پنجشنبه 6 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 9، شماره 3 - ( 4-1390 )
جلد 9 شماره 3 صفحات 186-177 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Ahmed M, Ahamed R N, Aladakatti R H, Ghodesawar M A G. Effect of benzene extract of Ocimum sanctum leaves on cauda epididymal spermatozoa of rats. IJRM 2011; 9 (3) :177-186
URL: http://ijrm.ir/article-1-234-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-234-fa.html
اثر عصاره بنزنی برگهای Ocimum sanctum بر روی اسپرم های دمی اپیدیدیم در موش-های بزرگ آزمایشگاهی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1390; 9 (3) :177-186
چکیده: (2667 مشاهده)
مقدمه: مطالعات اخیر نشان داده اند که عصاره بنزنی برگهای Ocimum sanctum (O. sanctum) باعث تغییرات ساختمانی در سلول های اپی تلیایی در cauda epididymis، بهبودی ثانویه در اپی تلیوم سیمنی فروس و باروری موشهای نر نژاد آلبینو می شود.
هدف: هدف ما در این بررسی، مطالعه اثر عصاره بنزنی برگ های O. sanctum بر روی پارامترهای اسپرمهای دمی اپیدیدیم، مورفولوژی و ارگانل های سطحی تر ساختمانی آن ها در رتهای آلبینو بود.
مواد و روش ها: 20 عدد رت ویستار نر پس از تقسیم به 2 گروه کنترل و مورد (هر کدام 10 عدد) وارد مطالعه گردیدند. گروه مورد عصاره بنزنی برگ های O. sanctum (mg/kg/day250) برای 48 روز پشت سر هم دریافت کردند. 5 حیوان از هر گروه بعنوان تست باروری استفاده شدند. 24 ساعت بعد از آخرین دوز، بقیه حیوانات کنترل (5 عدد) و مورد (5 عدد) بوسیله قطع نخاع گردنی کشته شدند و از پلاسمای ناحیه دمی اپیدیدیم آنها جهت آنالیز اسپرم استفاده شد و سپس اسپرم ها توسط میکروسکوپ الکترونی اسکنینگ (SEM) و میکروسکوپ الکترونی ترانزیشن (TEM) مطالعه شدند.
نتایج: آنالیز اسپرم گروه مورد در مقایسه با گروه شاهد نشان دهنده کاهش معنی دار در تعداد، حرکت و سرعت اسپرم ها و افزایش آنومامی های اسپرمی (p≤0.001) بود. SEM و TEM در حیوانات گروه مورد نشان دهنده تغییرات مورفولوژیک در غشاء پلاسما و غشاء آکروزوم اسپرم ها، تشکیل قطرات شبیه بالون در سیتوپلاسم در ناحیه میانی و همچنین دم غیرطبیعی و تحلیل و بهم ریختگی میتوکندری لایه های میتوکندریایی اسپرمها بود.
نتیجه گیری: اثرات مشاهده شده در این مطالعه ممکن است نتیجه ای از تغییرات کلی در دم اپی دیدیم باشد که احتمالا در اثر عواقب کاهش آندوژن ناشی از اثرات ضد آندروژنی برگهای O. sanctum است.
هدف: هدف ما در این بررسی، مطالعه اثر عصاره بنزنی برگ های O. sanctum بر روی پارامترهای اسپرمهای دمی اپیدیدیم، مورفولوژی و ارگانل های سطحی تر ساختمانی آن ها در رتهای آلبینو بود.
مواد و روش ها: 20 عدد رت ویستار نر پس از تقسیم به 2 گروه کنترل و مورد (هر کدام 10 عدد) وارد مطالعه گردیدند. گروه مورد عصاره بنزنی برگ های O. sanctum (mg/kg/day250) برای 48 روز پشت سر هم دریافت کردند. 5 حیوان از هر گروه بعنوان تست باروری استفاده شدند. 24 ساعت بعد از آخرین دوز، بقیه حیوانات کنترل (5 عدد) و مورد (5 عدد) بوسیله قطع نخاع گردنی کشته شدند و از پلاسمای ناحیه دمی اپیدیدیم آنها جهت آنالیز اسپرم استفاده شد و سپس اسپرم ها توسط میکروسکوپ الکترونی اسکنینگ (SEM) و میکروسکوپ الکترونی ترانزیشن (TEM) مطالعه شدند.
نتایج: آنالیز اسپرم گروه مورد در مقایسه با گروه شاهد نشان دهنده کاهش معنی دار در تعداد، حرکت و سرعت اسپرم ها و افزایش آنومامی های اسپرمی (p≤0.001) بود. SEM و TEM در حیوانات گروه مورد نشان دهنده تغییرات مورفولوژیک در غشاء پلاسما و غشاء آکروزوم اسپرم ها، تشکیل قطرات شبیه بالون در سیتوپلاسم در ناحیه میانی و همچنین دم غیرطبیعی و تحلیل و بهم ریختگی میتوکندری لایه های میتوکندریایی اسپرمها بود.
نتیجه گیری: اثرات مشاهده شده در این مطالعه ممکن است نتیجه ای از تغییرات کلی در دم اپی دیدیم باشد که احتمالا در اثر عواقب کاهش آندوژن ناشی از اثرات ضد آندروژنی برگهای O. sanctum است.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Akbarsha MA, Averal HI. Epididymis as a target organ for the toxic effect of vincristine: light microscopic changes in the epididymis epithelial cell types. Biomedical Letters 1996; 54: 133-146.
2. Girini MM, Ahamed RN, Aladakatti RH. Effect of graded doses of Momordica charantia seed extract on rat sperm: scanning electron microscope study. J Basic Clin Physiol Pharmacol 2005; 16: 53-66. [DOI:10.1515/JBCPP.2005.16.1.53]
3. Aladakatti RH, Ahamed RN. Ultrastructural changes in Leydig cell and cauda epididymal spermatozoa induced by Azadirachta indica leaves in albino rats. Phytother Res 2005; 19: 756-766. [DOI:10.1002/ptr.1710]
4. Lohiya NK, Manivannan B, Garg S. Toxicological investigations on the methanol sub-fraction of the seeds of Carica papaya as a male contraceptive in albino rats. Reprod Toxicol 2006; 22: 461-468. [DOI:10.1016/j.reprotox.2006.01.002]
5. Gupta RS, Kachhawa JB. Evaluation of contraceptive activity of methanol extract of Dendrophthoe falcata stem in male albino rats. J Ethnopharmacol 2007; 112: 215-218. [DOI:10.1016/j.jep.2007.02.022]
6. Chauhan A, Agarwal M. Reversible changes in the antifertility induced by Aegle marmelos in male albino rats. Syst Biol Reprod Med 2008; 54: 240-246. [DOI:10.1080/19396360802516856]
7. Kumar S, Biswas S, Mandal D, Roy HN, Chakraborty S, Kabir SN, et al. Chenopodium album seed extract: a potent sperm-immobilizing agent both in vitro and in vivo. Contraception 2007; 75: 71-78. [DOI:10.1016/j.contraception.2006.07.015]
8. Dixit VP. Plant products/non-steroidal compounds affecting fertility in the Indian desert gerbil, Meriones hurrianae Jerdon. In: Prakash I, Ghosh PK. Rodents in Indian Agriculture. 1st Ed. Jodhpur India; Scientific Publishers; 1992: 595-604.
9. Chopra RN, Chopra IC, Handa KL, Kapoor LD. Indigenous drugs of India. UN Dhar, Pvt. Ltd.; Calcutta; 1993.
10. Ocimum sanctum. The Indian home remedy. In: Current Medical Scene, March-April 1992 (Edited and published by S. Rajeshwari, Cipla Ltd., Bombay Central, Bombay).
11. Gupta SK, Prakash J, Srivastava S. Validation of claim of Tulsi, Ocimum sanctum Linn as a medicinal plant. Indian J Exp Biol 2002; 40: 765–773.
12. Ahmed M, Ahamed RN, Aladakatti RH, Ghosesawar MG. Reversible anti-fertility effect of benzene extract of Ocimum sanctum leaves on sperm parameters and fructose content in rats. J Basic Clin Physiol Pharmacol 2002; 13: 51-59. [DOI:10.1515/JBCPP.2002.13.1.51]
13. Khanna S, Gupta SR, Grover JK. Effect of long term feeding of Tulsi (Ocimum sanctum Linn) on reproductive performance of adult albino rats. Indian J Exp Biol 1986; 24: 302-304.
14. Kantak NM, Gogate MG. Effect of short term administration of Tulsi (Ocimum sanctum Linn.) on reproductive behaviour of adult male rats. Indian J Physiol Pharmacol 1992; 36: 109-111.
15. Sardessai SR, Borker AS, Abraham ME. Effects of short term administration of Tulsi leaves on sexual behaviour in female rats. Indian J Physiol Pharmacol 1999; 43: 398-400.
16. Ahmed M, Aladakatti RH, Deepthi KR, Nazeer Ahamed R. Reversible histoarchitecture study of testis and cauda epididymis and changes in cauda epididymal epithelial cell types on treatment with benzene extract of Ocimum sanctum leaves in albino rats. Oriental Pharm Exp Med 2008; 8: 111-124. [DOI:10.3742/OPEM.2008.8.2.111]
17. Ahmed M, Nazeer Ahamed R, Aladakatti RH. Effect of benzene extract of Ocimum sanctum leaves on cauda epididymis of albino rats. J Basic Clin Physiol Pharmacol 2009; 20: 29-41. [DOI:10.1515/JBCPP.2009.20.1.29]
18. Mukhtar Ahmed, Nazeer Ahamed R, Aladakatti RH Ghodesawar MG. Dose dependent effect of benzene extract of Ocimum sanctum leaves on cauda epididymal spermatozoa of albino rats. Oriental Pharm Exp Med 2009; 9: 339-349. [DOI:10.3742/OPEM.2009.9.4.339]
19. WHO Protocol, LG-06. Extraction and fractionation for biological and phytochemical studies. A.P.J.F/I.P, A; 1983: 1001-1083.
20. Besley MA, Eliarson R, Gallegos AJ, Moghissi KS, Paulsen CA, Prasad M RN. Laboratory manual for the examination of human semen and semen cervical mucus interaction. WHO Press concern; Singapore; 1980.
21. Ratnasooriya WD. Effect of Atropine on fertility of female rat and sperm motility. Indian J Exp Boil 1984; 22: 463-466.
22. Bauer JD, Ackermen PG, Toro G. Clinical Laboratory Methods. C.V. Mosty co.; St. Louis; 1974.
23. Aladakatti RH, Ahamed RN. Effect of Azadirachta indica leaves on rat spermatozoa. Indian J Exp Biol 1999; 37: 1251-1254.
24. Reynolds ES. The use of lead citrate at high pH as an electron-opaque stain in electron microscopy. J Cell Biol 1963; 17: 208-212. [DOI:10.1083/jcb.17.1.208]
25. Ostle B. Statistics in Research: Basic Concepts and Techniques for Research Workers. 4thEd. Ames; Iowa State University Press; 1988; 664.
26. Cooper TG. Epididymis. In: Neill JD, Knobil E, eds. Encyclopedia of reproduction 2nd Ed. San Diego; Academic Press; 1998: 1–17.
27. Kirchhoff C. Molecular aspects of epididymal function and sperm maturation. In: Waites GMH, Frick J, Baker GWH, eds. Current advances in andrology. Bologna Italy; Monduzzi; 1997: 253–259.
28. de Mello FB, Jacobus D, de Carvalho KC, de Mello JR. Effects of Lantana camara (Verbenaceae) on rat fertility. Vet. Hum Toxicol 2003; 45: 20-23.
29. Khouri NA, El-Akawi Z. Antiandrogenic activity of Ruta graveolens L in male Albino rats with emphasis on sexual and aggressive behavior. Neuro Endocrinol Lett 2005; 26: 823-829.
30. El-Dwairi QA, Banihani SM. Histo-functional effects of Peganum harmala on male rat's spermatogenesis and fertility. Neuro Endocrinol Lett 2007; 28: 305-310.
31. El-Ashmawy IM, Saleh A, Salama OM. Effects of marjoram volatile oil and grape seed extract on ethanol toxicity in male rats. Basic Clin Pharmacol Toxicol 2007; 101: 320-327. [DOI:10.1111/j.1742-7835.2007.00125.x]
32. Chinoy NJ, D'Souza JM, Padman P. Contraceptive efficacy of Carica papya seed extract in male mice (Mus musculus). Phytothera Res 1995; 9: 30-36. [DOI:10.1002/ptr.2650090108]
33. Rao MV, Roy GK. Biochemical and morphological changes of spermatozoa in progestin and androgen injected rats. Indian J Exp Biol 1993; 31: 12-15.
34. Aladakatti RH, Nazeer Ahamed R, Ahmed M, Ghodesawar MG. Sperm parameters changes induced by Azadirachta indica in albino rats. J Basic Clin Physiol Pharmacol 2001; 12: 69-77. [DOI:10.1515/JBCPP.2001.12.1.69]
35. Morton DB. Acrosomal enzymes: Immunochemical localization of acrosin and hyaluronidase in ram spermatozoa. J Reprod Fertil 1975; 45: 375-378. [DOI:10.1530/jrf.0.0450375]
36. Breed WG. Sperm head structure in the hydromyinae (Rodentia: Muridae): A further evolutionary development of the subacrosomal space in mammals. Gamete Res 1984; 10: 31-34. [DOI:10.1002/mrd.1120100105]
37. Fawcett DW. The mammalian spermatozoon. Dev Biol 1975; 44: 394-436. [DOI:10.1016/0012-1606(75)90411-X]
38. Baltz JM, Williams PO, Cone RA. Dense fibres protect mammalian sperm against damage. Biol Reprod 1990; 43: 485-491. [DOI:10.1095/biolreprod43.3.485]
39. Rao MV. Effect of alcoholic extract of Solanum xanthocarpum seeds in adult male rats. Indian J Exp Biol 1988; 26: 95-98.
40. Delgado NM, Sánchez-Vázquez ML, Hernández O, Reyes R. Correlation between sperm membrane destabilization by heparin and aniline blue staining as membrane integrity index. Arch Androl 1998; 40:147-152. [DOI:10.3109/01485019808987937]
41. Hikim AP, Lue YH, Wang C, Reutrakul V, Sangsuwan, R, Swerdloff RS. Post testicular antifertility action of triptolide in the male rat: evidence for severe impairment of cauda epididymal sperm ultrastructure. J Androl 2000; 21: 431–437.
42. Lohiya NK, Manivannan B, Mishra PK, Pathak N, Sriram S, Bhande SS, et al. Chloroform extract of Carica papaya seeds induces long-term reversible azoospermia in langur monkey. Asian J Androl 2002; 4: 17–26.
43. Faisal K, Periasamy VS, Sahabudeen S, Radha A, Anandhi R, Akbarsha MA. Spermatotoxic effect of aflatoxin B1 in rat: extrusion of outer dense fibres and associated axonemal microtubule doublets of sperm flagellum. Reproduction 2008; 135: 303–310. [DOI:10.1530/REP-07-0367]
44. Cummins JM. The effect of artificial cryptorchidism in the rabbit on the transport and survival of spermatozoa in the female reproductive tract. J Reprod Fertil 1973; 33: 469-479. [DOI:10.1530/jrf.0.0330469]
45. Bedford JM. Adaptations of male reproductive tract and the fate of spermatozoa following vasectomy in the rabbit, rhesus monkey, hamster and rat. Biol Reprod 1976; 14: 118-142. [DOI:10.1095/biolreprod14.2.118]
46. Agnes VF, Akbarsha MA. Spermatotoxic effect of aflatoxin B (1) in the albino mouse. Food Chem Toxicol 2003; 41: 119–130. [DOI:10.1016/S0278-6915(02)00171-0]
47. Hermo L, Dworkin J, Oko R. Role of epithelial clear cells of the rat epididymis in the disposal of the contents of cytoplasmic droplets detached from spermatozoa. Am J Anat 1988; 183: 107- 124. [DOI:10.1002/aja.1001830202]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
