شنبه 1 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 12، شماره 2 - ( 11-1392 )
جلد 12 شماره 2 صفحات 110-103 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Fanaei H, Khayat S, Halvaei I, Ramezani V, Azizi Y, Kasaeian A, et al . Effects of ascorbic acid on sperm motility, viability, acrosome reaction and DNA integrity in teratozoospermic samples. IJRM 2014; 12 (2) :103-110
URL: http://ijrm.ir/article-1-510-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-510-fa.html
فنائی حامد، خیاط سمیرا، حلوایی ایمان، رمضانی وحید، عزیزی یاسر، کساییان امیر، و همکاران.. اثرات اسید آسکوربیک بر تحرک، قابلیت بقاء، واکنش آکروزومی و یکپارچگی DNA اسپرم در نمونه های اسپرم تراتو. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1392; 12 (2) :103-110
حامد فنائی* 
1، سمیرا خیاط2 ، ایمان حلوایی3 ، وحید رمضانی4 ، یاسر عزیزی5 ، امیر کساییان6 ، جلال مردانه7 ، محمدرضا پرویزی5 ، مریم اکرمی8
1، سمیرا خیاط2 ، ایمان حلوایی3 ، وحید رمضانی4 ، یاسر عزیزی5 ، امیر کساییان6 ، جلال مردانه7 ، محمدرضا پرویزی5 ، مریم اکرمی8
1- مرکز تحقیقات سلامت بارداری، دانشگاه علوم پزشکی زاهدان، زاهدان، ایران ، fanaei@razi.tums.ac.ir
2- مرکز تحقیقات سلامت بارداری، دانشگاه علوم پزشکی زاهدان، زاهدان، ایران
3- مرکز تحقیقاتی درمانی ناباروری یزد، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
4- گروه فارماسیوتیکس، دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
5- گروه فیزیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
6- مرکز تحقیقات بیماری های غیر واگیر، پژوهشکده علوم جمعیتی غدد و متابولیسم، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
7- مرکز تحقیقات میکروبیولوژی بالینی پروفسور البرزی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
8- دانشگاه علوم پزشکی کاشان، کاشان، ایران
2- مرکز تحقیقات سلامت بارداری، دانشگاه علوم پزشکی زاهدان، زاهدان، ایران
3- مرکز تحقیقاتی درمانی ناباروری یزد، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
4- گروه فارماسیوتیکس، دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
5- گروه فیزیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
6- مرکز تحقیقات بیماری های غیر واگیر، پژوهشکده علوم جمعیتی غدد و متابولیسم، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
7- مرکز تحقیقات میکروبیولوژی بالینی پروفسور البرزی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
8- دانشگاه علوم پزشکی کاشان، کاشان، ایران
چکیده: (3104 مشاهده)
مقدمه: استرس اکسیداتیو در نمونه های منی اسپرم تراتو منجر به کسب نتایج ضعیف توسط روش های کمک باروری میشود. در میان آنتیاکسیدانها، اسید آسکوربیک خنثیکننده طبیعی رادیکالهای آزاد است و با حضور خود نیز به مکانیسمهای دیگر درگیر در کاهش فرآیندهای متعدد مخرب رادیکالهای آزاد کمک میکند.
هدف: هدف اصلی از انجام این مطالعه ارزیابی اثرات محافظتی اضافه کردن اسید آسکوربیک بر نتایج کشت برون تنی نمونههای اسپرم تراتو بود.
مواد و روشها: نمونههای منی حاوی اسپرمهای تراتو از 15 نفر داوطلب تهیه، پردازش و سانتریفیوژ شدند و در دمای 37 درجه سلسیوس تا جهت شناور شدن اسپرم ها انکوبه شدند. اسپرم شناور به چهار گروه تقسیم و به مدت یک ساعت در انکوباتور تحت شرایط مختلف انکوبه گردید: گروه کنترل، گروه 10 میکرومول A23187، گروه 600 میکرومول اسید آسکوربیک و گروه 10 میکرومول A23187 + 600 میکرومول اسید آسکوربیک. پس از انکوباسیون تحرک، قابلیت بقاء، واکنش آکروزومی، آسیب DNA اسپرم و سطوح مالون دی آلدئید ارزیابی شدند.
نتایج: نتایج ما نشان داد پس از یک ساعت انکوباسیون اسید آسکوربیک به طور معنیداری سطح مالون دی آلدئید را در گروه اسید آسکوربیک (nmol/ml 1/4±0/11) در مقایسه با گروه کنترل (nmol/ml0/13±1/58) (0/001) کاهش داد. در انتهای انکوباسیون حرک پیشرونده و قابلیت بقاء در گروه اسید آسکوربیک (به ترتیب %8/8±64/5 و %6/4±80/3) به طور معنیداری (به ترتیب 0/050>p و 0/001>p) بیشتر از گروه کنترل (به ترتیب %6/8±54/5 و %7/3±70/9) بود. A23187 به طور معنیداری (0/001<p) واکنش آکروزومی را در گروه (A23187 (%73/3±5/6 در مقایسه با گروه کنترل (%3/2±8/5) افزایش داد و این اثر A23187 توسط اسید آسکوربیک در گروه اسید آسکوربیک A23187+ (%17/2±4/4) تضعیف شد. قطعه قطعه شدن DNA در گروه اسید آسکوربیک (%4/1±20) به طور معنی داری (0/001<p)کمتر از گروه کنترل (%4/6±28/9) بود.
نتیجهگیری: افزودن اسید آسکوربیک به نمونههای منی حاوی اسپرمهای تراتو حین آماده کردن اسپرم جهت استفاده در روشهای کمک باروری میتواند منجر به حفاظت سلولهای اسپرم در برابر استرس اکسیداتیو شود و احتمالا منجر به بهبود نتایج درمان این بیماران گردد.
هدف: هدف اصلی از انجام این مطالعه ارزیابی اثرات محافظتی اضافه کردن اسید آسکوربیک بر نتایج کشت برون تنی نمونههای اسپرم تراتو بود.
مواد و روشها: نمونههای منی حاوی اسپرمهای تراتو از 15 نفر داوطلب تهیه، پردازش و سانتریفیوژ شدند و در دمای 37 درجه سلسیوس تا جهت شناور شدن اسپرم ها انکوبه شدند. اسپرم شناور به چهار گروه تقسیم و به مدت یک ساعت در انکوباتور تحت شرایط مختلف انکوبه گردید: گروه کنترل، گروه 10 میکرومول A23187، گروه 600 میکرومول اسید آسکوربیک و گروه 10 میکرومول A23187 + 600 میکرومول اسید آسکوربیک. پس از انکوباسیون تحرک، قابلیت بقاء، واکنش آکروزومی، آسیب DNA اسپرم و سطوح مالون دی آلدئید ارزیابی شدند.
نتایج: نتایج ما نشان داد پس از یک ساعت انکوباسیون اسید آسکوربیک به طور معنیداری سطح مالون دی آلدئید را در گروه اسید آسکوربیک (nmol/ml 1/4±0/11) در مقایسه با گروه کنترل (nmol/ml0/13±1/58) (0/001
نتیجهگیری: افزودن اسید آسکوربیک به نمونههای منی حاوی اسپرمهای تراتو حین آماده کردن اسپرم جهت استفاده در روشهای کمک باروری میتواند منجر به حفاظت سلولهای اسپرم در برابر استرس اکسیداتیو شود و احتمالا منجر به بهبود نتایج درمان این بیماران گردد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Keshtgar S, Fanaei H, Bahmanpour S, Azad F, Ghannadi A, Kazeroni M. In vitro effects of alpha-tocopherol on teratozoospermic semen samples. Andrologia 2012; 44 (Suppl.): 721-727. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2011.01256.x]
2. Guzick DS, Overstreet JW, Factor-Litvak P, Brazil CK, Nakajima ST, Coutifaris C, et al. Sperm morphology, motility, and concentration in fertile and infertile men. N Engl J Med 2001; 345: 1388-1393. [DOI:10.1056/NEJMoa003005]
3. Agarwal A, Said TM. Oxidative stress, DNA damage and apoptosis in male infertility: a clinical approach. BJU Int 2005; 95: 503-507. [DOI:10.1111/j.1464-410X.2005.05328.x]
4. Brahem S, Elghezal H, Ghedir H, Landolsi H, Amara A, Ibala S, et al. Cytogenetic and molecular aspects of absolute teratozoospermia: comparison between polymorphic and monomorphic forms. Urology 2011; 78: 1313-1319. [DOI:10.1016/j.urology.2011.08.064]
5. Lu JC, Huang YF, Lu NQ. [WHO Laboratory Manual for the Examination and Processing of Human Semen: its applicability to andrology laboratories in China]. Zhonghua Nan Ke Xue 2010; 16: 867-871. (In Chinese)
6. Brahem S, Mehdi M, Elghezal H, Saad A. Detection of DNA fragmentation and meiotic segregation in human with isolated teratozoospermia. J Assist Reprod Genet 2011; 28: 41-48. [DOI:10.1007/s10815-010-9482-8]
7. Berger DS, Abdelhafez F, Russell H, Goldfarb J, Desai N. Severe teratozoospermia and its influence on pronuclear morphology, embryonic cleavage and compaction. Reprod Biol Endocrinol 2011; 9: 37. [DOI:10.1186/1477-7827-9-37]
8. Desai N, AbdelHafez F, Sabanegh E, Goldfarb J. Paternal effect on genomic activation, clinical pregnancy and live birth rate after ICSI with cryopreserved epididymal versus testicular spermatozoa. Reprod Biol Endocrinol 2009; 7: 142. [DOI:10.1186/1477-7827-7-142]
9. Bungum M, Humaidan P, Axmon A, Spano M, Bungum L, Erenpreiss J, et al. Sperm DNA integrity assessment in prediction of assisted reproduction technology outcome. Hum Reprod 2007; 22: 174-179. [DOI:10.1093/humrep/del326]
10. Muratori M, Piomboni P, Baldi E, Filimberti E, Pecchioli P, Moretti E, et al. Functional and ultrastructural features of DNA-fragmented human sperm. J Androl 2000; 21: 903-912.
11. Szczygiel M, Kurpisz M. Teratozoospermia and its effect on male fertility potential. Andrologia 1999; 31: 63-75. [DOI:10.1111/j.1439-0272.1999.tb02848.x]
12. Lin YH, Wang YY, Chen HI, Kuo YC, Chiou YW, Lin HH, et al. SEPTIN12 genetic variants confer susceptibility to teratozoospermia. PLoS One 2012; 7: e34011. [DOI:10.1371/journal.pone.0034011]
13. Lu YH, Gao HJ, Li BJ, Zheng YM, Ye YH, Qian YL, et al. Different sperm sources and parameters can influence intracytoplasmic sperm injection outcomes before embryo implantation. J Zhejiang Univ Sci B 2012; 13: 1-10. [DOI:10.1631/jzus.B1100216]
14. Knez K, Tomazevic T, Zorn B, Vrtacnik-Bokal E, Virant-Klun I. Intracytoplasmic morphologically selected sperm injection improves development and quality of preimplantation embryos in teratozoospermia patients. Reprod Biomed Online 2012; 25: 168-179. [DOI:10.1016/j.rbmo.2012.03.011]
15. Ghani E, Keshtgar S, Habibagahi M, Ghannadi A, Kazeroni M. Expression of NOX5 in human teratozoospermia compared to normozoospermia. Andrologia 2013; 45: 351-356. [DOI:10.1111/and.12023]
16. Fanaei H, Keshtgar S, Bahmanpour S, Ghannadi A, Kazeroni M. Beneficial effects of alpha-tocopherol against intracellular calcium overload in human sperm. Reprod Sci 2011; 18: 978-982. [DOI:10.1177/1933719111401656]
17. Aitken R, De Iuliis G, Gibb Z, Baker M. The simmet lecture: new horizons on an old landscape- oxidative stress, DNA damage and apoptosis in the male germ line. Reprod Domest Anim 2012; 47 (Suppl.): 7-14. [DOI:10.1111/j.1439-0531.2012.02049.x]
18. Agarwal A, Prabakaran SA, Said TM. Prevention of oxidative stress injury to sperm. J Androl 2005; 26: 654-660. [DOI:10.2164/jandrol.05016]
19. Agarwal A, Sekhon LH. The role of antioxidant therapy in the treatment of male infertility. Hum Fertil 2010; 13: 217-225. [DOI:10.3109/14647273.2010.532279]
20. Lombardo F, Sansone A, Romanelli F, Paoli D, Gandini L, Lenzi A. The role of antioxidant therapy in the treatment of male infertility: an overview. Asian J Androl 2011; 13: 690-697. [DOI:10.1038/aja.2010.183]
21. Hu JH, Tian WQ, Zhao XL, Zan LS, Wang H, Li QW, et al. The cryoprotective effects of ascorbic acid supplementation on bovine semen quality. Anim Reprod Sci 2010; 121: 72-77. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2010.04.180]
22. Ogli SA, Enyikwola O, Odeh SO. Evaluation of the efficacy of separate oral supplements compared with the combined oral supplements of vitamins C and E on sperm motility in Wistar rats. Nigerian J Physiol Sci 2009; 24: 129-135.
23. Memon AA, Wahid H, Rosnina Y, Goh YM, Ebrahimi M, Nadia FM. Effect of ascorbic acid concentrations, methods of cooling and freezing on Boer goat semen cryopreservation. Reprod Domest Anim 2013; 48: 325-330. [DOI:10.1111/j.1439-0531.2012.02155.x]
24. Ben Abdallah F, Fetoui H, Zribi N, Fakfakh F, Ammar-Keskes L. Antioxidant supplementations in vitro improve rat sperm parameters and enhance antioxidant enzyme activities against dimethoate-induced sperm damages. Andrologia 2012; 44 (Suppl.): 272-279. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2011.01177.x]
25. Zini A, Al-Hathal N. Antioxidant therapy in male infertility: fact or fiction? Asian J Androl 2011; 13: 374-381. [DOI:10.1038/aja.2010.182]
26. Abad C, Amengual MJ, Gosalvez J, Coward K, Hannaoui N, Benet J, et al. Effects of oral antioxidant treatment upon the dynamics of human sperm DNA fragmentation and subpopulations of sperm with highly degraded DNA. Andrologia 2013; 45: 211-216. [DOI:10.1111/and.12003]
27. Hsieh YY, Chang CC, Lin CS. Seminal malondialdehyde concentration but not glutathione peroxidase activity is negatively correlated with seminal concentration and motility. Int J Biol Sci 2006; 2: 23-29. [DOI:10.7150/ijbs.2.23]
28. Roghani M, Baluchnejadmojarad T. Hypoglycemic and hypolipidemic effect and antioxidant activity of chronic epigallocatechin-gallate in streptozotocin-diabetic rats. Pathophysiology 2010; 17: 55-59. [DOI:10.1016/j.pathophys.2009.07.004]
29. Aitken RJ. Sperm function tests and fertility. Int J Androl 2006; 29: 69-75. [DOI:10.1111/j.1365-2605.2005.00630.x]
30. Sukcharoen N, Keith J, Irvine DS, Aitken RJ. Predicting the fertilizing potential of human sperm suspensions in vitro: importance of sperm morphology and leukocyte contamination. Fertil Steril 1995; 63: 1293-1300. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)57614-6]
31. Cocuzza M, Sikka SC, Athayde KS, Agarwal A. Clinical relevance of oxidative stress and sperm chromatin damage in male infertility: an evidence based analysis. Int Braz J Urol 2007; 33: 603-621. [DOI:10.1590/S1677-55382007000500002]
32. Desai N, Sharma R, Makker K, Sabanegh E, Agarwal A. Physiologic and pathologic levels of reactive oxygen species in neat semen of infertile men. Fertil Steril 2009; 92: 1626-1631. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.08.109]
33. Koziorowska-Gilun M, Koziorowski M, Fraser L, Strzezek J. Antioxidant defence system of boar cauda epididymidal spermatozoa and reproductive tract fluids. Reprod Domest Anim 2011; 46: 527- 533. [DOI:10.1111/j.1439-0531.2010.01701.x]
34. Song GJ, Norkus EP, Lewis V. Relationship between seminal ascorbic acid and sperm DNA integrity in infertile men. Int J Androl 2006; 29: 569-575. [DOI:10.1111/j.1365-2605.2006.00700.x]
35. Colagar AH, Marzony ET. Ascorbic Acid in human seminal plasma: determination and its relationship to sperm quality. J Clin Biochem Nutr 2009; 45: 144-149. [DOI:10.3164/jcbn.08-251]
36. Fernandes GS, Fernandez CD, Campos KE, Damasceno DC, Anselmo-Franci JA, Kempinas WD. Vitamin C partially attenuates male reproductive deficits in hyperglycemic rats. Reprod Biol Endocrinol 2011; 9: 100. [DOI:10.1186/1477-7827-9-100]
37. Aziz N, Saleh RA, Sharma RK, Lewis-Jones I, Esfandiari N, Thomas AJ Jr, et al. Novel association between sperm reactive oxygen species production, sperm morphological defects, and the sperm deformity index. Fertil Steril 2004; 81: 349-354. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2003.06.026]
38. Khosrowbeygi A, Zarghami N. Levels of oxidative stress biomarkers in seminal plasma and their relationship with seminal parameters. BMC Clin Pathol 2007; 7: 6. [DOI:10.1186/1472-6890-7-6]
39. Shamsi MB, Venkatesh S, Tanwar M, Talwar P, Sharma RK, Dhawan A, et al. DNA integrity and semen quality in men with low seminal antioxidant levels. Mutat Res 2009; 665: 29-36. [DOI:10.1016/j.mrfmmm.2009.02.017]
40. Branco CS, Garcez ME, Pasqualotto FF, Erdtman B, Salvador M. Resveratrol and ascorbic acid prevent DNA damage induced by cryopreservation in human semen. Cryobiology 2010; 60: 235-237. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2009.10.012]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
