شنبه 1 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 17، شماره 3 - ( 2-1398 )
جلد 17 شماره 3 صفحات 200-195 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Borjizadeh A, Ahmadi H, Daneshi E, Roshani D, Fathi F, Abdi M, et al . The effect of adding Rosmarinic and Ascorbic acids to vitrification media on fertilization rate of the mice oocyte: An experimental study. IJRM 2019; 17 (3) :195-200
URL: http://ijrm.ir/article-1-1452-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-1452-fa.html
برجی‌زاده عبدالله، احمدی حمید، دانشی عرفان، روشنی دائم، فتحی فردین، عبدی مهداد، و همکاران.. بررسی اثر افزودن رزمارینیک و آسکوربیک اسید به محیط انجمادی تخمکهای موش، بر میزان باروری آنها. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1398; 17 (3) :195-200
عبدالله برجی‌زاده1 
، حمید احمدی2 ، عرفان دانشی1 ، دائم روشنی3 ، فردین فتحی4 ، مهداد عبدی2 ، شرکو ناصری4 ، مرتضی ابوذری‌پور* 5
، حمید احمدی2 ، عرفان دانشی1 ، دائم روشنی3 ، فردین فتحی4 ، مهداد عبدی2 ، شرکو ناصری4 ، مرتضی ابوذری‌پور* 5
1- گروه آناتومی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی کردستان، سنندج، ایران
2- گروه آناتومی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
3- گروه آمار، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی کردستان، سنندج، ایران
4- مرکز سلولی ملکولی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی کردستان، سنندج، ایران
5- گروه آناتومی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی کردستان، سنندج، ایران ، Abouzary.M@muk.ac.ir
2- گروه آناتومی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
3- گروه آمار، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی کردستان، سنندج، ایران
4- مرکز سلولی ملکولی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی کردستان، سنندج، ایران
5- گروه آناتومی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی کردستان، سنندج، ایران ، Abouzary.M@muk.ac.ir
چکیده: (2786 مشاهده)
مقدمه: انجماد تخمکها یک مرحله حیاتی برای گسترش و حفظ منابع ژنتیکی حیوانات است. تخمکها در طی پروسه انجماد از آسیبهای مورفولوژیکی و عملکردی قابل توجهی رنج میبرند. استرس اکسیداتیو یکی از عوارض نامطلوبی است که انجماد بر تخمکها اعمال میکند.
هدف: در مطالعه ی حاضر، اثرات آنتیاکسیدانی اسید آسکوربیک و اسید رزمارینیک را بر کیفیت باروری تخمکهای موش فریز –دفریز شده مورد بررسی قرار دادهایم.
موارد و روش ها: محلول پایه شامل پروپاندیول (7/5%) و اتیلن گلیکول (7/5%) بعنوان محیط تعادلی بوده و از پروپاندیول (15%)، اتیلن گلیکول (15%) و سوکروز نیم مولار بعنوان محیط انجمادی استفاده شد. در گروه اول (کنترل) هیچ ماده به محیط انجمادی افزوده نشد، در گروههای دوم و سوم به ترتیب نیم میلیمول اسید آسکوربیک و 105میکرومول اسید رزماری به محیط انجمادی افزوده گشت. در گروه چهارم ترکیب دوزهای مشابه اسیدرزماری و اسید آسکوربیک به محیط انجمادی اضافه گردید. تخمکهای موش برای مدت یک ماه در حالت انجماد حفظ شدند.
نتایج: افزودن اسید آسکوربیک و اسید رزماری به محلول انجماد، بقا و بلوغ تخمکهای ژرمینال و نیز میزان لقاح و رشد به مرحله 4 سلولی را بهبود بخشید. اسید اسکوربیک موثرتر از اسید رزماری بوده و زمانی که این دو ماده به شکل ترکیبی به محیط انجمادی اضافه شدند اثرات مطلوبتری بر کیفیت و تکامل پس از انجماد جنین ها اعمال کردند.
نتیجه گیری: این نتایج نشان میدهد که اضافه کردن غلظت تجمعی نیم میلیمول اسید آسکوربیک و 105میکرومول اسید رزماری به محیط انجمادی تخمک های ژرمینال موش اثرات کیفی ارزشمندی بر بقاء و بلوغ آنها دارد.
هدف: در مطالعه ی حاضر، اثرات آنتیاکسیدانی اسید آسکوربیک و اسید رزمارینیک را بر کیفیت باروری تخمکهای موش فریز –دفریز شده مورد بررسی قرار دادهایم.
موارد و روش ها: محلول پایه شامل پروپاندیول (7/5%) و اتیلن گلیکول (7/5%) بعنوان محیط تعادلی بوده و از پروپاندیول (15%)، اتیلن گلیکول (15%) و سوکروز نیم مولار بعنوان محیط انجمادی استفاده شد. در گروه اول (کنترل) هیچ ماده به محیط انجمادی افزوده نشد، در گروههای دوم و سوم به ترتیب نیم میلیمول اسید آسکوربیک و 105میکرومول اسید رزماری به محیط انجمادی افزوده گشت. در گروه چهارم ترکیب دوزهای مشابه اسیدرزماری و اسید آسکوربیک به محیط انجمادی اضافه گردید. تخمکهای موش برای مدت یک ماه در حالت انجماد حفظ شدند.
نتایج: افزودن اسید آسکوربیک و اسید رزماری به محلول انجماد، بقا و بلوغ تخمکهای ژرمینال و نیز میزان لقاح و رشد به مرحله 4 سلولی را بهبود بخشید. اسید اسکوربیک موثرتر از اسید رزماری بوده و زمانی که این دو ماده به شکل ترکیبی به محیط انجمادی اضافه شدند اثرات مطلوبتری بر کیفیت و تکامل پس از انجماد جنین ها اعمال کردند.
نتیجه گیری: این نتایج نشان میدهد که اضافه کردن غلظت تجمعی نیم میلیمول اسید آسکوربیک و 105میکرومول اسید رزماری به محیط انجمادی تخمک های ژرمینال موش اثرات کیفی ارزشمندی بر بقاء و بلوغ آنها دارد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. [1] Borini A, Cattoli M, Bulletti C, Coticchio G. Clinical efficiency of oocyte and embryo cryopreservation. Ann N Y Acad Sci 2008; 1127: 49-58. [DOI:10.1196/annals.1434.012]
2. [2] Gupta MK, Uhm SJ, Lee HT. Effect of vitrification and betamercaptoethanol on reactive oxygen species activity and in vitro development of oocytes vitrified before or after in vitro fertilization. Fertil Steril 2010; 93: 2602-2607. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2010.01.043]
3. [3] Comporti M. Three models of free radical-induced cell injury. Chem Biol Interact 1989; 72: 1-56. [DOI:10.1016/0009-2797(89)90016-1]
4. [4] Freeman BA, Crapo JD. Biology of disease: free radicals and tissue injury. Lab Invest 1982; 47: 412-426.
5. [5] Odani M, Komatsu Y, Oka S, Iwahashi H. Screening of genes that respond to cryopreservation stress using yeast DNA microarray. Cryobiology 2003; 47: 155-164. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2003.09.001]
6. [6] Dinara S, Sengoku K, Tamate K, Horikawa M, Ishikawa M. Effects of supplementation with free radical scavengers on the survival and fertilization rates of mouse cryopreserved oocytes. Hum Reprod 2001; 16: 1976-1981. [DOI:10.1093/humrep/16.9.1976]
7. [7] Lane M, Maybach JM, Gardner DK. Addition of ascorbate during cryopreservation stimulates subsequent embryo development. Hum Reprod 2002; 17: 2686-2693. [DOI:10.1093/humrep/17.10.2686]
8. [8] Al-Sereiti MR, Abu-Amer KM, Sena P. Pharmacology of rosemary (rosmarinus officinalis linn.) and its therapeutic potentials. Indian J Exp Biol 1999; 37: 124-130.
9. [9] Huang SS, Zheng RL. Rosmarinic acid inhibits angiogenesis and its mechanism of action in vitro. Cancer Lett 2006; 239: 271-280. [DOI:10.1016/j.canlet.2005.08.025]
10. [10] Hong JY, Yong HY, Lee BC, Hwang WS, Lim JM, Lee ES. Effects of amino acids on maturation, fertilization and embryo development of pig follicular oocytes in two IVM media. Theriogenology 2004; 62: 1473-1482. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2004.02.013]
11. [11] Byrd JA, Pardue SL, Hargis BM. Effect of ascorbate on luteinizing hormone stimulated progesterone biosynthesis in chicken granulosa cells in vitro. Comparative biochemistry and physiology. Comp Biochem Physiol Comp Physiol 1993; 104: 279-281. [DOI:10.1016/0300-9629(93)90317-W]
12. [12] Murray AA, Molinek MD, Baker SJ, Kojima FN, Smith MF, Hillier 1S, et al. Role of ascorbic acid in promoting follicle integrity and survival in intact mouse ovarian follicles in vitro. Reproduction 2001; 121: 89-96. [DOI:10.1530/rep.0.1210089]
13. [13] Luño V, Gil L, Olaciregui M, González N, Jerez RA, de Blas I. Rosmarinic acid improves function and in vitro fertilising ability of boar sperm after cryopreservation. Cryobiology 2014; 69: 157-162. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2014.07.002]
14. [14] Tarin JJ, Brines J, Cano A. Antioxidants may protect against infertility. Hum Reprod 1998; 13: 1415-1416. [DOI:10.1093/humrep/13.6.1415]
15. [15] du Plessis SS, Harlev A, Mohamed MI, Habib E, Kothandaraman N, Cakar Z. Physiological roles of reactive oxygen species (ROS) in the reproductive system. Oxidative Stress in Human Reproduction 2017: 47-64. [DOI:10.1007/978-3-319-48427-3_3]
16. [16] Cao YX, Xing Q, Li L, Cong L, Zhang ZG, Wei ZL, et al. Comparison of survival and embryonic development in human oocytes cryopreserved by slow-freezing and vitrification. Fertil Steril 2009; 92: 1306-1311. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.08.069]
17. [17] Blondin P, Coenen K, Sirard MA. The impact of reactive oxygen species on bovine sperm fertilizing ability and oocyte maturation. J Androl 1997; 18: 454-460.
18. [18] Ott M, Gogvadze V, Orrenius S, Zhivotovsky B. Mitochondria, oxidative stress and cell death. Apoptosis 2007; 12: 913-922. [DOI:10.1007/s10495-007-0756-2]
19. [19] Paszkowski T, Clarke RN. The graafian follicle is a site of Lascorbate accumulation. J Assist Reprod Genet 1999; 16: 41-45. [DOI:10.1023/A:1022597629622]
20. [20] Mahfouz MM, Kummerow FA. Vitamin C or vitamin B6 supplementation prevent the oxidative stress and decrease of prostacyclin generation in homocysteinemic rats. Int J Biochem Cell Biol 2004; 36: 1919-1932. [DOI:10.1016/j.biocel.2004.01.028]
21. [21] Lázár L. The role of oxidative stress in female reproduction and pregnancy. Oxidative Stress and Diseases 2012: 313-336.
22. [22] Oguntibeju OO. The biochemical, physiological and therapeutic roles of ascorbic acid. Afr J Biotechnol 2008; 7: 4700-4705.
23. [23] Ruiz JJ, Aldaz A, Dominguez M. Mechanism of L-ascorbic acid oxidation and dehydro-L-ascorbic acid reduction on a mercury electrode. I. Acid medium. Canad J Chem 1977; 55: 2799-2806. [DOI:10.1139/v77-389]
24. [24] Del Collado M, Saraiva NZ, Lopes FL, Gaspar RC, Padilha LC, Costa RR, et al. Influence of bovine serum albumin and fetal bovine serum supplementation during in vitro maturation on lipid and mitochondrial behaviour in oocytes and lipid accumulation in bovine embryos. Reprod Fertil Dev 2015; 28: 1721-1732. [DOI:10.1071/RD15067]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
