یکشنبه 4 خرداد 1404
[Archive]
دوره 12، شماره 11 - ( 9-1393 )
جلد 12 شماره 11 صفحات 0-771 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Karami Shabankareh H, Azimi G, Torki M. Developmental competence of bovine oocytes selected based on follicle size and using the brilliant cresyl blue (BCB) test. IJRM 2014; 12 (11) :771-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-489-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-489-fa.html
کرمی شبانکاره حامد، عظیمی گلشن، ترکی مهران. بررسی شایستگی تکوینی تخمک های انتخاب شده گاو بر اساس اندازه فولیکول و استفاده از تست بریلیانت کرزیل بلو (BCB) . International Journal of Reproductive BioMedicine. 1393; 12 (11) :771-0
حامد کرمی شبانکاره*1 
، گلشن عظیمی2 ، مهران ترکی2
، گلشن عظیمی2 ، مهران ترکی2
1- گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران ، hkaramishabankareh@yahoo.com
2- گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
2- گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
چکیده: (2393 مشاهده)
مقدمه: بر اساس بسیاری از مطالعات، اندازه ی فولیکول دارای نقش مهمی در تکامل تخمک هاست. همچنین، تست بریلیانت کرزیل بلو (BCB) یکی از مهمترین معیارها در انتخاب تخمک های شایسته از لحاظ تکاملی می باشد.
هدف: هدف از انجام مطالعه انتخاب تخمکهای شایسته گاوی از لحاظ تکاملی بود.
مواد و روشها: تعداد 1730 کمپلکس کومولوس – تخمک (COCs) از تخمدان های گاوی بر اساس اندازه ی فولیکول ها استحصال شدند. فولیکول ها بر اساس اندازه به سه گروه کوچک (3> میلی متر)، متوسط (6-3 میلی متر) و بزرگ (6< میلی متر) تقسیم شدند. تخمکها به مدت 90 دقیقه در معرض رنگ BCB رقیق شده در محلول نمکی بافری فسفات دالبکوز دارای 0/4% آلبومین سرم گاوی، قرار گرفتند. تخمک ها نیز به مدت 90 دقیقه در معرض رنگ BCB رقیق شده در DPBS), mDPBS با 4% BSA) قرار گرفتند. تخمک ها بر اساس رنگ موجود در سیتوپلاسم آنها به دو دسته تخمکهای +BCB(آبی رنگ) و BCB- (بی رنگ) تقسیم شدند.
نتایج: تخمکهای +BCB وکنترل استحصالی از فولیکولهای بزرگ و متوسط دارای میزان تسهیم و بلاستوسیست بالاتری (0/0001>p) نسبت به تخمکهای BCB- بودند. همچنین تخمکهای BCB+ استحصالی از فولیکولهای بزرگ و متوسط دارای بالاترین(0/0001>p)میزان بلاستوسیست بودند. درمقابل، تخمکهای BCB- استحصالی از فولیکول های کوچک دارای پایینترین (0/0001>p) میزان بلاستوسیست بودند. بطور جالب توجه، تخمکهای BCB+ استحصالی از فولیکولهای بزرگ و متوسط درمقایسه با تخمکهای BCB+ استحصالی از فولیکولهای کوچک از لحاظ تکاملی شایسته تر (0/0001>p) بودند.
نتیجهگیری: بر اساس نتایج تحقیق حاضر هر تخمک BCB+ ای منجر به تکامل رویانی مناسب نخواهد شد. به عبارت دیگر تست BCB به تنهایی جهت تشخیص تخمکهای شایسته جهت تکامل رویانی کافی نیست.
هدف: هدف از انجام مطالعه انتخاب تخمکهای شایسته گاوی از لحاظ تکاملی بود.
مواد و روشها: تعداد 1730 کمپلکس کومولوس – تخمک (COCs) از تخمدان های گاوی بر اساس اندازه ی فولیکول ها استحصال شدند. فولیکول ها بر اساس اندازه به سه گروه کوچک (3> میلی متر)، متوسط (6-3 میلی متر) و بزرگ (6< میلی متر) تقسیم شدند. تخمکها به مدت 90 دقیقه در معرض رنگ BCB رقیق شده در محلول نمکی بافری فسفات دالبکوز دارای 0/4% آلبومین سرم گاوی، قرار گرفتند. تخمک ها نیز به مدت 90 دقیقه در معرض رنگ BCB رقیق شده در DPBS), mDPBS با 4% BSA) قرار گرفتند. تخمک ها بر اساس رنگ موجود در سیتوپلاسم آنها به دو دسته تخمکهای +BCB(آبی رنگ) و BCB- (بی رنگ) تقسیم شدند.
نتایج: تخمکهای +BCB وکنترل استحصالی از فولیکولهای بزرگ و متوسط دارای میزان تسهیم و بلاستوسیست بالاتری (0/0001>p) نسبت به تخمکهای BCB- بودند. همچنین تخمکهای BCB+ استحصالی از فولیکولهای بزرگ و متوسط دارای بالاترین(0/0001>p)میزان بلاستوسیست بودند. درمقابل، تخمکهای BCB- استحصالی از فولیکول های کوچک دارای پایینترین (0/0001>p) میزان بلاستوسیست بودند. بطور جالب توجه، تخمکهای BCB+ استحصالی از فولیکولهای بزرگ و متوسط درمقایسه با تخمکهای BCB+ استحصالی از فولیکولهای کوچک از لحاظ تکاملی شایسته تر (0/0001>p) بودند.
نتیجهگیری: بر اساس نتایج تحقیق حاضر هر تخمک BCB+ ای منجر به تکامل رویانی مناسب نخواهد شد. به عبارت دیگر تست BCB به تنهایی جهت تشخیص تخمکهای شایسته جهت تکامل رویانی کافی نیست.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Gordon I. Recovering the bovine oocyte. In: Laboratory Production of Cattle Embryos (Biotechnology in Agriculture no. 27). 2nd Ed. Cambridge UK. 2003. CAB International/Cambridge University Press, 79-111.
2. De Loos Van Maurik F, Van Beneden P, Kruip T. Structural aspects of bovine oocyte maturation in vitro. Mol Reprod Dev 1992; 31: 208-214. [DOI:10.1002/mrd.1080310308]
3. Katska-Ksiazkiewicz L, Rynska B, Bochenek M, Opiela J, Jurkiewicz J. In vitro production of bovine embryos using flow-cytometrically sexed sperm. Arch Tierz Dummerstorf 2006; 49: 133-140. (In Germany)
4. Anguita B, Jimenez-Macedo AR, Izquierdo D, Mogas T, Paramio MT. Effect of oocyte diameter on meiotic competence, embryo development, p34 (cdc2) expression and MPF activity in prepubertal goat oocytes. Theriogenology 2007; 67: 526-536. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2006.09.003]
5. Pujol M, López-Béjar M, Paramio MT. Developmental competence of heifer oocytes selected using the Brilliant Cresyl Blue (BCB) test. Theriogenology 2004; 61: 735-744. [DOI:10.1016/S0093-691X(03)00250-4]
6. Marchal R, Vigneron C, Perreau C, Bali-Papp A, Mermillod P. Effect of follicular size on meiotic and developmental competence of porcine oocytes. Theriogenology 2002; 57: 1523-1532. [DOI:10.1016/S0093-691X(02)00655-6]
7. Mirshamsi SM, Karami-Shabankareh H. Selection of developmentally competent sheep zygotes using the brilliant cresyl blue (BCB) test, after IVF. Small Ruminant Res 2012; 105: 250-254. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2012.02.016]
8. Karami-Shabankareh H, Mirshamsi SM. Selection of developmentally competent sheep oocytes using the brilliant cresyl blue test and the relationship to follicle size and oocyte diameter. Small Ruminant Res 2012; 105: 244-249. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2012.02.017]
9. Mirshamsi SM, KaramiShabankareh H, Ahmadi-Hamedani M, Soltani L, Hajariana H, et al. Combination of oocyte and zygote selection by brilliant cresyl blue (BCB) test enhanced prediction of developmental potential to the blastocyst in cattle. Anim Reprod Sci 2013; 136: 245-251. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2012.11.002]
10. Tian W, Braunstein LD, Pang J, Stuhlmeier KM, Xi QC, Tian X, et al. Importance of glucose-6-phosphate dehydrogenase activity for cell growth. Biol Chem 1998; 273: 10609-10617. [DOI:10.1074/jbc.273.17.10609]
11. Rodríguez-González E, López-Bejár M, Velilla E, Paramio MT. Selection of prepubertal goat oocytes using the brilliant cresyl blue test. Theriogenology 2002; 57: 1397-1409. [DOI:10.1016/S0093-691X(02)00645-3]
12. Opiela J, Lipinski D, Słomski R, Katska-Ksiazkiewicz L. Transcript expression of mitochondria related genes is correlated with bovine oocyte selection by BCB test. Anim Reprod Sci 2010; 118: 188-193. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2009.07.007]
13. Roca J, Martinez E, Vazquez JM, Lucas X. Selection of immature pig oocytes for homologous in vitro penetration assays with the brilliant cresyl blue test. Reprod Fertil Dev 1998; 10: 479-485. [DOI:10.1071/RD98060]
14. Crozet N, Dahirel M, Gall L. Meiotic competence of in vitro grown goat oocytes. J Reprod Fertil 2000; 118: 367-373. [DOI:10.1530/reprod/118.2.367]
15. Pavlok A, Lucas-Hahn A, Niemann H. Fertilization and developmental competence of bovine oocytes derived from different categories of antral follicles. Mol Reprod Dev 1992; 31: 63-67. [DOI:10.1002/mrd.1080310111]
16. Lequarre AS, Vigneron C, Ribaucour F, Holm P, Donnay I, Dalbies-Tran R, et al. Influence of antral follicle size on oocyte characteristics and embryo development in the bovine. Theriogenology 2005; 63: 841-859. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2004.05.015]
17. Longergan P, Monaghan P, Rizoz D, Boland MP, Gordon I. Effect of follicle size on bovine oocyte quality and developmental competence following maturation, fertilization and culture in vitro. Mol Reprod Dev 1994; 37: 48-53. [DOI:10.1002/mrd.1080370107]
18. Parrish JJ, Susko-Parrish J, Winer MA, First NL. Capacitation of bovine sperm by heparin. Biol Reprod 1988; 38: 1171-1180. [DOI:10.1095/biolreprod38.5.1171]
19. Takahashi Y, First NL. In vitro development of bovine one-cell embryos: Influence of glucose, lactate, pyruvate, amino acids and vitamins. Theriogenology 1992; 37: 963-978. [DOI:10.1016/0093-691X(92)90096-A]
20. Kafilzadeh F, Karami-Shabankareh H, Soltani L. Effect of various concentrations of Minimal Essential Medium vitamins (MEM vitamins) on development of sheep oocytes during in-vitro maturation. Iran J Reprod Med 2012; 10: 93-98.
21. Alm H, Torner H, Löhrke B, Viergutz T, Ghoneim IM, Kanitz W. Bovine blastocyst development rate in vitro is influenced by selection of oocytes by brillant cresyl blue staining before IVM as indicator for glucose-6-phosphate dehydrogenase activity. Theriogenology 2005; 63: 2194-2205. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2004.09.050]
22. Heleil B, Fayed M. Developmental competence of buffalo oocytes from follicles of different diameters selected by brilliant cresyl blue staining. Global Vet 2010; 4: 176-184.
23. Opiela J, Kątska-Książkiewicz L, Lipiński D, Słomski R, Bzowska M, Ryńska B. Interactions among activity of glucose-6-phosphate dehydrogenase in immature oocytes, expression of apoptosis-related genes Bcl-2 and Bax and developmental competence following IVP in cattle. Theriogenology 2008; 69: 546-555. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2007.11.001]
24. Mohammadi-Sangcheshmeh A, Held E, Ghanem N, Rings F, Salilew-Wondim D, et al. G6PDH-activity in equine oocytes correlates with morphology, expression of candidate genes for viability and preimplantative in vitro development. Theriogenology 2011; 76: 1215-1226. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2011.05.025]
25. Torner H, Ghanem N, Ambros C, Hölker M, Tomek W, Phatsara C, et al. Molecular and subcellular characterisation of oocytes screened for their developmental competence based on glucose-6-phosphate dehydrogenase activity. Reproduction 2008; 135: 197-212. [DOI:10.1530/REP-07-0348]
26. Mirshamsi M, Karami-Shabankareh H, Soltani L. Brilliant cresyl blue (BCB) scoring system as an efficient tool for zygotes selection. Iran J reprod Med 2011; 9 (Suppl.): 65.
27. Mota GB, Batista RITP, Serapiao RV, Boite MC, Viana JHM, Torres CAA, et al. Developmental competence and expression of the MATER and ZAR1 genes in immature bovine oocytes selected by brilliant cresyl blue. Zygote 2009; 18: 209-216. [DOI:10.1017/S0967199409990219]
28. Susor A, Tomek W, Alm H, Kubelka M, Pavlok A, Torner H. Inhibition of final maturation of bovine oocytes in vitro differed by G6PDH-status. In: Proceedings of the Conference on Reproductive and Developmental Biology 2007; p 26.
29. El Shourbagy SH, Spikings EC, Freitas M, St John JC. Mitochondria directly influence fertilisation outcome in the pig. Reproduction 2006; 131: 233-245. [DOI:10.1530/rep.1.00551]
30. Spikings EC, Alderson J, St John JC. Regulated mitochondrial DNA replication during oocyte maturation is essential for successful porcine embryonic development. Biol Reprod 2007; 76: 327-335. [DOI:10.1095/biolreprod.106.054536]
31. Vatzias G, Hagen DR. Effects of porcine follicular fluid and oviduct-conditioned media on 398 maturation and fertilization of porcine oocytes in vitro. Biol Reprod 1999; 60: 42-48. [DOI:10.1095/biolreprod60.1.42]
32. Romaguera R, Casanovas A, Morato R, Izquierdo D, Catala M, et al. Effect of follicle diameter on oocyte apoptosis, embryo development and chromosomal ploidy in prepubertal goats. Theriogenology 2010; 74: 364-373. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2010.02.019]
33. Hendriksen PJM, Vos PLAM, Steenweg WNM, Bevers MM, Dieleman SJ. Bovine follicular development and its effect on the in vitro competence of oocytes. Theriogenology 2000; 53: 11-20. [DOI:10.1016/S0093-691X(99)00236-8]
34. Hyttel P, Fair T, Callesen H, Greve T. Oocyte growth, capacitation and final maturation in cattle. Theriogenology 1997; 47: 23-32.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
