پنجشنبه 6 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 16، شماره 5 - ( 2-1397 )
جلد 16 شماره 5 صفحات 322-315 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Kheirollahi A, Abbaszadeh A, Anbari K, Rostami B, Ahangari A, Hasanvand A et al . Troxerutin protect sperm, seminiferous epithelium and pituitary-gonadal axis from torsion-detorsion injury: An experimental study. IJRM 2018; 16 (5) :315-322
URL: http://ijrm.ir/article-1-1107-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-1107-fa.html
خیرالهی عبدالرضا، عباس زاده ابوالفضل، عنبری خاطره، رستمی بهروز، آهنگری امیرحسین، حسنوند افشین و همکاران.. تروکسریوتین از اسپرم٬ لوله های سمینی فروس و محور گنادی-هیپوفیزی در مقابل آسیب ناشی از تورشن -دتورشن محافظت می کند: یک مطالعه تجربی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1397; 16 (5) :315-322
عبدالرضا خیرالهی* 
1، ابوالفضل عباس زاده2 ، خاطره عنبری3 ، بهروز رستمی4 ، امیرحسین آهنگری4 ، افشین حسنوند4 ، محمدرضا غلامی5
1، ابوالفضل عباس زاده2 ، خاطره عنبری3 ، بهروز رستمی4 ، امیرحسین آهنگری4 ، افشین حسنوند4 ، محمدرضا غلامی5
1- مرکز تحقیقات گیاهان دارویی رازی، دانشگاه علوم پزشکی لرستان، خرم آباد، ایران ، rezagholami57@gmail.com
2- گروه جراحی، دانشگاه علوم پزشکی لرستان، خرم آباد، ایران
3- مرکز تحقیقات عوامل اجتماعی مؤثر بر سلامت، دانشگاه علوم پزشکی لرستان، خرم آباد، ایران
4- کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم پزشکی لرستان، خرم آباد، ایران
5- گروه علوم تشریحی، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، کرمانشاه، ایران
2- گروه جراحی، دانشگاه علوم پزشکی لرستان، خرم آباد، ایران
3- مرکز تحقیقات عوامل اجتماعی مؤثر بر سلامت، دانشگاه علوم پزشکی لرستان، خرم آباد، ایران
4- کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم پزشکی لرستان، خرم آباد، ایران
5- گروه علوم تشریحی، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، کرمانشاه، ایران
چکیده: (3426 مشاهده)
مقدمه: تروکسریوتین یک ترکیب آنتیاکسیدانی است که قادر است بافتهای مختلف را در برابر آسیبهای ناشی از ایسکمی-ریپرفیوژن محافظت کند.
هدف: هدف این مطالعه بررسی اثر تروکسریوتین در کاهش آسیب ناشی از ایسکمی-ریپرفیوژن بیضه در موشهای صحرایی نر بالغ است .
موارد و روشها: در این مطالعه از 40 موش نر استفاده شد. موشهای صحرایی به 4 گروه 10 تایی تقسیم شدند و در خانه حیوانات در شرایط مناسب با درجه حرارت کنترل شده oC 2±22، دوره نوری 12 ساعت روشنائی 12 ساعت تاریکی و دسترسی آزاد به آب و غذا نگهداری شدند. گروه اول یا گروه شم: این گروه به جز آب و غذا ترکیب دیگری دریافت نکردند. گروه دوم: گروه کنترل که تحت ایسکمی-ریپرفیوژن بودند. گروه سوم: گروه ایسکمی-ریپرفیوژنmg/kg 150 تروکسریوتین دریافت کردند. گروه چهارم: گروه ایسکمی-ریپرفیوژن، mg/kg 20 ویتامین C به صورت گاواژ دریافت کردند. در گروه سوم و چهارم بیضهها به میزان ۷۲۰ درجه و به مدت ۹۰ دقیقه چرخیده و سپس به مدت ۵۰ روز خونرسانی مجدد برقرار گردید. بعد از ۵۰ روز پس از خونگیری، موشها کشته و بیضهها خارج و در محلول بوئن فیکس گردید. مقاطع بیضه به روش هماتوکسیلین و ائوزین رنگآمیزی شدند. میزان هورمون LH،FSH ، تستوسترون با روش ELISEA سنجش شد. برای نشان دادن آپوپتوز از روش تانل استفاده گردید. از قسمت دم اپیدیدیم برای شمارش اسپرم استفاده گردید. از تکنیک جانسون برای بررسی لولههای سمینی فروس استفاده شد.
نتایج: میزان تغییرات بافتی لولههای سمی نیفروس، تعداد و درصد زنده ماندن اسپرم، میزان هورمون LH،FSH ، تستوسترون و میزان آپوپتوز در گروههای مورد مطالعه (کنترل، دریافتکننده تروکسریوتین، ویتامین C و کنترل سالم) از لحاظ آماری معنیدار بود. تروکسریوتین باعث بهبود روند تغییرات ایجاد شده در لولههای سمی نیفروس بیضه موشهای تورشن/دتورشن شده از طریق افزایش نمره جانسون و کاهش تعداد سلولهای زایای آپوپتوزی نسبت به گروه کنترل میشود و همچنین باعث افزایش میزان سطوح سرمی هورمونهای LH و تستوسترون و عدم تغییر معنیدار هورمون FSH نسبت به گروه ایسکی ریپرفیوژن بدون دریافت دارو میشود.
نتیجه گیری: تروکسریوتین دارای اثرات محافظتی بر لولههای سمی نیفروس متعاقب تورشن-دتورشن بیضه است.
هدف: هدف این مطالعه بررسی اثر تروکسریوتین در کاهش آسیب ناشی از ایسکمی-ریپرفیوژن بیضه در موشهای صحرایی نر بالغ است .
موارد و روشها: در این مطالعه از 40 موش نر استفاده شد. موشهای صحرایی به 4 گروه 10 تایی تقسیم شدند و در خانه حیوانات در شرایط مناسب با درجه حرارت کنترل شده oC 2±22، دوره نوری 12 ساعت روشنائی 12 ساعت تاریکی و دسترسی آزاد به آب و غذا نگهداری شدند. گروه اول یا گروه شم: این گروه به جز آب و غذا ترکیب دیگری دریافت نکردند. گروه دوم: گروه کنترل که تحت ایسکمی-ریپرفیوژن بودند. گروه سوم: گروه ایسکمی-ریپرفیوژنmg/kg 150 تروکسریوتین دریافت کردند. گروه چهارم: گروه ایسکمی-ریپرفیوژن، mg/kg 20 ویتامین C به صورت گاواژ دریافت کردند. در گروه سوم و چهارم بیضهها به میزان ۷۲۰ درجه و به مدت ۹۰ دقیقه چرخیده و سپس به مدت ۵۰ روز خونرسانی مجدد برقرار گردید. بعد از ۵۰ روز پس از خونگیری، موشها کشته و بیضهها خارج و در محلول بوئن فیکس گردید. مقاطع بیضه به روش هماتوکسیلین و ائوزین رنگآمیزی شدند. میزان هورمون LH،FSH ، تستوسترون با روش ELISEA سنجش شد. برای نشان دادن آپوپتوز از روش تانل استفاده گردید. از قسمت دم اپیدیدیم برای شمارش اسپرم استفاده گردید. از تکنیک جانسون برای بررسی لولههای سمینی فروس استفاده شد.
نتایج: میزان تغییرات بافتی لولههای سمی نیفروس، تعداد و درصد زنده ماندن اسپرم، میزان هورمون LH،FSH ، تستوسترون و میزان آپوپتوز در گروههای مورد مطالعه (کنترل، دریافتکننده تروکسریوتین، ویتامین C و کنترل سالم) از لحاظ آماری معنیدار بود. تروکسریوتین باعث بهبود روند تغییرات ایجاد شده در لولههای سمی نیفروس بیضه موشهای تورشن/دتورشن شده از طریق افزایش نمره جانسون و کاهش تعداد سلولهای زایای آپوپتوزی نسبت به گروه کنترل میشود و همچنین باعث افزایش میزان سطوح سرمی هورمونهای LH و تستوسترون و عدم تغییر معنیدار هورمون FSH نسبت به گروه ایسکی ریپرفیوژن بدون دریافت دارو میشود.
نتیجه گیری: تروکسریوتین دارای اثرات محافظتی بر لولههای سمی نیفروس متعاقب تورشن-دتورشن بیضه است.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Agarwal A, Allamaneni SS. Free radicals and male reproduction. J Indian Med Assoc 2011; 109: 184-187.
2. Gholami M, Abbaszadeh A, Khanipour Khayat Z, Anbari K, Baharvand P, Gharravi AM. Honey improves spermatogenesis and hormone secretion in testicular ischaemia-reperfusion-induced injury in rats. Andrologia 2018; 50: 1-5. [DOI:10.1111/and.12804]
3. Agarwal A, Virk G, Ong C, du Plessis SS. Effect of oxidative stress on male reproduction. world J Mens Health 2014; 32: 1-17. [DOI:10.5534/wjmh.2014.32.1.1]
4. Doshi SB, Khullar K, Sharma RK, Agarwal A. Role of reactive nitrogen species in male infertility. Reprod Biol Endocrinol 2012; 10: 109. [DOI:10.1186/1477-7827-10-109]
5. Agarwal A, Allamaneni SS. Free radicals and male reproduction. J Indian Med Assoc 2011; 109: 184-187.
6. Agarwal A, Saleh RA. Role of oxidants in male infertility: rationale, significance, and treatment. Urol Clin North Am 2002; 29: 817-827. [DOI:10.1016/S0094-0143(02)00081-2]
7. Aitken RJ, Clarkson JS, Fishel S. Generation of reactive oxygen species, lipid peroxidation, and human sperm function. Biol Reprod 1989; 41: 183-197. [DOI:10.1095/biolreprod41.1.183]
8. Billig H, Furuta I, Rivier C, Tapanainen J, Parvinen M, Hsueh A. Apoptosis in testis germ cells: developmental changes in gonadotropin dependence and localization to selective tubule stages. Endocrinology 1995; 136: 5-12. [DOI:10.1210/endo.136.1.7828558]
9. Ikeda M, Kodama H, Fukuda J, Shimizu Y, Murata M, Kumagai J, et al. Role of radical oxygen species in rat testicular germ cell apoptosis induced by heat stress. Biol Reprod 1999; 61: 393-399. [DOI:10.1095/biolreprod61.2.393]
10. Showell MG, Brown J, Yazdani A, Stankiewicz MT, Hart RJ. Antioxidants for male subfertility. Cochrane Database Syst Rev 2011; 1: 1-7. [DOI:10.1002/14651858.CD007411.pub2]
11. Durairajanayagam D, Agarwal A, Ong C, Prashast P. Lycopene and male infertility. Asian J Androl 2014; 16: 420-425. [DOI:10.4103/1008-682X.126384]
12. Gholami M, Saki G, Hemadi M, Khodadadi A, Mohammadi-Asl J. Melatonin improves spermatogonial stem cells transplantation efficiency in azoospermic mice. Iran J Basic Med Sci 2014; 17: 93-99.
13. Gholami M, Saki G, Hemadi M, Khodadadi A, Mohamma-di-Asl J. Effect of Melatonin on the Expression of Apoptotic Genes in Vitrified-thawed Spermatogonia Stem Cells Type A of 6-Day-Old Mice. Iran J Basic Med Sci 2013; 16: 906-909.
14. Gholami M, Khayat ZK, Anbari K, Obidavi Z, Varzi A, Boroujeni MB et al. Quercetin ameliorates peripheral nerve ischemia-reperfusion injury through the NF-kappa B pathway. Anat Sci Int 2017; 92: 330-337. [DOI:10.1007/s12565-016-0336-z]
15. Gholami M, Zendedel A, Khanipour khayat Z, Ghanad K, Nazari A, Pirhadi A. Selenium effect on ischemia-reperfusion injury of gastrocnemius muscle in adult rats. Biol Trace Elem Res 2015; 164: 205-211. [DOI:10.1007/s12011-014-0218-y]
16. Khaksary Mahabady M, Gholami MR, Najafzadeh Varzi H, Zendedel A, Doostizadeh M. Protective effect of quercetin on skeletal and neural tube teratogenicity induced by cyclophosphamide in rat fetuses. Vet Res Forum 2016; 7: 133-138.
17. Zendedel A, Gharibi Z, Anbari K, Abbaszadeh A, Khayat ZK, Khorramabadi RM, et al. Selenium ameliorate peripheral nerve ischemic-reperfusion injury via decreased TNF-α. Biol Trace Elem Res 2017; 176: 328-337. [DOI:10.1007/s12011-016-0836-7]
18. Agarwal A, Nallella KP, Allamaneni SS, Said TM. Role of antioxidants in treatment of male infertility: an overview of the literature. Reprod Biomed Online 2004; 8: 616-627. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)61641-0]
19. Davies KJ. Oxidative stress, antioxidant defenses, and damage removal, repair, and replacement systems. IUBMB Life 2000; 50: 279-289. [DOI:10.1080/15216540051081010]
20. Gholami M, Ahmadi SAY, Abaszadeh A, Khaki A. Protective effects of melatonin and ghrelin on spermatogenesis: A narrative review of the literature. Int J Reprod Biomed 2017; 15: 265-272. [DOI:10.29252/ijrm.15.5.265]
21. Nijveldt RJ, van Nood E, van Hoorn DE, Boelens PG, van Norren K, van Leeuwen PA. Flavonoids: a review of probable mechanisms of action and potential applications. Am J Clin Nutr 2001; 74: 418-425. [DOI:10.1093/ajcn/74.4.418]
22. Aktas C, Erboga M, Fidanol Erboga Z, Bozdemir Donmez Y, Topcu B, Gurel A. Protective effects of Urtica dioica L. on experimental testicular ischaemia reperfusion injury in rats. Andrologia 2017; 49: 1-5. [DOI:10.1111/and.12636]
23. Milcan A, Arslan E, Bagdatoglu OT, Bagdatoglu C, Polat G, Kanik A, et al. The effect of alprostadil on ischemia-reperfusion injury of peripheral nerve in rats. Pharmacol Res 2004; 49: 67-72. [DOI:10.1016/j.phrs.2003.07.008]
24. Aitken RJ, Ryan AL, Baker MA, McLaughlin EA. Redox activity associated with the maturation and capacitation of mammalian spermatozoa. Free Rad Biol Med 2004; 36: 994-1010. [DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2004.01.017]
25. Moghimian M, Soltani M, Abtahi H, Adabi J, Jajarmy N. Protective effect of tunica albuginea incision with tunica vaginalis flap coverage on tissue damage and oxidative stress following testicular torsion: Role of duration of ischemia. J Pediatr Urol 2016; 12: 390.e1-390.e6. [DOI:10.1016/j.jpurol.2016.06.002]
26. Ford WC. Regulation of sperm function by reactive oxygen species. Hum Reprod Update 2004; 10: 387-399. [DOI:10.1093/humupd/dmh034]
27. Beigi Boroujeni M, Shahrokhi SS, Birjandi M, Abbaszadeh A, Beyranvand F, Hamoleh S, et al. Effects of pomegranate peel extract on histopathology, testosterone levels and sperm of testicular torsion-detorsion induced in adult Wistar rats. J Complement Integr Med 2017; 14: 1-5. [DOI:10.1515/jcim-2017-0009]
28. Ahmadi S, Bashiri R, Ghadiri-Anari A, Nadjarzadeh A. Antioxidant supplements and semen parameters: An evidence based review. Int J Reprod Biomed 2016; 14: 729-236. [DOI:10.29252/ijrm.14.12.729]
29. Elmussareh M, Mahrous A, Kayes O. Antioxidant therapy for male subfertility: myth or evidence‐based? Trend Urol Men Health 2015; 6: 35-39. [DOI:10.1002/tre.439]
30. Kumar TR, Wang Y, Lu N, Matzuk MM. Follicle stimulating hormone is required for ovarian follicle maturation but not male fertility. Nat Genet 1997; 15: 201-204. [DOI:10.1038/ng0297-201]
31. Ramaswamy S, Weinbauer GF. Endocrine control of spermatogenesis: Role of FSH and LH/ testosterone. Spermatogenesis 2015; 4: e996025. [DOI:10.1080/21565562.2014.996025]
32. Dierich A, Sairam MR, Monaco L, Fimia GM, Gansmuller A, LeMeur M, et al. Impairing follicle-stimulating hormone (FSH) signaling in vivo: targeted disruption of the FSH receptor leads to aberrant gametogenesis and hormonal imbalance. Proc Nati Acad Sci USA 1998; 95: 13612-13617. [DOI:10.1073/pnas.95.23.13612]
33. Abel MH, Wootton AN, Wilkins V, Huhtaniemi I, Knight PG, Charlton HM. The effect of a null mutation in the follicle-stimulating hormone receptor gene on mouse reproduction. Endocrinology 2000; 141: 1795-1803. [DOI:10.1210/endo.141.5.7456]
34. Allan CM, Haywood M, Swaraj S, Spaliviero J, Koch A, Jimenez M, et al. A novel transgenic model to characterize the specific effects of follicle-stimulating hormone on gonadal physiology in the absence of luteinizing hormone actions. Endocrinology 2001; 142: 2213-2220. [DOI:10.1210/endo.142.6.8092]
35. Zini A, Al-Hathal N. Antioxidant therapy in male infertility: fact or fiction? Asian J Androl 2011; 13: 374-381. [DOI:10.1038/aja.2010.182]
36. Saitoh Y, Yoshimoto T, Kato S, Miwa N. Synergic carcinostatic effects of ascorbic acid and hyperthermia on Ehrlich ascites tumor cell. Exp Oncol 2015; 37: 94-99.
37. Cruz Diaz LA, Flores Miramontes MG, Chavez Hurtado P, Allen K, Gonzalez Avila M, Prado Montes de Oca E. Ascorbic acid, ultraviolet C rays, and glucose but not hyperthermia are elicitors of human beta-defensin 1 mRNA in normal keratinocytes. Biomed Res Int 2015; 2015: 714580. [DOI:10.1155/2015/714580]
38. Fukumura H, Sato M, Kezuka K, Sato I, Feng X, Okumura S, et al. Effect of ascorbic acid on reactive oxygen species production in chemotherapy and hyperthermia in prostate cancer cells. J Physiol Sci 2012; 62: 251-257. [DOI:10.1007/s12576-012-0204-0]
39. Aktas A, Cudi Tuncer M, Yildirim A, Nergiz Y, Akkus M. Protective effects of melatonin on testicular torsion and detorsion damage in Sprague-Dawley rats. Int J Morphol 2011; 29: 7-15. [DOI:10.4067/S0717-95022011000100001]
40. Aktoz T, Kanter M, Aktas C. Protective effects of quercetin on testicular torsion/detorsion‐induced ischaemia‐reperfusion injury in rats. Andrologia 2010; 42: 376-383. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2010.01044.x]
41. Azarneoshan F, Khatam Saz S, Sadeghi H. [The effects of hydro alcoholic extract of Dorema Aucheri on blood concentration of gonadotropin and androgen hormones in adult male rats.] Armaghane-e-Danesh 2009; 14: 63-70. (in Persian)
42. Dokmeci D, Kanter M, Inan M, Aydogdu N, Basaran UN, Yalcin O, et al. Protective effects of ibuprofen on testicular torsion/ detorsion- induced ischemia/ reperfusion injury in rats. Arch Toxicol 2007; 81: 655-663. [DOI:10.1007/s00204-007-0189-2]
43. Ghasemiboroon M, Ghafourian Boroujerdnia M, Ahangarpoor A, Kooti W, Hasanzadeh Noohi Z, Noori Ahmad Abadi M. [The effect of hydro-alcoholic extract of Celery (Apium graveolens) leaves on serum level of testosterone, FSH and LH in male rats]. J Zanjan Univ Med Sci 2014; 22: 49-57. (in Persian)
44. Ghasemneghad R, Mohammadghasemi F, Faghani M, Bahadori M. [Protective effect of oxytocin on quantitative and qualitative spermatogenesis parameters in rat's testis under ischemia-reperfusion]. J Guilan Uni Med Sci 2015; 23: 53-62. (in Persian)
45. Mokhtari M, Jowhari H, Yazdanpour F. [Effects of hydro-alcoholic seed extract of Coriandrum sativum L. on pituitary-ovary hormones in rat]. Med Sci 2013; 22: 237-243. (in Persian)
46. Najafi G, Nejati V, Shalizar Jalali A, Zahmatkesh E. Protective role of royal jelly in oxymetholone-induced oxidative injury in mouse testis. Iran J Toxicol 2014; 8: 1073-1080.
47. Jahromi V, Azhdari S, Ghaedi Sh, Farzam M, jahromi H. Effect of hydroalcoholic extract of Citrus aurantifolia peel on serum level of testosterone, FSH, LH and testis tissue in adult male rats. Int J Biol Pharm All Sci 2013; 2:1-9.
48. Akondi BR, Challa SR, Akula A. Protective effects of rutin and naringin in testicular ischemia-reperfusion induced oxidative stress in rats. J Reprod Infertil 2011; 12: 209-211.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
