چهارشنبه 26 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 10، شماره 5 - ( 7-1391 )
جلد 10 شماره 5 صفحات 482-477 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Dehghani Firouzabadi R, Mohammadian F, Mashayekhy M, Davar R, Eftekhar M. The correlation between follicular fluid pregnancy-associated plasma protein A levels, fertilization, and embryo quality in GnRH agonist and GnRH antagonist protocols in ART cycles. IJRM 2012; 10 (5) :477-482
URL: http://ijrm.ir/article-1-306-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-306-fa.html
دهقانی فیروزآبادی راضیه، محمدیان فرناز، مشایخی مهری، داور رباب، افتخار مریم. بررسی ارتباط PPAP-A مایع فولیکولی، میزان باروری و کیفیت جنین در دو پروتکل درمانی آگونیست GnRH و آنتاگونیست GnRH در سیکل های IVF/ET. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1391; 10 (5) :477-482
راضیه دهقانی فیروزآبادی1 
، فرناز محمدیان* 2، مهری مشایخی3 ، رباب داور1 ، مریم افتخار1
، فرناز محمدیان* 2، مهری مشایخی3 ، رباب داور1 ، مریم افتخار1
1- گروه زنان و زایمان، مرکز تحقیقاتی درمانی ناباروری یزد، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
2- گروه زنان و زایمان، بیمارستان آیت الله موسوی، دانشگاه علوم پزشکی زنجان، زنجان، ایران ، Mohammadian_farnaz@yahoo.com
3- گروه زنان و زایمان، دانشگاه علوم پزشکی اراک، اراک، ایران
2- گروه زنان و زایمان، بیمارستان آیت الله موسوی، دانشگاه علوم پزشکی زنجان، زنجان، ایران ، Mohammadian_farnaz@yahoo.com
3- گروه زنان و زایمان، دانشگاه علوم پزشکی اراک، اراک، ایران
چکیده: (2572 مشاهده)
مقدمه: تعیین لقاح اووسیت و کیفیت جنین یکی از مهمترین اهداف در سیکل های ART میباشد. مایع فولیکولی یک محیط مهم برای رشد اووسیت ایجاد میکند و بعضی از بیوکمیکال ها مایع فولیکولی مثل pregnancy-associated plasma protein-A (PAPP-A) ممکن است نقش مهمی در پیش گویی میزان موفقیت ART داشته باشند.
هدف: این مطالعه برای ارزیابی اینکه آیا تفاوتی در میزان PAPP-A در مایع فولیکولی، لقاح و کیفیت جنینها در دو پروتکل آگونیست Long GnRH و پروتکل آنتاگونیست Flexible مولتی دوز در سیکلهای ART وجود دارد یا خیر انجام شد.
مواد و روش ها: در این بررسی مقطعی، تعداد 100 بیمار که کاندید سیکل ART بودند، وارد مطالعه و به دو گروه: تحت درمان با پروتکل آگونیست Long GnRH (51 نفر) و تحت درمان با پروتکل آنتاگونیست Flexible مولتی دوز (49 نفر)، تقسیم شدند. نمونه مایع فولیکولی از فولیکول رسیده بیمار در زمان پونکسیون گرفته و سطح PPAP-A ، لقاح و کیفیت جنین از همان اووسیت بدست آمده، در هر دو گروه ارزیابی شد.
نتایج: تفاوت معنی داری در میانگین سطح PPAP-A مایع فولیکولی در گروه تحت درمان با پروتکل آگونیست GnRH نسبت به پروتکل آنتاگونیست GnRH دیده نشد (به ترتیب 1/4±3/5 در مقابل 1/9±3/8). میانگین سطح PPAP-A مایع فولیکولی در اووسیت لقاح یافته و جنین با کیفیت خوب در دو گروه اختلاف معناداری نداشت.
نتیجه گیری: بر اساس یافتههای این مطالعه، تفاوت قابل توجهی در سطح PPAP-A مایع فولیکولی در سیکلهای با پروتکل Long GnRH agonist و Multiple-dose flexible GnRH antagonist مشاهده نشد.
هدف: این مطالعه برای ارزیابی اینکه آیا تفاوتی در میزان PAPP-A در مایع فولیکولی، لقاح و کیفیت جنینها در دو پروتکل آگونیست Long GnRH و پروتکل آنتاگونیست Flexible مولتی دوز در سیکلهای ART وجود دارد یا خیر انجام شد.
مواد و روش ها: در این بررسی مقطعی، تعداد 100 بیمار که کاندید سیکل ART بودند، وارد مطالعه و به دو گروه: تحت درمان با پروتکل آگونیست Long GnRH (51 نفر) و تحت درمان با پروتکل آنتاگونیست Flexible مولتی دوز (49 نفر)، تقسیم شدند. نمونه مایع فولیکولی از فولیکول رسیده بیمار در زمان پونکسیون گرفته و سطح PPAP-A ، لقاح و کیفیت جنین از همان اووسیت بدست آمده، در هر دو گروه ارزیابی شد.
نتایج: تفاوت معنی داری در میانگین سطح PPAP-A مایع فولیکولی در گروه تحت درمان با پروتکل آگونیست GnRH نسبت به پروتکل آنتاگونیست GnRH دیده نشد (به ترتیب 1/4±3/5 در مقابل 1/9±3/8). میانگین سطح PPAP-A مایع فولیکولی در اووسیت لقاح یافته و جنین با کیفیت خوب در دو گروه اختلاف معناداری نداشت.
نتیجه گیری: بر اساس یافتههای این مطالعه، تفاوت قابل توجهی در سطح PPAP-A مایع فولیکولی در سیکلهای با پروتکل Long GnRH agonist و Multiple-dose flexible GnRH antagonist مشاهده نشد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Suh J, Lee E, Hwang S, Yoon S, Yoon B, Bae D, et al. Dose of GnRH agonist (nafarelin acetate) affects intrafollicular PAPP-A expression in controlled ovarian hyperstimulation cycle. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2004;112: 65-68. [DOI:10.1016/S0301-2115(03)00317-8]
2. Choi YS, Ku SY, Jee BC, Suh CS, Choi YM, Kim JG, et al. Comparison of follicular fluid IGF-I, IGF-II, IGFBP-3, IGFBP-4 and PAPP-A concentrations and their ratios between GnRH agonist and GnRH antagonist protocols for controlled ovarian stimulation in IVF-embryo transfer patients. Hum Reprod 2006; 21: 2015-2021. [DOI:10.1093/humrep/del091]
3. Revelli A, Piane L, Casano S, Molinari E, Massobrio M, Rinaudo P. Follicular fluid content and oocyte quality: from single biochemical markers to metabolomics. Reprod Biol Endocrinol 2009; 7: 40. [DOI:10.1186/1477-7827-7-40]
4. Knight PG, Glister C. TGF-{beta} superfamily members and ovarian follicle development. Reproduction 2006; 132: 191-206. [DOI:10.1530/rep.1.01074]
5. Choi D, Hwang S, Lee E, Park C, Yoon B, Lee J, et al. Recombinant FSH and pregnancy-associated plasma protein. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2003; 109: 171-176. [DOI:10.1016/S0301-2115(02)00514-6]
6. Porter R, Smith W, Craft I, Abdulwahid N, Jacobs H. Induction of ovulation for in-vitro fertilisation using buserelin and gonadotropins. Lancet 1984; 2: 1284-1285. [DOI:10.1016/S0140-6736(84)92840-X]
7. Diedrich K, Diedrich C, Santos E, Zoll C, Al-Hasani S, Reissmann T, et al. Suppression of the endogenous luteinizing hormone surge by the gonadotrophin-releasing hormone antagonist Cetrorelix during ovarian stimulation. Hum Reprod 1994; 9: 788-791. [DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a138597]
8. Parinaud J, Beaur A, Bourreau E, Vieitez G, Pontonnier G. Effect of a luteinizing hormone-releasing hormone agonist (Buserelin) on steroidogenesis of cultured human preovulatory granulosa cells. Fertil Steril 1988; 50: 597-602. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)60190-5]
9. Ludwig M, Katalinic A, Diedrich K. Use of GnRH antagonists in ovarian stimulation for assisted reproductive technologies compared to the long protocol. Arch Gynecol Obstet 2001; 265: 175-182. [DOI:10.1007/s00404-001-0267-2]
10. Al-Inany H, Aboulghar M. GnRH antagonist in assisted reproduction: a Cochrane review. Hum Reprod 2002; 17: 874-875. [DOI:10.1093/humrep/17.4.874]
11. Aflatoonian A, Mashayekhy M, Mohamadian F, Mansoori Moghaddam M. The correlation between follicular fluid anti-mullerian hormone levels and fertilization and embryo quality in ART cycles. Iran J Reprod Med 2010; 8: 157-160.
12. Leroy JL, Vanholder T, Delanghe JR, Opsomer G, Van Soom A, Bols PE, et al. Metabolic changes in follicular fluid of the dominant follicle in high-yielding dairy cows early post partum. Theriogenology 2004; 62: 1131-1143. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2003.12.017]
13. Taymor M. The regulation of follicle growth: some clinical implications in reproductive endocrinology. Fertil Steril 1996; 65: 235-247. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)58077-7]
14. Brus L, Lambalk C, De Koning J, Helder M, Janssens R, Schoemaker J. Specific gonadotrophin-releasing hormone analogue binding predominantly in human luteinized follicular aspirates and not in human pre-ovulatory follicles. Hum Reprod 1997; 12: 769-773. [DOI:10.1093/humrep/12.4.769]
15. Raga F, Casan EM, Kruessel J, Wen Y, Bonilla-Musoles F, Polan ML. The role of gonadotropin-releasing hormone in murine preimplantation embryonic development. Endocrinology 1999; 140: 3705-3712. [DOI:10.1210/endo.140.8.6899]
16. Funston RN, Seidel GE Jr. Gonadotropin-releasing hormone increases cleavage rates of bovine oocytes fertilized in vitro. Biol Reprod 1995; 53: 541-545. [DOI:10.1095/biolreprod53.3.541]
17. Erickson GF, Shimasaki S. The physiology of folliculogenesis: the role of novel growth factors. Fertil Steril 2001; 76: 943-949. [DOI:10.1016/S0015-0282(01)02859-X]
18. Conover CA, Oxvig C, Overgaard MT, Christiansen M, Giudice LC. Evidence that the insulin-like growth factor binding protein-4 protease in human ovarian follicular fluid is pregnancy associated plasma protein-A. J Clin Endocrinol Metab 1999; 84: 4742-4745. [DOI:10.1210/jcem.84.12.6342]
19. Sudo N, Shimizu T, Kawashima C, Kaneko E, Tetsuka M, Miyamoto A. Insulin-like growth factor-I (IGF-I) system during follicle development in the bovine ovary: relationship among IGF-I, type 1 IGF receptor (IGFR-1) and pregnancy-associated plasma protein-A (PAPP-A). Mol Cell Endocrinol 2007; 264: 197-203. [DOI:10.1016/j.mce.2006.10.011]
20. Moos J, Filova V, Pavelkova J, Moosova M, Peknicova J, Rezabek K. Follicular fluid and serum levels of inhibin A and pregnancy-associated plasma protein A in patients undergoing IVF. Fertil Steril 2009; 91: 1739-1744. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.01.102]
21. Hourvitz A, Widger AE, Filho FLT, Chang RJ, Adashi EY, Erickson GF. Pregnancy-associated plasma protein-A gene expression in human ovaries is restricted to healthy follicles and corpora lutea. J Clin Endocrinol Metab 2000; 85: 4916-4919. [DOI:10.1210/jcem.85.12.7169]
22. Conover CA, Faessen GF, Ilg KE, Chandrasekher YA, Christiansen M, Overgaard MT, et al. Pregnancy-Associated Plasma Protein-A Is the Insulin-Like Growth Factor Binding Protein-4 Protease Secreted by Human Ovarian Granulosa Cells and Is a Marker of Dominant Follicle Selection and the Corpus Luteum. Endocrinol 2001; 142: 2155-2158. [DOI:10.1210/endo.142.5.8286]
23. Rivera GM, Chandrasekher YA, Evans AC, Giudice LC, Fortune JE. A potential role for insulin-like growth factor binding protein-4 proteolysis in the establishment of ovarian follicular dominance in cattle. Biol Reprod 2001; 65: 102-111. [DOI:10.1095/biolreprod65.1.102]
24. Wang TH, Chang CL, Wu HM, Chiu YM, Chen CK, Wang HS. Insulin-like growth factor-II (IGF-II), IGF-binding protein-3 (IGFBP-3), and IGFBP-4 in follicular fluid are associated with oocyte maturation and embryo development. Fertil Steril 2006; 86: 1392-1401. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2006.03.064]
25. Depa-Martynow M, Jedrzejczak P, Pawelczyk L. Pronuclear scoring as a predictor of embryo quality in in vitro fertilization program. Folia Histochem Cytobiol 2007; 45 (Suppl.): 85-89.
26. Rezabek K, Moosova M, Pavelkova J, Moos J, Filova V. Follicular fluid and serum concentrations of PAPP-A in OHSS risk group of women undergoing IVF stimulation. Ceska Gynekol 2009; 74: 80-84.
27. Stanger JD, Yovich JL, Grudzinskas JG, Bolton AE. Relation between pregnancy-associated plasma protein A (PAPP-A) in human peri-ovulatory follicle fluid and the collection and fertilization of human ova in vitro. Br J Obstet Gynaecol 1985; 92: 786-792. [DOI:10.1111/j.1471-0528.1985.tb03047.x]
28. Hugues JN, Durnerin IC. Revisiting gonadotrophin-releasing hormone agonist protocols and management of poor ovarian responses to gonadotrophins. Hum Reprod Update 1998; 4: 83-101. [DOI:10.1093/humupd/4.1.83]
29. Racowsky C, Prather AL, Johnson MK, Olvera SP, Gelety TJ. Prematurely condensed chromosomes and meiotic abnormalities in unfertilized human oocytes after ovarian stimulation with and without gonadotropin-releasing hormone agonist. Fertil Steril 1997; 67: 932-938. [DOI:10.1016/S0015-0282(97)81410-0]
30. Selva J, Martin-Pont B, Hugues J, Rince P, Fillion C, Herve F, et al. Cytogenetic study of human oocytes uncleaved after in-vitro fertilization. Hum Reprod 1991; 6: 709-713. [DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a137413]
31. Wunder DM, Mueller MD, Birkhäuser MH, Bersinger NA. Steroids and protein markers in the follicular fluid as indicators of oocyte quality in patients with and without endometriosis. J Assist Reprod Genet 2005; 22: 257-264. [DOI:10.1007/s10815-005-5149-2]
32. Adashi EY. Insulin-like growth factors as determinants of follicular fate. J Soc Gynecol Invest 1995; 2: 721-726. [DOI:10.1177/107155769500200601]
33. Mason H, Cwyfan-Hughes S, Holly J, Franks S. Potent inhibition of human ovarian steroidogenesis by insulin-like growth factor binding protein-4 (IGFBP-4). J Clin Endocrinol Metab 1998; 83: 284-287. [DOI:10.1210/jcem.83.1.4630]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
