سه شنبه 28 فروردین 1403
[Archive]
دوره 16، شماره 4 - ( 1-1397 )
جلد 16 شماره 4 صفحات 246-235 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Sampannang A, Arun S, Burawat J, Sukhorum W, Iamsaard S. Testicular histopathology and phosphorylated protein changes in mice with diabetes induced by multiple-low doses of streptozotocin: An experimental study. IJRM 2018; 16 (4) :235-246
URL: http://ijrm.ir/article-1-1060-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-1060-fa.html
هیستوپاتولوژی بیضه و تغییرات پروتئین فسفوریله شده در موش های مبتلا به دیابت ناشی از دوزهای پایین و چندگانه استرپتوزوتوسین: یک مطالعه تجربی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1397; 16 (4) :235-246
چکیده: (3270 مشاهده)
مقدمه: مدل دیابتی ناشی از استرپتوزوتوسین (STZ) به طور گستردهای برای ارزیابی اثرات نامطلوب دیابت بر پارامترهای اسپرماتوژنز و استروئیدوژنز بیضه مورد استفاده قرار میگیرد. با این حال، مکانیسم واقعی کمباروری/ناباروری در مردان دیابتی مشخص نیست.
هدف: هدف از انجام مطالعه یک بررسی دقیق از هیستوپاتولوژی بیضه، وضعیت واکنش آکروزوم اسپرم (AR) و بیان پروتئین فسفوریله شده تیروزین در بیضه موشهای نر ناشی از TZبود.
موارد و روشها: 10 موش سوری نژاد ICR به دو گروه پنجتایی: کنترل و دیابت ناشی از دوزهای چندگانه کم استروپتوزوتوسین (MLD-STZ) تقسیم شدند. موشهای کنترل به صورت داخل صفاقی با بافر سیترات تزریق شدند، در حالی که موشهای MLD-STZ به مدت 5 روز متوالی با STZ 40 میلیگرم بر کیلوگرم وزن بدن تزریق شدند. در پایان آزمایش (روز 40)، پارامترهای تولیدمثلی، وضعیت AR و هیستوپاتولوژی بیضه و اپیدیدیم مورد بررسی قرار گرفتند. بیان پروتئینهای فسفریله شده تیروزین بیضه مورد بررسی قرار گرفت.
نتایج: میزان گلوکز خون، درصد AR و اختلال اسپرم در گروه STZ به طور معنیداری بیشتر بود، در حالی که غلظت اسپرم در مقایسه با شاهد به طور معنیداری کمتر بود (0/05>p). هیستوپاتولوژی توبول سمی نفروس به 7 نوع تقسیم شد. علاوه بر این، سلولهای گرد فراوان در لومن اپیدیدیم موشهای MLD-STZ یافت شد. افزون بر این، شدت پروتئینهای فسفریله شده بیضه (170، 70، 36، 30 و 25 کیلو دالتون) به طور قابل توجهی بالاتر بود و باند پروتئینی 120 کیلو دالتونی در موشهای MLD-STZ به طور قابل توجهی پایینتر بود.
نتیجهگیری: DM ناشی از MLD-STZ سبب بروز هیستوپاتولوژی بسیار زیاد بیضه، القای AR در اسپرم و افزایش بیان پروتئین های فسفریله شده بیضه میشود. این یافتهها میتواند برخی از مکانیسمهای کم باروری/ناباروری را در مردان دیابتی مشخص کند.
هدف: هدف از انجام مطالعه یک بررسی دقیق از هیستوپاتولوژی بیضه، وضعیت واکنش آکروزوم اسپرم (AR) و بیان پروتئین فسفوریله شده تیروزین در بیضه موشهای نر ناشی از TZبود.
موارد و روشها: 10 موش سوری نژاد ICR به دو گروه پنجتایی: کنترل و دیابت ناشی از دوزهای چندگانه کم استروپتوزوتوسین (MLD-STZ) تقسیم شدند. موشهای کنترل به صورت داخل صفاقی با بافر سیترات تزریق شدند، در حالی که موشهای MLD-STZ به مدت 5 روز متوالی با STZ 40 میلیگرم بر کیلوگرم وزن بدن تزریق شدند. در پایان آزمایش (روز 40)، پارامترهای تولیدمثلی، وضعیت AR و هیستوپاتولوژی بیضه و اپیدیدیم مورد بررسی قرار گرفتند. بیان پروتئینهای فسفریله شده تیروزین بیضه مورد بررسی قرار گرفت.
نتایج: میزان گلوکز خون، درصد AR و اختلال اسپرم در گروه STZ به طور معنیداری بیشتر بود، در حالی که غلظت اسپرم در مقایسه با شاهد به طور معنیداری کمتر بود (0/05>p). هیستوپاتولوژی توبول سمی نفروس به 7 نوع تقسیم شد. علاوه بر این، سلولهای گرد فراوان در لومن اپیدیدیم موشهای MLD-STZ یافت شد. افزون بر این، شدت پروتئینهای فسفریله شده بیضه (170، 70، 36، 30 و 25 کیلو دالتون) به طور قابل توجهی بالاتر بود و باند پروتئینی 120 کیلو دالتونی در موشهای MLD-STZ به طور قابل توجهی پایینتر بود.
نتیجهگیری: DM ناشی از MLD-STZ سبب بروز هیستوپاتولوژی بسیار زیاد بیضه، القای AR در اسپرم و افزایش بیان پروتئین های فسفریله شده بیضه میشود. این یافتهها میتواند برخی از مکانیسمهای کم باروری/ناباروری را در مردان دیابتی مشخص کند.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Bhattacharya SM, Ghosh M, Nandi N. Diabetes mellitus and abnormalities in semen analysis. J Obstet Gynaecol Res 2014; 40: 167-171. [DOI:10.1111/jog.12149]
2. Ballester J, Munoz MC, Dominguez J, Rigau T, Guinovart JJ, Rodriguez-Gil JE. Insulin-dependent diabetes affects testicular function by FSH- and LH-linked mechanisms. J Androl 2004; 25: 706-719. [DOI:10.1002/j.1939-4640.2004.tb02845.x]
3. Fernandes GS, Fernandez CD, Campos KE, Damasceno DC, Anselmo-Franci JA, Kempinas WD. Vitamin C partially attenuates male reproductive deficits in hyperglycemic rats. Reprod Biol Endocrinol 2011; 9: 100. [DOI:10.1186/1477-7827-9-100]
4. Yanagimachi R. Mammalian fertilization. The physiology of reproduction. Raven Press, New York; 1994.
5. Hunter T, Cooper JA. Protein tyrosine kinases. Annu Rev Biochem 1985; 54: 897-930. [DOI:10.1146/annurev.bi.54.070185.004341]
6. Iamsaard S, Burawat J, Kanla P, Arun S, Sukhorum W, Sripanidkulchai B, et al. Antioxidant activity and protective effect of Clitoria ternatea flower extract on testicular damage induced by ketoconazole in rats. J Zhejiang Univ Sci B 2014; 15: 548-555. [DOI:10.1631/jzus.B1300299]
7. Arad-Dann H, Beller U, Haimovitch R, Gavrieli Y, Ben-Sasson SA. Immuno-histochemistry of phosphotyrosine residues: identification of distinct intracellular patterns in epithelial and steroidogenic tissues. J Histochem Cytochem 1993; 41: 513-519. [DOI:10.1177/41.4.7680679]
8. Salicioni AM, Platt MD, Wertheimer EV, Arcelay E, Allaire A, Sosnik J, et al. Signalling pathways involved in sperm capacitation. Soc Reprod Fertil Suppl 2007; 65: 245-59.
9. Shivaji S, Kumar V, Mitra K, Jha KN. Mammalian sperm capacitation: role of phosphotyrosine proteins. Soc Reprod Fertil Suppl 2007; 63: 295-312.
10. Stival C, Puga Molina Ldel C, Paudel B, Buffone MG, Visconti PE, Krapf D. Sperm capacitation and acrosome reaction in mammalian sperm. Adv Anat Embryol Cell Biol 2016; 220: 93-106. [DOI:10.1007/978-3-319-30567-7_5]
11. Arun S, Burawat, J, Sukhorum W, Sampannang A, Maneenin C, Iamsaard S. Chronic restraint stress induces sperm acrosome reaction and changes in testicular tyrosine phosphorylated proteins in rats. Int J Reprod Biomed 2016; 14: 443-452. [DOI:10.29252/ijrm.14.7.2]
12. Arun S, Burawat J, Sukhorum W, Sampannang A, Uabundit N, Iamsaard S. Changes of testicular phosphorylated proteins in response to restraint stress in male rats. J Zhejiang Univ Sci B 2016; 17: 21-29. [DOI:10.1631/jzus.B1500174]
13. Sampannang A, Arun S, Sukhorum W, Burawat J. Nualkaew S, Maneenin C, et al. Antioxidant and hypoglycemic effects of Momordica cochinchinensis Spreng (Gac) aril extract on reproductive damages in streptozotocin (STZ)-induced hyperglycemia mice. Int J Morphol 2017; 35: 667-675. [DOI:10.4067/S0717-95022017000200046]
14. Sukhorum W, Iamsaard S. Changes in testicular function proteins and sperm acrosome status in rats treated with valproic acid. Reprod Fertil Dev 2017; 29: 1585-1592. [DOI:10.1071/RD16205]
15. Ward MA. Intracytoplasmic sperm injection effects in infertile azh mutant mice. Biol Reprod 2005; 73: 193-200. [DOI:10.1095/biolreprod.105.040675]
16. Navarro-Casado L, Juncos-Tobarra MA, Cháfer-Rudilla M, de Onzo-o LÍ, Blázquez-Cabrera JA, Miralles-García JM. Effect of experimental diabetes and STZ on male fertility capacity. Study in rats. J Androl 2010; 31: 584-592. [DOI:10.2164/jandrol.108.007260]
17. Ventura-Sobrevilla J, Boone-Villa VD, Aguilar CN, Román-Ramos R, Vega-Avila E, Campos-Sepúlveda E, et al. Effect of varying dose and administration of streptozotocin on blood sugar in male CD1 mice. Proc West Pharmacol Soc 2011; 54: 5-9.
18. Alves MG, Martins AD, Rato L, Moreira PI, Socorro S, Oliveira PF. Molecular mechanisms beyond glucose transport in diabetes-related male infertility. Biochim Biophys Acta 2013; 1832: 626-635. [DOI:10.1016/j.bbadis.2013.01.011]
19. Ahmadi A, Fajri M, Sadrkhanlou RA, Mokhtari M. Evaluation of epididymal sperm quality, DNA damage and sperm maturation abnormality in streptozotocin- induced diabetic mice. Int J Fertil Steril 2011; 5: 40.
20. Akinola OB, Biliaminu SA, Adedeji OG, Oluwaseun BS, Olawoyin OM, Adelabu TA. Combined effects of chronic hyperglycaemia and oral aluminium intoxication on testicular tissue and some male reproductive parameters in Wistar rats. Andrologia 2015; 48: 779-786. [DOI:10.1111/and.12512]
21. Xu Y, Lei H, Guan R, Gao Z, Li H, Wang L, et al. Studies on the mechanism of testicular dysfunction in the early stage of a streptozotocin induced diabetic rat model. Biochem Biophys Res Commun 2014; 450: 87-92. [DOI:10.1016/j.bbrc.2014.05.067]
22. Kianifard D, Sadrkhanlou RA, Hasanzadeh S. The ultrastructural changes of the sertoli and leydig cells following streptozotocin induced diabetes. Iran J Basic Med Sci 2012; 15: 623-635.
23. Murray FT, Orth J, Gunsalus G, Weisz J, Li JB, Jefferson LS, et al. The pituitary-testicular axis in the streptozotocin diabetic male rat: evidence for gonadotroph, Sertoli cell and Leydig cell dysfunction. Int J Androl 1981; 4: 265-280. [DOI:10.1111/j.1365-2605.1981.tb00710.x]
24. Vares G, Wang B, Ishii-Ohba H, Nenoi M, Nakajima T. Diet-induced obesity modulates epigenetic responses to ionizing radiation in mice. PLoS One 2014; e106277. [DOI:10.1371/journal.pone.0106277]
25. Ogawa T, Ito C, Nakamura T, Tamura Y, Yamamoto T, Noda T, et al. Abnormal sperm morphology caused by defects in Sertoli cells of Cnot7 knockout mice. Arch Histol Cytol 2004; 67: 307-314. [DOI:10.1679/aohc.67.307]
26. Nakamura T, Yao R, Ogawa T, Suzuki T, Ito C, Tsunekawa N, et al. Oligo-astheno- teratozoospermia in mice lacking Cnot7, a regulator of retinoid X receptor beta. Nat Genet 2004; 36: 528-533. [DOI:10.1038/ng1344]
27. Cheon YP, Cho HJ, Kim KS. Spermatozoa characteristics of streptozotocin-induced diabetic Zucker lean rat: calcium ionophore-induced acrosome reaction and sperm concentration. Korean J Lab Anim Sci 1998, 14, 15-20.
28. Cheon YP, Kim CH, Kang BM, Chang YS, Nam JH, Kim YS, et al. Spermatozoa characteristics of streptozotocin-induced diabetic Wistar rat: acrosome reaction and spermatozoa concentration. Korean J Fertil Steril 1999; 26: 89-96.
29. Ayer-LeLievre C, Olson L, Ebendal T, Hallbook F, Persson H. Nerve growth factor mRNA and protein in the testis and epididymis of mouse and rat. Proc Nat Acad Sci USA 1988; 85: 2628-2632. [DOI:10.1073/pnas.85.8.2628]
30. Sisman AR, Kiray M, Camsari UM, Evren M, Ates M, Baykara B, et al. Potential novel biomarkers for diabetic testicular damage in streptozotocin-induced diabetic rats: nerve growth factor beta and vascular endothelial growth factor. Dis Markers 2014; 2014: 108106-108112. [DOI:10.1155/2014/108106]
31. Jin W, Tanaka A, Watanabe G, Matsuda H, Taya K. Effect of NGF on the motility and acrosome reaction of golden hamster spermatozoa in vitro. J Reprod Dev 2010; 56: 437-443. [DOI:10.1262/jrd.09-219N]
32. Donmez YB, Kizilay G, Topcu-Tarladacalisir Y. MAPK immunoreactivity in streptozotocin- induced diabetic rat testis. Acta Cir Bras 2014; 29: 644-650. [DOI:10.1590/S0102-8650201400160004]
33. Adewole SO, Caxton-Martins EA, Salako AA, Doherty OW, Naicker T. Effects of oxidative stress induced by streptozotocin on the morphology and trace minerals of the testes of diabetic wistar rats. Pharmacologyonline 2007; 2: 478-497.
34. Amaral S, Mota PC, Lacerda B, Alves M, Pereira Mde L, Oliveira PJ, et al. Testicular mitochondrial alterations in untreated streptozotocin-induced diabetic rats. Mitochondrion 2009; 9: 41-50. [DOI:10.1016/j.mito.2008.11.005]
35. Creasy DM. Pathogenesis of Male Reproductive Toxicity. Toxicol Pathol 2001; 29: 64-76. [DOI:10.1080/019262301301418865]
36. Khaneshi F, Nasrolahi O, Azizi S, Nejati V. Sesame effects on testicular damage in streptozotocin-induced diabetes rats. Avicenna J Phytomed 2013; 3: 347-355.
37. Shi Q, King RW. Chromosome nondisjunction yields tetraploid rather than aneuploid cells in human cell lines. Nature 2005; 437: 1038-1042. [DOI:10.1038/nature03958]
38. Vidal JD, Whitney KM. Morphologic manifestations of testicular and epididymal toxicity. Spermatogenesis 2014; 4: e979099. [DOI:10.4161/21565562.2014.979099]
39. Tsounapi P, Honda M, Dimitriadis F, Kawamoto B, Hikita K, Muraoka K, et al. Impact of antioxidants on seminal vesicles function and fertilizing potential in diabetic rats. Asian J Androl 2016; 19: 639-646.
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
