* 3، امین تمدن1 ، مهدی دیانت پور1 ، شاهرخ زارع1 ، ایمان رازقیان جهرمی4
، فرهاد رحمانی فر2 ، داود مهربانی* 3، امین تمدن1 ، مهدی دیانت پور1 ، شاهرخ زارع1 ، ایمان رازقیان جهرمی4
1- مرکز تحقیقات فن آوری سلول های بنیادی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
2- گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
3- مرکز تحقیقات فن آوری سلول های بنیادی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران ، mehrabad@sums.ac.ir
4- مرکز تحقیقات قلب و عروق، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
2- گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
3- مرکز تحقیقات فن آوری سلول های بنیادی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران ، mehrabad@sums.ac.ir
4- مرکز تحقیقات قلب و عروق، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
چکیده: (3424 مشاهده)
مقدمه: سلولهای بنیادی مزانشیمی استرومال اندومتریوم (EnMSC) برای عملکرد، ترمیم و بازسازی رحم حیاتی هستند.
هدف: این پژوهش روش جداسازیEnMSC ها را معرفی کرده و خصوصیات EnMSC ها را در میشهای بالغ و نابالغ مقایسه نموده است.
موارد و روشها: نمونههای بافت اندومتریوم از رحم 10 میش از کشتارگاه جمعآوری شد. سلولهای اندومتر رحم با استفاده از انکوباسیون سرما و سپس خرد کردن بافت و درمان با کلاژناز نوع I از بافت جدا شدند. سلولهای جدا شده در محیط کشت سلولی کشت داده شده و سلولهای چسبیده به فلاسکها به عنوان EnMSC ها جمعآوری و دوباره کشت داده شدند. برای شمارش سلولها، زمان دو برابر شدن جمعیت (PDT) اندازهگیری شد و 104×2/2 سلول در پاساژ 4 در پلیتهای کشت 24 چاهکی قرار داده شدند تا نمودارهای رشد سلولهای جداسازی شده مقایسه شود. واکنش زنجیرهای پلیمراز رونویسی معکوس (RT-PCR) برای شناسایی نشانگرهای CD34 و CD73 انجام شد. پتانسیل استخوانی شدن و چربی شدن سلولهای جدا سازی شده با استفاده از آزمون تمایز سلولی انجام شد.
نتایج: EnMSC ها به فلاسکها چسبیدند و شکل دوکی به خود گرفتند. بر اساس یافته های شمارش سلولی و نمودارهای رشد، EnMSC ها در میشهای نابالغ به طور معنی داری بیشتر از گوسفندان بالغ تکثیر شدند. PDT مربوط بهEnMSC ها در میشهای نابلغ در حدود 21 ساعت بود درحالیکه این زمان در گوسفندان بالغ 2 برابر بیشتر (45 ساعت) بود. آنالیزهای RT-PCR نشان داد کهEnMSC ها برای CD73 مثبت و برای CD34 منفی بودند. EnMSC ها به استئوبلاست و آدیپوسیت تمایز داده شدند.
نتیجهگیری: بر اساس خصوصیات سلولهای بنیادی مزانشیمی تایید شده در EnMSC ها، آنها میتوانند به عنوان نامزدی در سلول درمانی و پزشکی ترمیمی استفاده شوند.
هدف: این پژوهش روش جداسازیEnMSC ها را معرفی کرده و خصوصیات EnMSC ها را در میشهای بالغ و نابالغ مقایسه نموده است.
موارد و روشها: نمونههای بافت اندومتریوم از رحم 10 میش از کشتارگاه جمعآوری شد. سلولهای اندومتر رحم با استفاده از انکوباسیون سرما و سپس خرد کردن بافت و درمان با کلاژناز نوع I از بافت جدا شدند. سلولهای جدا شده در محیط کشت سلولی کشت داده شده و سلولهای چسبیده به فلاسکها به عنوان EnMSC ها جمعآوری و دوباره کشت داده شدند. برای شمارش سلولها، زمان دو برابر شدن جمعیت (PDT) اندازهگیری شد و 104×2/2 سلول در پاساژ 4 در پلیتهای کشت 24 چاهکی قرار داده شدند تا نمودارهای رشد سلولهای جداسازی شده مقایسه شود. واکنش زنجیرهای پلیمراز رونویسی معکوس (RT-PCR) برای شناسایی نشانگرهای CD34 و CD73 انجام شد. پتانسیل استخوانی شدن و چربی شدن سلولهای جدا سازی شده با استفاده از آزمون تمایز سلولی انجام شد.
نتایج: EnMSC ها به فلاسکها چسبیدند و شکل دوکی به خود گرفتند. بر اساس یافته های شمارش سلولی و نمودارهای رشد، EnMSC ها در میشهای نابالغ به طور معنی داری بیشتر از گوسفندان بالغ تکثیر شدند. PDT مربوط بهEnMSC ها در میشهای نابلغ در حدود 21 ساعت بود درحالیکه این زمان در گوسفندان بالغ 2 برابر بیشتر (45 ساعت) بود. آنالیزهای RT-PCR نشان داد کهEnMSC ها برای CD73 مثبت و برای CD34 منفی بودند. EnMSC ها به استئوبلاست و آدیپوسیت تمایز داده شدند.
نتیجهگیری: بر اساس خصوصیات سلولهای بنیادی مزانشیمی تایید شده در EnMSC ها، آنها میتوانند به عنوان نامزدی در سلول درمانی و پزشکی ترمیمی استفاده شوند.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Zhao J, Zhang Q, Wang Y, Li Y. Endometrial pattern, thickness and growth in predicting pregnancy outcome following 3319 IVF cycle. Reprod Biomed Online 2014; 29: 291-298. [DOI:10.1016/j.rbmo.2014.05.011]
2. Cabezas J, Lara E, Pacha P, Rojas D, Veraguas D, Saravia F, et al. The endometrium of cycling cows contains populations of putative mesenchymal progenitor cells. Reprod Domest Anim 2014; 49: 550-559. [DOI:10.1111/rda.12309]
3. Cervello I, Martinez-Conejero JA, Horcajadas JA, Pellicer A, Simon C. Identification, characterization and co-localization of label-retaining cell population in mouse endometrium with typical undifferentiated markers. Hum Reprod 2007; 22: 45-51. [DOI:10.1093/humrep/del332]
4. Chan RW, Gargett CE. Identification of label-retaining cells in mouse endometrium. Stem Cells 2006; 24: 1529-1538. [DOI:10.1634/stemcells.2005-0411]
5. Letouzey V, Tan KS, Deane JA, Ulrich D, Gurung S, Ong YR, et al. Isolation and characterisation of mesenchymal stem/stromal cells in the ovine endometrium. PLoS One 2015; 10: e0127531. [DOI:10.1371/journal.pone.0127531]
6. Mehrabani D, Hassanshahi MA, Tamadon A, Zare S, Keshavarz S, Rahmanifar F, et al. Adipose tissue-derived mesenchymal stem cells repair germinal cells of seminiferous tubules of busulfan-induced azoospermic rats. J Hum Reprod Sci 2015; 8: 103-110. [DOI:10.4103/0974-1208.158618]
7. Mehrabani D, Rahmanifar F, Mellinejad M, Tamadon A, Dianatpour M, Zare S, et al. Isolation, culture, characterization, and adipogenic differentiation of heifer endometrial mesenchymal stem cells. Comp Clin Pathol 2015; 24: 1159-1164. [DOI:10.1007/s00580-014-2053-0]
8. Murakami K, Bhandari H, Lucas ES, Takeda S, Gargett CE, Quenby S, et al. Deficiency in clonogenic endometrial mesenchymal stem cells in obese women with reproductive failure-a pilot study. PLoS One 2013; 8: e82582. [DOI:10.1371/journal.pone.0082582]
9. Sakr S, Naqvi H, Komm B, Taylor HS. Endometriosis impairs bone marrow-derived stem cell recruitment to the uterus whereas bazedoxifene treatment leads to endometriosis regression and improved uterine stem cell engraftment. Endocrinology 2014; 155: 1489-1497. [DOI:10.1210/en.2013-1977]
10. Gargett CE, Nguyen HPT, Ye L. Endometrial regeneration and endometrial stem/progenitor cells. Rev Endocr Metab Disord 2012; 13: 235-251. [DOI:10.1007/s11154-012-9221-9]
11. Li T, He H, Liu R, Wang SX, Pu DM. Isolation and identification of epithelial and stromal stem cells from eutopic endometrium of women with endometriosis. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2014; 178: 89-94. [DOI:10.1016/j.ejogrb.2014.04.001]
12. Santamaria X, Massasa EE, Feng Y, Wolff E, Taylor HS. Derivation of insulin producing cells from human endometrial stromal stem cells and use in the treatment of murine diabetes. Mol Ther 2011; 19: 2065-2071. [DOI:10.1038/mt.2011.173]
13. Ulrich D, Tan KS, Deane J, Schwab K, Cheong A, Rosamilia A, et al. Mesenchymal stem/stromal cells in post-menopausal endometrium. Hum Reprod 2014; 29: 1895-1905. [DOI:10.1093/humrep/deu159]
14. Wolff EF, Gao XB, Yao KV, Andrews ZB, Du H, Elsworth JD, et al. Endometrial stem cell transplantation restores dopamine production in a Parkinson's disease model. J Cell Mol Med 2011; 15: 747-755. [DOI:10.1111/j.1582-4934.2010.01068.x]
15. Liu T, Huang Y, Zhang J, Qin W, Chi H, Chen J, et al. Transplantation of human menstrual blood stem cells to treat premature ovarian failure in mouse model. Stem Cells Dev 2014; 23: 1548-1557. [DOI:10.1089/scd.2013.0371]
16. Duke CM, Taylor HS. Stem cells and the reproductive system: Historical perspective and future directions. Maturitas 2013; 76: 284-289. [DOI:10.1016/j.maturitas.2013.08.012]
17. Yang XY, Wang W, Li X. In vitro hepatic differentiation of human endometrial stromal stem cells. In Vitro Cell Dev Biol Anim 2014; 50: 162-170. [DOI:10.1007/s11626-013-9688-z]
18. Khademi F, Soleimani M, Verdi J, Tavangar SM, Sadroddiny E, Masumi M, et al. Human endometrial stem cells differentiation into functional hepatocyte-like cells. Cell Biol Int 2014; 38: 825-834. [DOI:10.1002/cbin.10278]
19. Ai J, Javidan AN, Mehrabani D. The possibility of differentiation of human endometrial stem cells into neural cells. Iran Red Crescent Med J 2010; 3: 328-331.
20. Asmani MN, Ai J, Amoabediny G, Noroozi A, Azami M, Ebrahimi-Barough S, et al. Three-dimensional culture of differentiated endometrial stromal cells to oligodendrocyte progenitor cells (OPCs) in fibrin hydrogel. Cell Biol Int 2013; 37: 1340-1349. [DOI:10.1002/cbin.10171]
21. Ai J, Mehrabani D. The potential of human endometrial stem cells for osteoblast differentiation. Iran Red Crescent Med J 2010; 12: 585-587.
22. Shoae-Hassani A, Sharif S, Seifalian AM, Mortazavi-Tabatabaei SA, Rezaie S, Verdi J. Endometrial stem cell differentiation into smooth muscle cell: a novel approach for bladder tissue engineering in women. BJU Int 2013; 112: 854-863. [DOI:10.1111/bju.12195]
23. Tabatabaei FS, Dastjerdi MV, Jazayeri M, Haghighipour N, Dastjerdie EV, Bordbar M. Comparison of osteogenic medium and uniaxial strain on differentiation of endometrial stem cells. Dent Res J 2013; 10: 190-196. [DOI:10.4103/1735-3327.113341]
24. Ai J, Mehrabani D. Are Endometrial stem cells novel tools against ischemic heart failure in women? a hypothesis. Iran Red Crescent Med J 2010; 12: 73-75.
25. Hosseinkhani M, Mehrabani D, Karimfar MH, Bakhtiyari S, Manafi A, Shirazi R. Tissue engineered scaffolds in regenerative medicine. World J Plast Surg 2014; 3: 3-7.
26. Crisan M, Yap S, Casteilla L, Chen CW, Corselli M, Park TS, et al. A perivascular origin for mesenchymal stem cells in multiple human organs. Cell Stem Cell 2008; 3: 301-313. [DOI:10.1016/j.stem.2008.07.003]
27. Dimitrov R, Timeva T, Kyurkchiev D, Stamenova M, Shterev A, Kostova P, et al. Characterization of clonogenic stromal cells isolated from human endometrium. Reproduction 2008; 135: 551-558. [DOI:10.1530/REP-07-0428]
28. Li L, Xie T. Stem cell niche: structure and function. Annu Rev Cell Dev Biol 2005; 21: 605-631. [DOI:10.1146/annurev.cellbio.21.012704.131525]
29. Chan RW, Schwab KE, Gargett CE. Clonogenicity of human endometrial epithelial and stromal cells. Biol Reprod 2004; 70: 1738-1750. [DOI:10.1095/biolreprod.103.024109]
30. Meng X, Ichim TE, Zhong J, Rogers A, Yin Z, Jackson J, et al. Endometrial regenerative cells: a novel stem cell population. J Transl Med 2007; 5: 57. [DOI:10.1186/1479-5876-5-57]
31. Pittenger MF, Mackay AM, Beck SC, Jaiswal RK, Douglas R, Mosca JD, et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science 1999; 284: 143-147. [DOI:10.1126/science.284.5411.143]
32. Schwab KE, Chan RW, Gargett CE. Putative stem cell activity of human endometrial epithelial and stromal cells during the menstrual cycle. Fertil Steril 2005; 84: 1124-1130. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2005.02.056]
33. Tawonsawatruk T, Spadaccino A, Murray IR, Peault B, Simpson HA. Growth kinetics of rat mesenchymal stem cells from 3 potential sources: bone marrow, periosteum and adipose tissue. J Med Assoc Thai 2012; 95 (Suppl): S189-197.
34. Eslaminejad MB, Vahabi S, Shariati M, Nazarian H. In vitro growth and characterization of stem cells from human dental pulp of deciduous versus permanent teeth. J Dent 2010; 7: 185-195.
35. Pauciullo A, Perucatti A, Cosenza G, Iannuzzi A, Incarnato D, Genualdo V, et al. Sequential cross-species chromosome painting among river buffalo, cattle, sheep and goat: a useful tool for chromosome abnormalities diagnosis within the family Bovidae. PLoS One 2014; 9: e110297. [DOI:10.1371/journal.pone.0110297]
36. Gargett CE, Schwab KE, Zillwood RM, Nguyen HP, Wu D. Isolation and culture of epithelial progenitors and mesenchymal stem cells from human endometrium. Biol Reprod 2009; 80: 1136-1145. [DOI:10.1095/biolreprod.108.075226]
37. Ghobadi F, Mehrabani D, Mehrabani G. Regenerative potential of endometrial stem cells: a mini review. World J Plast Surg 2015; 4: 3-8.
38. Mehrabani D, Mehrabani G, Zare S, Manafi A. Adipose-derived stem cells (ADSC) and aesthetic surgery: a mini review. World J Plast Surg 2013; 2: 65-70.
39. Niknamasl A, Ostad SN, Soleimani M, Azami M, Salmani MK, Lotfibakhshaiesh N, et al. A new approach for pancreatic tissue engineering: human endometrial stem cells encapsulated in fibrin gel can differentiate to pancreatic islet beta-cell. Cell Biol Int 2014; 38: 1174-1182. [DOI:10.1002/cbin.10314]
40. Maruyama T. Endometrial stem/progenitor cells. J Obstet Gynaecol Res 2014; 40: 2015-2022. [DOI:10.1111/jog.12501]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
