دوره 11، شماره 2 - ( 1-1392 )                   جلد 11 شماره 2 صفحات 0-111 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Movahed E, Nejati V, Sadrkhanlou R, Ahmadi A. Toxic effect of acyclovir on testicular tissue in rats. IJRM 2013; 11 (2) :111-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-389-fa.html
موحد الهام، نجاتی وحید، صدرخانلو رجبعلی، احمدی عباس. اثر سمی آسیکلوویر بر روی بافت بیضه در رت ها. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1392; 11 (2) :111-0

URL: http://ijrm.ir/article-1-389-fa.html


1- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران ، elham_movahed@yahoo.com
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
3- آزمایشگاه جنین شناسی، گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
چکیده:   (2618 مشاهده)
مقدمه: آسیکلوویر، یک نوع آنالوگ سنتتیک نوکلئوزید پورین، برای گنادها سمی شناخته شده است.
هدف: مطالعه حاضر سمیت آسیکلوویر بر روی تغییرات هیستوپاتولوژیکی بافت بیضه، غلظت­های سرمی تستوسترون و پراکسیداسیون لیپید در رت های نر را بررسی کرد.
مواد و روش­ها: حیوانات به پنج گروه تقسیم شدند. یک گروه به عنوان کنترل و یک گروه به عنوان کنترل شم در نظرگرفته شد. در گروه­های تیمار شده با دارو، آسیکلوویر به مدت 15 روز تزریق شد. 18 روز پس از آخرین تزریق، حیوانات کشته شدند. آنالیزهای هیستوپاتولوژیکی و هیستومورفومتری بیضه انجام و سطوح سرمی تستوسترون، پراکسیداسیون لیپید و توان باروری حیوانات بررسی شد.
نتایج: رت­های نر که در معرض mg/kg 48 و 16 آسیکلوویر قرار گرفته بودند کاهش قابل­ توجهی در غلظت های سرمی تستوسترون نشان دادند(0/01>p). آسیکلوویر تغییرات هیستوپاتولوژیکی در بیضه القا کرد و همچنین تعداد ماست­سل­ها را در دوزهای mg/kg 48 و 16در بافت بینابینی  و اطراف لوله­ای  افزایش داد (0/01>p). به علاوه آسیکلوویر باعث افزایش سطح سرمی پراکسیداسیون لیپید در دوز mg/kg 48 (p<0/05) و کاهش توان باروری رت­های نر شد.
نتیجه­گیری: در کل، نتایج حاضر این ایده که آسیکلوویر تأثیر مضر روی سیستم تولید مثلی رت نر دارد را حمایت می کند.  
واژه‌های کلیدی: آسیکلوویر، بیضه، تستوسترون، ماست سل، رت.
نوع مطالعه: Original Article |

فهرست منابع
1. Jagetia GC, Aruna R, Nayak BS. Alternation in the radiation induced LD realease in Hela cells by acyclovir. Clin Chim Acta 2000b; 294: 129-138.
2. Brown SD, Bartlett MG, White CA. Pharmacokinetics of intravenous acyclovir, zidovudine and acyclovir- zidovudine in pregnant rats. Antimicrob Agents Chemother 2003; 47: 991-996. [DOI:10.1128/AAC.47.3.991-996.2003]
3. Dollery C. Therapeutic drugs, 2nd Ed, Churchill Livingstone 1999.
4. Elion GB. History, mechanism of action, specterum and selectivity of nucleoside analogues. In: Antiviral chemotherapy, new direction for clinical application and research. Elsevier, New York 1986.
5. Schaeffer HJ, Beauchamp L, Demiranda B, Elion GB, Bauer DJ, Collins P. [9-(2- hydroxyethoxymethyl) guanine activity against viruses of the herpes group. Nature 1978; 272: 583-585. [DOI:10.1038/272583a0]
6. Jagetia GC, Aruna R. Effect of various concentration of acyclovir on cell survival and micronuclei induction on cultured Hela cells. Mutat Res 1999; 446: 155-156. [DOI:10.1016/S1383-5718(99)00159-X]
7. Thust R, Schacke P, Wutzluler P. Cytogenetic genotoxicity of antiherpes virostatics in Chinese hamster V79- E cells. Purine nucleotide analogues, Antiviral. Res 1996; 31: 105-113.
8. Shobukhov VM, Luruchenko W. Cytogenetic effect of 9-(2-hydroxyethoxymethyl guanine). Bull Eksp Biol Med 1988; 105: 591-593.
9. Levin MJ, Leary PL, Arbeit RD. Effect of acyclovir on proliferation of human fibroblasts and peripheral blood mononuclear cells. Antimicrob Agents Chemother 1980; 17: 947-953. [DOI:10.1128/AAC.17.6.947]
10. Walter E, Tucker DVM Jr. Preclinical toxicology profile of acyclovir: an overview. Am J Med 1982; 73: 27-30. [DOI:10.1016/0002-9343(82)90058-4]
11. Narayana K. A purine nucleoside analoge-acyclovir [9-(2-hydroxyethoxymethyl)-9h-guanine] reversibly impairs testicular function in mouse. J Toxicol Sci 2007; 33: 61-70. [DOI:10.2131/jts.33.61]
12. Lukkarinen M, Näntö-Salonen K, Ruuskanen O, Lauteala T, Säkö S, Nuutinen M, et al. Varicella and varicella immunity in patients with lysinuric protein intolerance. J Inherit Metab Dis 1998; 21: 103-11. [DOI:10.1023/A:1005335423939]
13. Horstman MG, Meadows GG, Yost GS. Separate mechanisms for procarbazine spermatotoxicity and anticancer activity. Cancer Res 1987; 47: 1547-1550.
14. Zhang Q, Yang G, Li J, Li W, Zhang B, Zhu W. Melamine induces sperm DNA damage and abnormality, but not genetic toxicity. Regul Toxicol Pharmacol 2011; 60: 144-150. [DOI:10.1016/j.yrtph.2011.03.004]
15. Au WW, Hsu TC. The genotoxic effects of adriamycin in somatic and germinal cells of mouse. Mutat Res 1980; 79: 351-361. [DOI:10.1016/0165-1218(80)90160-3]
16. Fattahi E, Parivar K, Jorsaraei SGA, Moghadamnia AA. The effects of diazinon on testosterone, FSH and LH levels and testicular tissue in mice. Iran J Reprod Med 2009; 7: 59-64.
17. Nouri M, Ghasemzadeh A, Farzadi L, Shahnazi V, Ghaffari Novin M. Vitamins C, E and lipid peroxidation levels in sperm and seminal plasma of asthenoteratozoospermic and normozoospermic men. Iran J Reprod Med 2008; 6: 1-5.
18. Roaiah MMF, Khatab H, Mostafa T. Mast cells in testicular biopsies of azoospermic men. Andrologia 2007; 39: 185-189. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2007.00793.x]
19. Agarwal S, Choudhury M, Banerjee A. (1987) Mast cells and idiopathic male infertility. Int J Fertil 1987; 32: 283-286.
20. Kollur SM, Pattankar VL, El Hag IA. Mast cells in testicular lesions. Ups J Med Sci 2004; 109: 239-245. [DOI:10.3109/2000-1967-086]
21. Maseki Y, Miyake K, Mitsuya H, Kitamura H, Yamada K. Mastocytosis occurring in the testes from patients with idiopathic male infertility. Fertil Steril 1981; 36: 814-817. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)45931-5]
22. Esterbaur H, Cheesemen KH. Determination of aidehyde lipid peroxidation product: malondialdehyde and 4-hydroxynoneal. Methods enzymol 1990; 186: 407-421. [DOI:10.1016/0076-6879(90)86134-H]
23. Turk R, Juretic D, Geres D, Svetina A, Turk N, Flegar-Mestric Z. Influence of oxidative stress and metabolic adaptation on PON1 activity and MDA level in transition dairy cows. Anim Reprod Sci 2008; 108: 98-106. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2007.07.012]
24. Biró K, Barna-Vetró I, Pécsi T, Szabó E, Winkler G, Fink-Gremmels J, et al. Evaluation of spermatological parameters in ochratoxin A-chalenged boars. Theriogenology 2003; 60: 199-207. [DOI:10.1016/S0093-691X(02)01375-4]
25. Yang J, Zhang Y, Wang Y, Cui S. Toxic effect of zearalenone and α-zearalenone on the regulation of steroidogenesis and testosterone production in mouse Leydig cells. Toxicol In Vitro 2007; 21: 558-565. [DOI:10.1016/j.tiv.2006.10.013]
26. El-Sharaky AS, Newairy AA, Elguindy NM, Elwafa AA. Spermatotoxicity, biochemical changes and histological alteration induced by gossypol in testicular and hepatic tissues of male rats. Food Chem Toxicol 2010; 48: 3354-3361. [DOI:10.1016/j.fct.2010.09.004]
27. Benzoni E, Minervini F, Giannoccaro A, Fornelli F, Vigo D, Visconti A. Influence of in vitro exposure to mycotoxin zearalenone and its derivatives on swine sperm quality. Reprod Toxicol 2008; 25: 461-467. [DOI:10.1016/j.reprotox.2008.04.009]
28. Najafi G, Razi M, Hoshyar A, Shahmohamadloo S, Feyzi S. The effect of chronic exposure with imidacloprid insecticide on fertility in mature male rats. Int J Fertil Steril 2010; 4: 9-16.
29. Kumar SG, Narayana K, Bairy KL, D'Souza UJ, Samuel VP, Gopalakrishna K, et al. Dacarbazine induces genotoxic and cytotoxic germ cell damage with concomitant decrease in testosterone and increase in lactate dehydrogenase concentration in the testis. Mutat Res 2006; 607: 240-252. [DOI:10.1016/j.mrgentox.2006.04.019]
30. Ahtiainen M, Toppari J, Poutanen M, Huhtaniemi I. Indirect sertoli cell-mediated ablation of germ cells in mice expressing the inhibin-α promoter/herpes simplex virus thymidine kinase transgene. Biol Reprod 2004; 71: 1545-1550. [DOI:10.1095/biolreprod.104.028183]
31. Sim A, Ludowyke R, Verrills N. Mast cell function: Regulation of degranulation by serin/threonine phosphatase. Pharmacol Ther 2006; 112: 425-439. [DOI:10.1016/j.pharmthera.2006.04.011]
32. Fijak M, Meinhardt A. The testis in immune privilege. Immunol Rev 2006; 213: 66-81. [DOI:10.1111/j.1600-065X.2006.00438.x]
33. Cincik M, Sezen SC. The mast cells in semen, their effects on sperm motility. Arch Androl 2003; 49: 307-311. [DOI:10.1080/01485013090204995]
34. Salah-Abbes JB, Abbes S, Abbdel-Wahhab MA, Oueslati R. Raphanus sativus extract protects against Zearalenone induced reproductive toxicity, oxidative stress and mutagenic alternations in male Balb/c mice. Toxicon 2009; 53: 525-533. [DOI:10.1016/j.toxicon.2009.01.013]
35. Ennamany R, Marzetto S, Saboureau D, Creppy EE. Lipid peroxidation induced by bolesatine, a toxin of Boletus satanas: implication in 5dc variation in Vero cells related to inhibition of cell growth. Cell Biol Toxicol 1995; 11: 347-354. [DOI:10.1007/BF01305906]
36. Debnath D, Mandal TK. Study of quinalphos (an environmental oestrogenic insecticide) formulation (Ekalux E.C.)-induced damage of the testicular tissues and antioxidant defense system in Sprague-Dawley albino rats. J Appl Toxicol 2000; 20: 197-204. https://doi.org/10.1002/(SICI)1099-1263(200005/06)20:3<197::AID-JAT634>3.0.CO;2-7 [DOI:10.1002/(SICI)1099-1263(200005/06)20:33.0.CO;2-7]

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به International Journal of Reproductive BioMedicine می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2024 CC BY-NC 4.0 | International Journal of Reproductive BioMedicine

Designed & Developed by : Yektaweb