سه شنبه 21 اسفند 1403
[Archive]
دوره 17، شماره 2 - ( 11-1397 )
جلد 17 شماره 2 صفحات 118-107 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Hosseini S M, Moshrefi A H, Amani R, Razavimehr S V, Aghajanikhah M H, Sokouti Z et al . Subchronic effects of different doses of Zinc oxide nanoparticle on reproductive organs of female rats: An experimental study. IJRM 2019; 17 (2) :107-118
URL: http://ijrm.ir/article-1-1400-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-1400-fa.html
حسینی سید‌محمد، مشرفی امیرحسین، امانی رضا، رضوی‌مهر سید‌وحید، آقاجانی‌خواه محمد‌حسن، سکوتی زهرا و همکاران.. اثرات تحت مزمن دوزهای مختلف نانوذرات اکسید روی بر روی اندام‌های تولیدمثلی موش‌های صحرایی ماده: یک مطالعه تجربی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1397; 17 (2) :107-118
سید‌محمد حسینی* 
1، امیرحسین مشرفی2 ، رضا امانی2 ، سید‌وحید رضوی‌مهر2 ، محمد‌حسن آقاجانی‌خواه2 ، زهرا سکوتی3 ، بهنام بابایی‌هولاری2
1، امیرحسین مشرفی2 ، رضا امانی2 ، سید‌وحید رضوی‌مهر2 ، محمد‌حسن آقاجانی‌خواه2 ، زهرا سکوتی3 ، بهنام بابایی‌هولاری2
1- گروه پاتولوژی، واحد بابل، دانشگاه آزاد اسلامی، بابل، ایران ، dr_hosseini2323@yahoo.com
2- باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد بابل، دانشگاه آزاد اسلامی، بابل، ایران
3- گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد دامغان، دامغان، ایران
2- باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد بابل، دانشگاه آزاد اسلامی، بابل، ایران
3- گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد دامغان، دامغان، ایران
چکیده: (2951 مشاهده)
مقدمه: فلز روی عملکرد بیوشیمیایی و فیزیولوژیکی بسیاری دارد. با این حال مطالعات سمشناسی ثابت کرده است که نانو ذرات اکسید روی در غلظت های بالا اثرات مضری بر سلامت انسان و گونه های زیست محیطی دارد.
هدف: هدف از این مطالعه بررسی سمیت نانو ذرات اکسید روی بر روی بافت های تولیدمثلی موش صحرایی ماده است.
موارد و روش ها: 80 موش صحرایی ماده بالغ نژاد ویستار با وزن 200-180 گرم در هشت گروه شامل کنترل، شم (درمان شده با سالین) و شش گروه (تعداد هر گروه 10 عدد) که دوزهای مختلفی از نانو ذرات اکسید روی (4، 8، 25، 50، 100 و 200 میلی گرم به ازای هر کیلوگرم) را دوبار در هفته به مدت 4 هفته دریافت کردند، تقسیم شدند. در پایان مطالعه، موش ها پس از خون گیری کشته شدند؛ بافت تخمدان و رحم برای بررسی های هیستوپاتولوژیکی جدا شدند و نمونههای خونی به منظور تجزیه تحلیل بیوشیمیایی به آزمایشگاه منتقل شدند.
نتایج: تشخیص میکروسکوپی در بافت تخمدان شامل: افزایش جسم زرد، کیستهای فولیکولی، اینفیلتریشن سلولهای آماسی و فیبروز می باشد. تغییرات هیستوپاتولوژیکی در تخمدان وابسته به دوز می باشد. در بافت رحم ضایعات شامل: تخریب اپیتلیال و هایپرپلازی غدد آندومتر میباشد. سطح استروژن و پروژسترون در سرم موش ها در دوزهای کم افزایش، و در دوزهای بالا به صورت وابسته به دوز کاهش یافت.
نتیجه گیری: نتایج تحقیق حاضر سمیت نانو ذرات اکسید روی را در غلظتهای بالا بر روی ارگان های تخمدان و رحم ثابت کرد، بنابراین مطالعات بیشتر برای کاهش این اثرات لازم است.
هدف: هدف از این مطالعه بررسی سمیت نانو ذرات اکسید روی بر روی بافت های تولیدمثلی موش صحرایی ماده است.
موارد و روش ها: 80 موش صحرایی ماده بالغ نژاد ویستار با وزن 200-180 گرم در هشت گروه شامل کنترل، شم (درمان شده با سالین) و شش گروه (تعداد هر گروه 10 عدد) که دوزهای مختلفی از نانو ذرات اکسید روی (4، 8، 25، 50، 100 و 200 میلی گرم به ازای هر کیلوگرم) را دوبار در هفته به مدت 4 هفته دریافت کردند، تقسیم شدند. در پایان مطالعه، موش ها پس از خون گیری کشته شدند؛ بافت تخمدان و رحم برای بررسی های هیستوپاتولوژیکی جدا شدند و نمونههای خونی به منظور تجزیه تحلیل بیوشیمیایی به آزمایشگاه منتقل شدند.
نتایج: تشخیص میکروسکوپی در بافت تخمدان شامل: افزایش جسم زرد، کیستهای فولیکولی، اینفیلتریشن سلولهای آماسی و فیبروز می باشد. تغییرات هیستوپاتولوژیکی در تخمدان وابسته به دوز می باشد. در بافت رحم ضایعات شامل: تخریب اپیتلیال و هایپرپلازی غدد آندومتر میباشد. سطح استروژن و پروژسترون در سرم موش ها در دوزهای کم افزایش، و در دوزهای بالا به صورت وابسته به دوز کاهش یافت.
نتیجه گیری: نتایج تحقیق حاضر سمیت نانو ذرات اکسید روی را در غلظتهای بالا بر روی ارگان های تخمدان و رحم ثابت کرد، بنابراین مطالعات بیشتر برای کاهش این اثرات لازم است.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. [1] Duruibe JO, Ogwuegbu MOc, Egwurugwu J. Heavy metal pollution and human biotoxic effects. Int J Phys Sci 2007; 2: 112–118.
2. [2] Wang ZL. Zinc oxide nanostructures: growth, properties and applications. J Phys Condens Matter 2004; 16: R829–R858. [DOI:10.1088/0953-8984/16/25/R01]
3. [3] Khlifi R, Hamza-Chaffai A. Head and neck cancer due to heavy metal exposure via tobacco smoking and professional exposure: a review. Toxicol Appl Pharmacol 2010; 248: 71–88. [DOI:10.1016/j.taap.2010.08.003]
4. [4] Xia T, Kovochich M, Liong M, Mädler L, Gilbert B, Shi H, et al. Comparison of the mechanism of toxicity of zinc oxide and cerium oxide nanoparticles based on dissolution and oxidative stress properties. ACS Nano 2008; 2: 2121–2134. [DOI:10.1021/nn800511k]
5. [5] Jaishankar M, Mathew BB, Shah MS, Murthy TPK, Gowda KRS. Biosorption of few heavy metal ions using agricultural wastes. J Environ Pollution Hum Health 2014; 2: 1–6.
6. [6] Haouas Z, Zidi I, Sallem A, Bhouri R, Ajina T, Zaouali M, et al. Reproductive toxicity of lead acetate in adult male rats: Histopathological and cytotoxic studies. J Cytol Histol 2015; 6: 293–299.
7. [7] Yamashita K, Yoshioka Y, Higashisaka K, Mimura K, Morishita Y, Nozaki M, et al. Silica and titanium dioxide nanoparticles cause pregnancy complications in mice. Nat Nanotechnol 2011; 6: 321–328. [DOI:10.1038/nnano.2011.41]
8. [8] Jo E, Seo G, Kwon JT, Lee M, Lee BC, Eom I, et al. Exposure to zinc oxide nanoparticles affects reproductive development and biodistribution in offspring rats. J Toxicol Sci 2013; 38: 525–530. [DOI:10.2131/jts.38.525]
9. [9] Gerhard I, Monga B, Waldbrenner A, Runnebaum B. Heavy metals and fertility. J Toxicol Environ Health A 1998; 54: 593–611. [DOI:10.1080/009841098158638]
10. [10] Watanabe T, Shimada T, Endo A. Effects of mercury compounds on ovulation and meiotic and mitotic chromosomes in female golden hamsters. Teratology 1982; 25:381–384. [DOI:10.1002/tera.1420250315]
11. [11] Nohynek GJ, Lademann J, Ribaud C, Roberts MS. Grey goo on the skin? Nanotechnology, cosmetic and sunscreen safety. Crit Rev Toxicol 2007; 37: 251–277. [DOI:10.1080/10408440601177780]
12. [12] Esmaeillou M, Moharamnejad M, Hsankhani R, Tehrani AA, Maadi H. Toxicity of ZnO nanoparticles in healthy adult mice. Environ Toxicol Pharmacol 2013; 35: 67–71. [DOI:10.1016/j.etap.2012.11.003]
13. [13] Mehta M, Hundal SS. Effect of sodium arsenite on reproductive organs of female Wistar rats. Arch Environ Occup Health 2016; 71: 16–25. [DOI:10.1080/19338244.2014.927346]
14. [14] Bires J, Maracek I, Bartko P, Biresova M, Weissova T. Accumulation of trace elements in sheep and the effects upon qualitative and quantitative ovarian changes. Vet Hum Toxicol 1995; 37: 349–356.
15. [15] Chattopadhyay S, Pal Ghosh S, Ghosh D, Debnath J. Effect of dietary co-administration of sodium selenite on sodium arsenite-induced ovarian and uterine disorders in mature albino rats. Toxicol Sci 2003; 75: 412–422. [DOI:10.1093/toxsci/kfg194]
16. [16] Kong L, Tang M, Zhang T, Wang D, Hu K, Lu W, et al. Nickel nanoparticles exposure and reproductive toxicity inhealthy adult rats. Int J Mol Sci 2014; 15: 21253–21269. [DOI:10.3390/ijms151121253]
17. [17] Flora SJ, Mittal M, Mehta A. Heavy metal induced oxidative stress and its possible reversal by chelation therapy. Indian J Med Res 2008; 128: 501–523.
18. [18] Nampoothiri LP, Agarwal A, Gupta S. Effect of co-exposure to lead and cadmium on antioxidant status in rat ovarian granulose cells. Arch Toxicol 2007; 81: 145–150. [DOI:10.1007/s00204-006-0133-x]
19. [19] Suhartono E, Amin Setyo Leksono T, Sasmito Djati M. Oxidative stress and kidney glycation in rats exposed cadmium. Int J Chem Eng Appl 2014; 5: 497–501. [DOI:10.7763/IJCEA.2014.V5.435]
20. [20] Aflanie I, Muhyi R, Suhartono E. Effect of heavy metal on malondialdehyde and advanced oxidation protein produtcs concentration: A focus on arsenic, cadmium, and mercury. J Med BiolEng 2015; 4: 332–337. [DOI:10.12720/jomb.4.4.332-337]
21. [21] Shaheen AA, el-Fattah AA. Effect of dietary zinc on lipid peroxidation, glutathione, protein thiols levels andsuperoxide dismutase activity in rat tissues. Int J Biochem Cell Biol 1995; 27: 89–95. [DOI:10.1016/1357-2725(94)00053-0]
22. [22] da Silva Faria T, de Bittencourt Brasil F, Sampaio FJ, da Fonte Ramos C. Effects of maternal undernutrition during lactation on estrogen and androgen receptor expressions in rat ovary at puberty. Nutrition 2010; 26: 993–999. [DOI:10.1016/j.nut.2009.09.027]
23. [23] Drummond AE, Findlay JK. The role of estrogen in folliculogenesis. Mol Cell Endocrinol 1999; 151: 57–64. [DOI:10.1016/S0303-7207(99)00038-6]
24. [24] Kumar TR, Wang Y, Lu N, Matzuk MM. Follicle stimulating hormone is required for ovarian follicle maturation but not male fertility. Nat Genet 1997; 15: 201–204. [DOI:10.1038/ng0297-201]
25. [25] Wang N, She Y, Zhu Y, Zhao H, Shao B, Sun H, et al. Effects of subchronic aluminum exposure on the reproductive function in female rats. Biol Trace Elem Res 2012; 145: 382–387. [DOI:10.1007/s12011-011-9200-0]
26. [26] Fazilati M. Investigation toxicity properties of zinc oxide nanoparticles on liver enzymes in male rat. Euro J Exp Bio 2013; 3: 104–109.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
