سه شنبه 25 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 10، شماره 5 - ( 7-1391 )
جلد 10 شماره 5 صفحات 412-409 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Soltani L, Kafilzadeh F, Karami Shabankareh H. The effect of various concentrations of myo-inositol in culture medium on development of bovine embryos. IJRM 2012; 10 (5) :409-412
URL: http://ijrm.ir/article-1-315-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-315-fa.html
سلطانی لیلا، کفیل زاده فرخ، کرمی شبانکاره حامد. اثر افزودن غلظت های مختلف میو - اینوزیتول بر نمو رویان گاو در محیط کشت لقاح. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1391; 10 (5) :409-412
1- گروه علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
2- گروه علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران ، kafilzadeh@razi.ac.ir
2- گروه علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران ، kafilzadeh@razi.ac.ir
چکیده: (2546 مشاهده)
مقدمه: بهبود فرمولاسیون محیطهای کشت باعث افزایش توانایی حفظ رویان در سراسر دوره کشت تا پیش از لانه گزینی و لانه گزینی شده است.
هدف: ارزیابی اثر حضور غلظت های مختلف میو - اینوزیتول در محیط لقاح آزمایشگاهی تخمک و منی گاوی بر روند نمو رویان.
مواد و روش ها: کمپلکس کومولوس - تخمک (COCs) جمع آوری شده از کشتارگاه به آزمایشگاه IVF دانشکده کشاورزی دانشگاه رازی انتقال یافته و در شرایط آزمایشگاهی، دمای oC39، در اتمسفر مرطوب حاوی 5% گاز دیاکسیدکربن در ریز قطرههای روغن به مدت 24-22 ساعت بالغ شدند. کمپلکس کومولوس - تخمک فرضی بالغ گاوی با منی ناحیه جنب بیضه های کشتارگاهی در گروه های تیماری زیر لقاح یافت. تیمار I: کشت کمپلکس کومولوس – تخمک فرضی بالغ همراه با منی گاوی در محیط تالپ بدون میو-اینوزیتول (کنترل)، تیمار II: کنترل + 0/02 گرم در لیتر میو –اینوزیتول، تیمار III: کنترل + 0/03 گرم در لیتر میو- اینوزیتول، تیمارIV : کنترل + 0/04 گرم در لیتر میو -اینوزیتول. تخمهای بالغ فرضی در آزمایشگاه برای مدت 8 روز کشت شدند. سپس میزان تکوین آزمایشگاهی رویانهای تفریخ شده ارزیابی و با گروه کنترل مقایسه گردیدند.
نتایج: گرچه بین گروه های تیماری اختلاف معنی داری در میزان تسهیم مشاهده نشد، اما حضور 0/04 گرم در لیتر میو - اینوزیتول به محیط کشت لقاح، درصد مجموع مورولا و بلاستوسیست (46/94) را در مقایسه با کنترل (32/19) به طور معنیداری افزایش داد. افزودن 0/04 گرم در لیتر میو - اینوزیتول به محیط کشت لقاح باعث افزایش معنی داری در درصد مجموع مورولا و بلاستوسیست (46/94) در مقایسه با تیمار II (36/36) و III (37/33) نشد.
نتیجه گیری: حضور 0/04 گرم در لیتر میو - اینوزیتول در محیط لقاح تخمکهای گاوی باعث تسریع در روند تکامل رویانهای حاصله گردید.
هدف: ارزیابی اثر حضور غلظت های مختلف میو - اینوزیتول در محیط لقاح آزمایشگاهی تخمک و منی گاوی بر روند نمو رویان.
مواد و روش ها: کمپلکس کومولوس - تخمک (COCs) جمع آوری شده از کشتارگاه به آزمایشگاه IVF دانشکده کشاورزی دانشگاه رازی انتقال یافته و در شرایط آزمایشگاهی، دمای oC39، در اتمسفر مرطوب حاوی 5% گاز دیاکسیدکربن در ریز قطرههای روغن به مدت 24-22 ساعت بالغ شدند. کمپلکس کومولوس - تخمک فرضی بالغ گاوی با منی ناحیه جنب بیضه های کشتارگاهی در گروه های تیماری زیر لقاح یافت. تیمار I: کشت کمپلکس کومولوس – تخمک فرضی بالغ همراه با منی گاوی در محیط تالپ بدون میو-اینوزیتول (کنترل)، تیمار II: کنترل + 0/02 گرم در لیتر میو –اینوزیتول، تیمار III: کنترل + 0/03 گرم در لیتر میو- اینوزیتول، تیمارIV : کنترل + 0/04 گرم در لیتر میو -اینوزیتول. تخمهای بالغ فرضی در آزمایشگاه برای مدت 8 روز کشت شدند. سپس میزان تکوین آزمایشگاهی رویانهای تفریخ شده ارزیابی و با گروه کنترل مقایسه گردیدند.
نتایج: گرچه بین گروه های تیماری اختلاف معنی داری در میزان تسهیم مشاهده نشد، اما حضور 0/04 گرم در لیتر میو - اینوزیتول به محیط کشت لقاح، درصد مجموع مورولا و بلاستوسیست (46/94) را در مقایسه با کنترل (32/19) به طور معنیداری افزایش داد. افزودن 0/04 گرم در لیتر میو - اینوزیتول به محیط کشت لقاح باعث افزایش معنی داری در درصد مجموع مورولا و بلاستوسیست (46/94) در مقایسه با تیمار II (36/36) و III (37/33) نشد.
نتیجه گیری: حضور 0/04 گرم در لیتر میو - اینوزیتول در محیط لقاح تخمکهای گاوی باعث تسریع در روند تکامل رویانهای حاصله گردید.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Michal G. Biochemical phathways. Berlin: Spektrum; 1999.
2. Downes CP. The cellular function of myo-inositol. Biochem Soc Trans 1989; 17: 259-268. [DOI:10.1042/bst0170259]
3. Kane MT, Bavister BD. Vitamin requirements for development of eight-cell hamster embryos to hatching blastocysts in vitro. Biol Reprod 1988; 39: 1137-1143. [DOI:10.1095/biolreprod39.5.1137]
4. Daniel JC Jr. Vitamins and growth factors in the nutrition of rabbit blastocysts in vitro. Growth 1967; 31: 71-77.
5. Fahy MM, Kane MT. Incorporation of [3H] inositol in to phosphoinositides and inositol phosphates by rabbit blastocysts. Mol Reprod Dev 1993; 34: 391-395. [DOI:10.1002/mrd.1080340407]
6. Holm P, Booth PJ, Schmidt MH, Greve T, Callesen H. High bovine blastocyst development in a static in vitro production system using SOFaa medium supplemented with sodium citrate and myo-inositol with or without serum-proteins. Theriogenology 1999; 52: 683-700. [DOI:10.1016/S0093-691X(99)00162-4]
7. Hynes AC, Sreenan JM, Kane MT. Uptake and incorporation of myo-inositol by bovine preimplantation embryos from two-cell to early blastocyst stages. Mol Reprod Dev 2000; 55: 265-269.
https://doi.org/10.1002/(SICI)1098-2795(200003)55:3<265::AID-MRD4>3.0.CO;2-6 [DOI:10.1002/(SICI)1098-2795(200003)55:33.0.CO;2-6]
8. Kafilzadeh F, Karami Shabankareh H, Soltani L, kazemine Jasemi V. Comparison of the effects of myo-inositol alone or in combination with MEM vitamins on embryo development of sanjabi sheep. J Iran Anat Sci 2011; 8: 189-196.
9. Gandhi AP, Lane M, Gardner DK, Krisher RL. A single medium supports development of bovine embryo throughout maturation, fertilization and culture. Hum Reprod 2000; 15: 395-401. [DOI:10.1093/humrep/15.2.395]
10. Parrish JJ, Susko-Parrish JL, Winer MA, First NL. Capacitation of bovine sperm by heparin. Biol Reprod 1988; 38: 1171-1180. [DOI:10.1095/biolreprod38.5.1171]
11. Eagle H, Oyama VI, Levy M, Freeman AE. Myo-Inoshol as an essential growth factor for normal and malignant human cells in tissue culture. J Biol Chem 1957; 226: 191-205.
12. Hawthorne JN. Inositol phospholipids. In: Hawthorne JN, Ansell GB. Phospholipids. Amesterdam: Elsevier Biomedical Press; 1982.
13. Vance DE. Phospholipid metabolism in eukaryotes. In: Vance DE, Vance JE, editors. Biochemistry of lipids and membranes. Menlo Park, CA: The Benjamin/ Cummings Publishing Co. Inc; 1986.
14. Kane MT. The effects of water-soluble vitamins on the expansion of rabbit blastocysts in vitro. J Exp Zool 1988; 245: 220-223. [DOI:10.1002/jez.1402450211]
15. Funahashi H, Kim NH, Stumpf TT, Cantley TC, Day BN. Presence of organic osmolytes in maturation medium enhances cytoplasmic maturation of porcine oocytes. Biol Reprod 1996; 54: 1412-1419. [DOI:10.1095/biolreprod54.6.1412]
16. Lim KT, Jang G, Ko KH, Lee WW, Park HJ, Kim JJ, et al. Improved in vitro bovine embryo development and increased efficiency in producing viable calves using defined media. Theriogenology 2007; 67: 293-302. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2006.07.011]
17. Kane MT. Effects of the putative phospholipid precursors, inositol, choline, serine and ethanolamine, on formation and expansion of rabbit blastocysts in vitro. J Reprod Fertil 1989; 87: 275-279. [DOI:10.1530/jrf.0.0870275]
18. Fahy MM, Kane MT. Inositol stimulates DNA and protein synthesis, andexpansion by rabbit blastocysts in vitro. Hum Reprod 1992; 7: 550-552. [DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a137688]
19. Chiu TY, Rogers MS, Briton-Jones C, Haines C. Effects of myo-inositol on the in-vitro maturation and subsequent development of mouse oocytes. Hum Reprod 2003; 18: 408-416. [DOI:10.1093/humrep/deg113]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
