چهارشنبه 5 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 11، شماره 5 - ( 4-1392 )
جلد 11 شماره 5 صفحات 0-391 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Moghbelinejad S, Mozdarani H, Rezaeian Z. The rates of premature chromosome condensation and embryo development after injection of irradiated sperms into hamster oocytes. IJRM 2013; 11 (5) :391-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-422-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-422-fa.html
مقبلی نژاد سحر، مزدارانی حسین، رضائیان زهرا. میزان تراکم پیش رس کروموزوم و رشد جنین بعد از تزریق اسپرم های تابش دیده به داخل تخمک های هامستر . International Journal of Reproductive BioMedicine. 1392; 11 (5) :391-0
سحر مقبلی نژاد1 
، حسین مزدارانی* 2، زهرا رضائیان3
، حسین مزدارانی* 2، زهرا رضائیان3
1- گروه ژنتیک پزشکی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس ، تهران، ایران
2- گروه ژنتیک پزشکی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس ، تهران، ایران ، Mozdarah@modares.ac.ir
3- مرکز نازائی بیمارستان شریعتی، تهران، ایران.
2- گروه ژنتیک پزشکی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس ، تهران، ایران ، Mozdarah@modares.ac.ir
3- مرکز نازائی بیمارستان شریعتی، تهران، ایران.
چکیده: (4853 مشاهده)
مقدمه: تابشگیری یکی از عوامل مهم القا آسیب DNA در اسپرم می باشد. مطالعات متعددی ارتباط بین آسیب DNA اسپرم و نرخ لقاح بعد از تزریق درون سیتوپلاسمی اسپرم (ICSI) را نشان دادهاند.
هدف: در این بررسی، اثرهای تابشگیری اسپرم از پرتو گاما پس از تزریق اسپرم های تابش دیده مردان سالم و اولیگواسپرم به درون اووپلاسم تخمک هامستر با بررسی نرخ لقاح و تشکیل تراکم پیشرس کروموزوم (PCC) مورد ارزیابی قرار گرفت.
مواد و روشها: نمونههای اسپرم انسان بر اساس شمارش به سالم و اولیگواسپرم دسته بندی شدند. برای هر گروه 10 نمونه بررسی گردید. تخمکهای هامستر طلایی پس از تحریک تخمکگذاری توسط تزریق PMSG و HCG جمعآوری شدند. از تخمکهای جمع آوری شده 468 مورد در متافاز II بودند. سپس اسپرمهای تابش دیده با 4 گری پرتو گاما از نمونههای کنترل و اولیگو اسپرم به درون تخمکها تزریق و پس از تشکیل پرونوکلئی و رویانهای 8 سلولی، با روش تارکوفسکی و روش خشککردن در هوا لام تهیه شد. در نهایت فراوانی رویانها و تراکم پیشرس کروموزومی پس از رنگآمیزی با گیمسای 5% با میکروسکوپ نوری با درشتنمایی 1000× مورد بررسی قرار گرفت.
نتایج: توسعه رویانهای حاصل از تزریق اسپرمهای تابش دیده، کمتر از اسپرمهای تابش ندیده بود (0/0001=p). فراوانی PCC در تخمکهای لقاح نیافته در اولیگواسپرمها (46%) به طور معنیداری بیشتر از موارد نرمال (0%) بوده است. اما تفاوت معنیداری بین گروه تابش دیده و تابش ندیده از نظر آماری مشاهده نشد (0/12=p).
نتیجهگیری: یافتهها مبین آن است که تابشگیری اسپرم میتواند در نتیجه لقاح موثر باشد که احتمالا ناشی از آسیب DNA اسپرم است. یکی از عوامل احتمالی لقاح نیافتن تخمکها در گروه اولیگواسپرم ممکن است تشکیل PCC اسپرم باشد.
هدف: در این بررسی، اثرهای تابشگیری اسپرم از پرتو گاما پس از تزریق اسپرم های تابش دیده مردان سالم و اولیگواسپرم به درون اووپلاسم تخمک هامستر با بررسی نرخ لقاح و تشکیل تراکم پیشرس کروموزوم (PCC) مورد ارزیابی قرار گرفت.
مواد و روشها: نمونههای اسپرم انسان بر اساس شمارش به سالم و اولیگواسپرم دسته بندی شدند. برای هر گروه 10 نمونه بررسی گردید. تخمکهای هامستر طلایی پس از تحریک تخمکگذاری توسط تزریق PMSG و HCG جمعآوری شدند. از تخمکهای جمع آوری شده 468 مورد در متافاز II بودند. سپس اسپرمهای تابش دیده با 4 گری پرتو گاما از نمونههای کنترل و اولیگو اسپرم به درون تخمکها تزریق و پس از تشکیل پرونوکلئی و رویانهای 8 سلولی، با روش تارکوفسکی و روش خشککردن در هوا لام تهیه شد. در نهایت فراوانی رویانها و تراکم پیشرس کروموزومی پس از رنگآمیزی با گیمسای 5% با میکروسکوپ نوری با درشتنمایی 1000× مورد بررسی قرار گرفت.
نتایج: توسعه رویانهای حاصل از تزریق اسپرمهای تابش دیده، کمتر از اسپرمهای تابش ندیده بود (0/0001=p). فراوانی PCC در تخمکهای لقاح نیافته در اولیگواسپرمها (46%) به طور معنیداری بیشتر از موارد نرمال (0%) بوده است. اما تفاوت معنیداری بین گروه تابش دیده و تابش ندیده از نظر آماری مشاهده نشد (0/12=p).
نتیجهگیری: یافتهها مبین آن است که تابشگیری اسپرم میتواند در نتیجه لقاح موثر باشد که احتمالا ناشی از آسیب DNA اسپرم است. یکی از عوامل احتمالی لقاح نیافتن تخمکها در گروه اولیگواسپرم ممکن است تشکیل PCC اسپرم باشد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Carlsen E, Giwercman A, Keiding N, Skakkebaek NE. Evidence for decreasing quality of semen during past 50 years. BMJ 1999; 305: 609-613. [DOI:10.1136/bmj.305.6854.609]
2. Aitken R, De Iuliis G. On the possible origins of DNA damage in human spermatozoa. Mol Hum Reprod 2010; 16: 3-13. [DOI:10.1093/molehr/gap059]
3. Wang X, Sharma RK, Sikka SC, Thomas AJ Jr, FalconeT, Agarwal A. Oxidative stress is associated with increased apoptosis leading to spermatozoa DNA damage in patients with male factor infertility. Fertil Steril 2003; 80: 531-535. [DOI:10.1016/S0015-0282(03)00756-8]
4. Coccuza M, Sikka S, Athayde K, Agarval A. Clinical relevance of oxidative stress and sperm chromatin damage in male infertility: An evidence based analyze. Int Braz J Urol 2007; 33: 603-621. [DOI:10.1590/S1677-55382007000500002]
5. Kartikeya M, Ashok A, Rakesh S. Oxidative stress & male infertility. Indian J Med Res 2009; 129: 357-367.
6. Sailer B, Jost L, Evenson D. Mammalian sperm DNA susceptibility to in situ denaturation associated with the presence of DNA strand breaks as measured by the terminal deoxynucleotidyl transferase assay. J Androl 1995; 16: 80-87.
7. Hughes CM, Lewis SE, McKelvey-Martin VJ, Thompson W. A comparison of baseline and induced DNA damage in human spermatozoa from fertile and infertile men, using a modified comet assay. Mol Hum Reprod 1996; 2: 613-619. [DOI:10.1093/molehr/2.8.613]
8. Howell SM. Spermatogenesis after cancer treatment: damage and recovery. Natl Cancer Inst Monogr 2005; 34: 12-17. [DOI:10.1093/jncimonographs/lgi003]
9. Benchaib M, Braun V, Lornage J, Hadj S, Salle B, Lejeune H, et al. Sperm DNA fragmentation decreases the pregnancy rate in an assisted reproductive technique. Hum Reprod 2003; 18: 1023-1028. [DOI:10.1093/humrep/deg228]
10. Simon L, Brunborg G, Stevenson M, Lutton D, McManus J, Lewis SE. Clinical significance of sperm DNA damage in assisted reproduction outcome. Hum Reprod 2010; 25: 1594-1608. [DOI:10.1093/humrep/deq103]
11. Speyer BE, Pizzey AR, Ranieri M, Joshi R, Delhanty JD, Serhal P. Fall in implantation rates following ICSI with sperm with high DNA fragmentation. Hum Reprod 2010; 25: 1609-1618. [DOI:10.1093/humrep/deq116]
12. Sakkas D, Urner F, Bianchi PG, Bizzaro D, Wagner I, Jaquenoud N, et al. Sperm chromatin anomalies can influence decondensation after intracytoplasmic sperm injection. Hum Reprod 1996; 11: 837-843. [DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a019263]
13. Mozdarani H, Aghdaei F. Cytogenetic analysis of failed fertilized oocytes from Iranian infertile women after IVF and ICSI procedures. Mid East Fertil Soc J 2001; 6: 216-225.
14. Schmiday H, Tandler-Schneider A. Premature chromosome condensation of sperm nucleus after ICSI. Hum Reprod 1996; 4: 989-995.
15. World Health Organization. Who Laboratory manual for the examination of human semen and sperm cervical mucus interaction. 5th Ed. Cambridge, Cambridge University Press, 2012; 27-44.
16. Bavister BA. Consistently successful procedure for in vitro fertilization of golden hamster eggs. Gamete Res 1989; 23: 139-158. [DOI:10.1002/mrd.1120230202]
17. Barnett DK, Bavister BD. Hypotaurine requirement for in vitro development of golden hamster one cell embryos into morulae and blastocysts, and production of term offspring from in vitro fertilized ova. Biol Reprod 1992; 47: 297-304. [DOI:10.1095/biolreprod47.2.297]
18. Tarkowski AK. An air drying method for chromosome preparation from mouse eggs. Cytogenetics 1986; 5: 394-400. [DOI:10.1159/000129914]
19. Colpi GM, Contalbi GF, Nerva F, Sagone P and Piediferro G. Testicular function following chemo-radiotherapy. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2004; 113: S2-S6. [DOI:10.1016/j.ejogrb.2003.11.002]
20. Hermann RM, Henkel K, Christiansen H, Vorwerk H, Hille A. Testicular dose and hormonal changes after radiotherapy of rectal cancer. Radiother Oncol 2005; 75: 83-88. [DOI:10.1016/j.radonc.2004.12.017]
21. Kuczyk M, Machtens S, Bokemeyer C, Schultheiss D and Jonas U.Sexual function and fertility after treatment of testicular cancer. Curr Opin Urol 2000; 10: 473-477. [DOI:10.1097/00042307-200009000-00018]
22. Bonetti TC, Pasqualotto FF, Queiroz P, Iaconelli A Jr, Borges E Jr. Sperm banking for male cancer patient social and semen profiles. Int Braz J Urol 2009; 35: 190-198. [DOI:10.1590/S1677-55382009000200009]
23. Tusell L, Alvarez R, Caballín MR, Genescà A, Miró R, Ribas M, et al. Induction of micronuclei in human sperm-hamster egg hybrids at the two-cell stage after in vitro gamma-irradiation of human spermatozoa. Environ Mol Mutagen 1995; 26: 315-323. [DOI:10.1002/em.2850260407]
24. Ponsa I, Tusell L, Alvarez R, Genescà A, Miró R, Egozcue J. A new assay to asses' aneuploidy in human-hamster embryos. Adv Exp Med Biol 1998; 444: 185-190. [DOI:10.1007/978-1-4899-0089-0_21]
25. Tusell L, Alvarez R, Genescà A, Caballín MR, Miró R, Egozcue J. Analysis of radiation-induced micronuclei in two-cell human-hamster embryos using telomeric and centromeric FISH probes. Cytogenet Cell Genet 1996; 74: 102-106. [DOI:10.1159/000134392]
26. Tomlinson MJ, MoIfaft O, Manlcardi GC, Iliuaro O, Afnan M, Sakkas D. Interrelaitionship between seminal parameter and sperm nucleus DNA damage before and after density gradient centrifuges implicated assisted conception. Hum Reprod 2001; 16: 2160-2165. [DOI:10.1093/humrep/16.10.2160]
27. Ahmadi A, Ng S-C. Fertilizing ability of DNA damaged sperm. Exp Zool 1999; 284: 696-704.
https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-010X(19991101)284:6<696::AID-JEZ11>3.0.CO;2-E [DOI:10.1002/(SICI)1097-010X(19991101)284:63.0.CO;2-E]
28. Janny L, Menezo YJ. Evidence for a strong paternal effect on human pre implantation embryo development and blastocyst formation. Mol Reprod Dev 1994; 38: 36-42. [DOI:10.1002/mrd.1080380107]
29. Nasr-Esfahani MH, Salehi M, Razavi S, Anjomshoa M, Rozbahani S, Moulavi F, et al. Effect of sperm DNA damage and sperm protamine deficiency on fertilization and embryo development post-ICSI. Reprod Biomed Online 2005; 11: 198-205. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60959-5]
30. Shokier Y, Chadonnens D, Compana A, Sakkas D. Blastocyst development from supernamurary embryos after intra cytoplasmic sperm injection paternal influence. Hum Reprod 1998; 13: 1624-1637.
31. Horák S, Olejek A, Widak P. Sperm DNA adducts impair fertilization during ICSI but not during IVF. Folia Histochemical et Cytobiology 2007; 32: 99-104.
32. Tesarik J, Greco E, Mendoza C. Late, but not early, paternal effect on human embryo development is related to sperm DNA fragmentation. Hum Reprod 2004; 19: 611-615. [DOI:10.1093/humrep/deh127]
33. Morries ID, Lott S, Dixon L, Brison DR. The spectrum of DNA damage in human sperm assisted by single cell electrophoresis and relationship to fertilization and embryo development. Hum Reprod 2002; 17: 990-998. [DOI:10.1093/humrep/17.4.990]
34. Papachristou F, Lialiaris T, Touloupidis S, Kalaitzis C, Simopou-los C, Shiraishi Y, et al. Effects of caffeine on chromosome aberrations and sister-chromatid exchanges induced by mitomycin C in BrdU-labeled human chromosomes. Mutat Res 1979; 62: 139-405. [DOI:10.1016/0027-5107(79)90227-6]
35. Nili HA, Mozdarani H, Aleyasin A. Correlation of sperm DNA damage with protamine deficiency in Iranian subfertile men. Reprod Biomed Online 2009; 18: 479-485. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60123-X]
36. Braoud P, Bolton V, Moors S. Human gene expression first occurred between 4 -8 cell stage preimplantation development. Nature 1988; 332: 459-461. [DOI:10.1038/332459a0]
37. Stevens JB, Abdallah BY, Regan SM, Liu G, Bremer SW, Ye CJ, et al. Comparison of mitotic cell death by chromosome fragmentation to premature chromosome condensation. Mol Cytogenet 2010; 3: 20. [DOI:10.1186/1755-8166-3-20]
38. Nasr-Esfahani MH, Razavi S, Mozdarani H, Mardani M, Azvagi H. Relationship between protamine deficiency with fertilization rate and incidence of sperm premature chromosomal condensation post-ICSI. Andrologia 2004; 36: 95-100. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2004.00612.x]
39. Nasr-Esfahani MH, Naghshizadian N, Imani H, Razavi S, Mardani M, Kazemi S, et al. Can sperm protamine deficiency induce sperm premature chromosomal condensation? Andrologia 2006; 38: 92-98. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2006.00721.x]
40. Mozdarani H, Meybodi AM. Cytogenetic analysis of sperm nucleous components of Iranian normal and sub-fertile individuals using zona free hamster oocytes. J Assist Reprod Genet 2004; 21: 409-414. [DOI:10.1007/s10815-004-7529-4]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
