چهارشنبه 5 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 16، شماره 3 - ( 12-1396 )
جلد 16 شماره 3 صفحات 174-159 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Mesbah F, Bordbar H, Talaei Khozani T, Dehghani F, Mirkhani H. The non-preventive effects of human menopausal gonadotropins on ovarian tissues in Nandrolone decanoate-treated female rats: A histochemical and ultra-structural study. IJRM 2018; 16 (3) :159-174
URL: http://ijrm.ir/article-1-1027-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-1027-fa.html
مصباح فخرالدین، بردبار حسین، طلایی خوزانی طاهره، دهقانی فرزانه، میرخانی حسین. اثر غیر پیشگیرانه hMG بر بافت تخمدان در موش های صحرایی ماده تیمار شده با ناندرولون دکانوات: یک مطالعه هیستوشیمی و فراساختاری. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1396; 16 (3) :159-174
فخرالدین مصباح1 
، حسین بردبار* 2، طاهره طلایی خوزانی1 ، فرزانه دهقانی1 ، حسین میرخانی3
، حسین بردبار* 2، طاهره طلایی خوزانی1 ، فرزانه دهقانی1 ، حسین میرخانی3
1- گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
2- گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران ، bordbarh47@yahoo.com
3- گروه فارماکولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
2- گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران ، bordbarh47@yahoo.com
3- گروه فارماکولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
چکیده: (3635 مشاهده)
مقدمه: تکوین فولیکولهای تخمدان ممکن است تحت تأثیر سوء داروها قرار گیرد. ناندرلون دکانوات یکی از داروهای استروئیدی است که میتواند موجب آسیب مورفولوژی بافت و عمل تخمدان و در نتیجه نارسایی تولیدمثل گردد.
هدف: این مطالعه به منظور ارزیابی اثرات تجویز همزمان و غیرهمزمان hMG با ناندرلون دکانوات بر بافت تخمدان و سطح هورمونهای جنسی در موش صحرایی ماده بالغ طراحی شده است.
موارد و روشها: تعداد 40 موش صحرایی ماده بالغ از نژاد Sprague Dawley به طور تصادفی و مساوی به هشت گروه تقسیم گردید. پنج گروه آزمایش به ترتیب به میزان 3 و 10 میلیگرم به ازای یک کیلوگرم وزن بدن موش صحرایی داروی ناندرلون دکانوات به طور همزمان و غیرهمزمان با 10 واحد hMG و یا به تنهایی hMG دریافت کردند. دو گروه شاهد و گروه کنترل حلال ناندرلون دکانوات و hMG دریافت کردند. وزن و هورمونهای LH،FSH ، استروژن و پروژسترون موشهای صحرایی و وزن، حجم و ابعاد تخمدانها اندازهگیری شد. تخمدانها برای بررسی میزان آپوپتوز و مطالعه فراساختاری آماده گردید.
نتایج: حجم تخمدان و هورمونهای جنسی در گروههای آزمایش، کاهش داشت اما وزن و ابعاد تخمدان تغییری نیافت. میزان آپوپتوز در گروههای آزمایش به صورت زیر افزایش یافت: در گروه دوز پایین و بالای ناندرولون همراه با مصرف همزمان hMG، 18/70±48/80 و 14/20±65/20 در مقایسه با گروههای شاهد 1 ،17/80±33/20، و دوز پایین و بالای ناندرولون، در گروه غیرهمزمان، 17/20±55/80 و 14/30±75/20 در مقایسه با شاهد 2، 32/40±31/60 (0/01p˂). سلولهای فولیکولار و استروما در گروههای آزمایش به جز گروه hMG آسیب دیده بودند.
نتیجه گیری: تجویز ناندرولون باعث کاهش سطح سرمی LH، FSH، استروژن و پروژسترون و آسیب غیرقابلبرگشت و جبرانناپذیر به بافت تخمدان میگردد و hMG نمیتواند از تخریب فولیکولها جلوگیری نماید. این یک هشدار جدی برای زنانی است که ناندرولون مصرف میکنند.
هدف: این مطالعه به منظور ارزیابی اثرات تجویز همزمان و غیرهمزمان hMG با ناندرلون دکانوات بر بافت تخمدان و سطح هورمونهای جنسی در موش صحرایی ماده بالغ طراحی شده است.
موارد و روشها: تعداد 40 موش صحرایی ماده بالغ از نژاد Sprague Dawley به طور تصادفی و مساوی به هشت گروه تقسیم گردید. پنج گروه آزمایش به ترتیب به میزان 3 و 10 میلیگرم به ازای یک کیلوگرم وزن بدن موش صحرایی داروی ناندرلون دکانوات به طور همزمان و غیرهمزمان با 10 واحد hMG و یا به تنهایی hMG دریافت کردند. دو گروه شاهد و گروه کنترل حلال ناندرلون دکانوات و hMG دریافت کردند. وزن و هورمونهای LH،FSH ، استروژن و پروژسترون موشهای صحرایی و وزن، حجم و ابعاد تخمدانها اندازهگیری شد. تخمدانها برای بررسی میزان آپوپتوز و مطالعه فراساختاری آماده گردید.
نتایج: حجم تخمدان و هورمونهای جنسی در گروههای آزمایش، کاهش داشت اما وزن و ابعاد تخمدان تغییری نیافت. میزان آپوپتوز در گروههای آزمایش به صورت زیر افزایش یافت: در گروه دوز پایین و بالای ناندرولون همراه با مصرف همزمان hMG، 18/70±48/80 و 14/20±65/20 در مقایسه با گروههای شاهد 1 ،17/80±33/20، و دوز پایین و بالای ناندرولون، در گروه غیرهمزمان، 17/20±55/80 و 14/30±75/20 در مقایسه با شاهد 2، 32/40±31/60 (0/01p˂). سلولهای فولیکولار و استروما در گروههای آزمایش به جز گروه hMG آسیب دیده بودند.
نتیجه گیری: تجویز ناندرولون باعث کاهش سطح سرمی LH، FSH، استروژن و پروژسترون و آسیب غیرقابلبرگشت و جبرانناپذیر به بافت تخمدان میگردد و hMG نمیتواند از تخریب فولیکولها جلوگیری نماید. این یک هشدار جدی برای زنانی است که ناندرولون مصرف میکنند.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Chachuła A, Kranc W, Budna J, Bryja A, Ciesiólka S, Wojtanowicz-Markiewicz K, et al. The differentiation of mammalian ovarian granulosa cells – living in the shadow of cellular developmental capacity. J Biol Regul Homeost Agents 2016; 30: 627-634.
2. Palma GA, Arganaraz ME, Barrera AD, Rodler D, Adrian A´ Mutto N, et al. Biology and biotechnology of follicle development. Sci World J 2012; 2012: 938138. [DOI:10.1100/2012/938138]
3. Scaramuzzi RJ, Baird DT, Campbell BK, Driancourt MA, Dupont J, Fortune J, et al Regulation of folliculogenesis and the determination of ovulation rate in ruminants. Reprod Fertil Dev 2011; 23: 444-467. [DOI:10.1071/RD09161]
4. Cossigny DA, Findlay JK, Drummond AE. The effects of FSH and activin a on follicle development in vitro. Reproduction 2012; 143: 221-229. [DOI:10.1530/REP-11-0105]
5. Zhou J, Yaol W, Li Ch, Wu W, Li O, Liu H. Administration of follicle-stimulating hormone induces autophagy via up-regulation of HIF-1α in mouse granulosa cells. Cell Death Disease 2017; 8, 1-15. [DOI:10.1038/cddis.2017.371]
6. Baumgarten SC, Armouti M, Ko C, Stocco C. IGF1R Expression in Ovarian Granulosa Cells Is Essential for Steroidogenesis, Follicle Survival, and Fertility in Female Mice. Endocrinology 2017; 158: 2309-2318. [DOI:10.1210/en.2017-00146]
7. Sagoe D, Molde H, Andreassen CS, Torsheim T, Pallesen S. The global epidemiology of anabolic-androgenic steroid use: a meta-analysis and meta-regression analysis. Ann Epidemiol 2014; 24: 383-398. [DOI:10.1016/j.annepidem.2014.01.009]
8. Paul AK, Latif ZA, Iqbal S, Amin F, Shefin SM, Ashrafuzzaman SM. Androgen versus erythropoietin for the treatment of anaemia of pre-dialysis chronic kidney disease. Mymensingh Med J 2012; 21: 125-128.
9. Nieschlag E, Vorona E. Mechanisms in endocrinology: Medical consequences of doping with anabolic androgenic steroids: effects on reproductive functions. Eur J Endocrinol 2015; 173: 47-58. [DOI:10.1530/EJE-15-0080]
10. Kicman AT. Pharmacology of anabolic steroids. Br J Pharmacol 2008; 154: 502-521. [DOI:10.1038/bjp.2008.165]
11. Simão VA, Berloffa Belardin L, Araújo Leite GA, de Almeida Chuffa LG, Camargo IC. Effects of different doses of Nandrolonee decanoate on estrous cycle and ovarian tissue of rats after treatment and recovery periods. Int J Exp Pathol 2015; 96: 338-349. [DOI:10.1111/iep.12144]
12. Cherici Camargo IC, Barreiros de Souza R, de Fátima Paccola Mesquita S, Chuffa LG, Frei F. Ovarian histology and follicular score in female rats treated with Nandrolonee decanoate and submitted to physical effort. Acta Biol Hung 2009; 60: 253-261. [DOI:10.1556/ABiol.60.2009.3.2]
13. Karbalay-Doust S, Noorafshan A. Stereological estimation of ovarian oocyte volume, surface area and number: application on mice treated with Nandrolonee decanoate. Folia Histochem Cytobiol 2012; 50: 275-279. [DOI:10.5603/FHC.2012.0037]
14. Ezcurra D, Humaidan P. A review of luteinising hormone and human chorionic gonadotropin when used in assisted reproductive technology. Reprod Biol Endocrinol 2014; 12: 95. [DOI:10.1186/1477-7827-12-95]
15. Von Wolff M, Kollmann Z, Flück CE, Stute P, Marti U, Weiss B, et al. Gonadotrophin stimulation for in vitro fertilization significantly alters the hormone milieu in follicular fluid: a comparative study between natural cycle IVF and conventional IVF. Hum Reprod 2014; 29: 1049-1057. [DOI:10.1093/humrep/deu044]
16. Fabbri R, Vicenti R, Macciocca M, Pasquinelli G, Paradisi R, Battaglia C, et al. Good preservation of stromal cells and no apoptosis in human ovarian tissue after vitrification. Biomed Res Int 2014; 2014: 673537. [DOI:10.1155/2014/673537]
17. Mesbah F, Moslem M, Vojdani Z, Mirkhani H. Does metformin improve in vitro maturation and ultrastructure of oocytes retrieved from estradiol valerate polycystic ovary syndrome-induced rats. J Ovarian Res 2015; 8: 74. [DOI:10.1186/s13048-015-0203-x]
18. Oberlander JG, Porter DM, Penatti CA, Henderson LP. Anabolic androgenic steroid abuse: multiple mechanisms of regulation of gabaergic synapses in neuroendocrine control regions of the rodent forebrain. J Neuroendocrinol 2012; 24: 202- [DOI:10.1111/j.1365-2826.2011.02151.x]
19. Pagonis TA, Angelopoulos NV, Koukoulis GN, Hadjichristodoulou CS. Psychiatric side effects induced by supraphysiological doses of combinations of anabolic steroids correlate to the severity of abuse. Eur Psychiatr 2006; 21: 551-562. [DOI:10.1016/j.eurpsy.2005.09.001]
20. Camargo IC, Leite GA, Pinto T, Ribeiro-Paes JT. Histopathologycal findings in the ovaries and uterus of albino femalerats promoted by co-administration of synthetic steroids and nicotine. Exp Toxicol Pathol 2014; 66: 195-202. [DOI:10.1016/j.etp.2014.01.005]
21. Bordbar H, Mesbah F, Talaei T, Dehghani F, Mirkhani H. Modulatory Effect of Gonadotropins on Rats' Ovaries after Nandrolone Decanoate Administration: A Stereological Study. Iran J Med Sci 2014; 39: 39-44.
22. Mohammad H, Ngwan SD, Terkimbi Utoo B, Swende TZ. Transvaginal ultrasound evaluation of ovarian volume among normal adults in Makurdi, North-Central Nigeria. J Reprod Biol Health 2013; 1-3.
23. Hijazi MM, Ahmed MR, Hafiz Ul, Haq SI, Naqvi SNH, Parveen R. Testicular morphology of albino rat; withdrawal effects of chronic androgenic anabolic steroid. Profess Med J 2016; 23: 343-349. [DOI:10.17957/TPMJ/16.3188]
24. Bagchus WM, Smeets JM, Verheul HA, De Jager-Van Der Veen SM, Port A, Paul Geurts TB. Pharmacokinetic evaluation of three different intramuscular doses of nandrolone decanoate: analysis of serum and urine samples in healthy men. J Clin Endocrinol Metab 2005; 90: 2624-2630. [DOI:10.1210/jc.2004-1526]
25. Chen Y, Zhang D. Optimal ovulation induction in polycystic ovary syndrome resistant to clomiphene citrate or letrozole. Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban 2016; 47: 874-877.
26. He B, Junping C, Li H, Weihong T, Lintao X, Shikai W. Effects of human menopausal gonadotropin on zona pellucida and pregnancy outcomes of ovarian stimulation protocols. Iran J Reprod Med 2015; 13: 337-344.
27. Shirwalkar H, Modi DN, Maitra A. Exposure of adult rats to estradiol valerate induces ovarian cyst with early senescence of follicles. Mol Cell Endocrinol 2007; 272: 22-37. [DOI:10.1016/j.mce.2007.04.003]
28. Zafeiriou S, Loutradis D, Michalas S. The role of gonadotropins in follicular development and their use in ovulation induction protocols for assisted reproduction. Eur J Contracept Reprod Health Care 2000; 5: 157-167. [DOI:10.1080/13625180008500389]
29. Von Wolff M, Schneider S, Kollmann Z, Weiss B, Bersinger NA. Exogenous gonadotropins do not increase the blood-follicular transportation capacity of extra-ovarian hormones such as prolactin and cortisol. Reprod Biol Endocrinol 2013; 11: 87. [DOI:10.1186/1477-7827-11-87]
30. Tabata C, Fujiwara T, Sugawa M, Noma M, Onoue H, Kusumi M, et al. Comparison of FSH and hMG on ovarian stimulation outcome with a GnRH antagonist protocol in younger and advanced reproductive age women. Reprod Med Biol 2015; 14: 5-9. [DOI:10.1007/s12522-014-0186-0]
31. Becker C, Riedmaiera I, Reiterb M, Tichopada A, Grootc MJ, Stolkerc AA, et al. Influence of anabolic combinations of an androgen plus an estrogen on biochemical pathways in bovine uterine endometrium and ovary. J Steroid Biochem Mol Biol 2011; 125: 192-201. [DOI:10.1016/j.jsbmb.2011.01.007]
32. Wang Y, Newton H, Spaliviero JA, Allan CM, Marshan B, Handelsman DJ, et al. Gonadotropin control of inhibin secretion and the relationship to follicle type and number in the hpg mouse. Biolo Reprod 2005; 73: 610-618. [DOI:10.1095/biolreprod.105.039602]
33. Lobascio AM, Klinger FG, Scaldaferri ML, Farini D, De Felici M. Analysis of programmed cell death in mouse fetal oocytes. Reproduction 2007; 134: 241-252. [DOI:10.1530/REP-07-0141]
34. Ortiz R, Echeverria OM, Salgado R, Escobar ML, Vazquez-Nin GH. Fine structural and cytochemical analysis of the processes of cell death of oocytes in atretic follicles in new born and prepubertal rats. Apoptosis 2006; 11: 25-37. [DOI:10.1007/s10495-005-3347-0]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
