سه شنبه 28 فروردین 1403
[Archive]
دوره 13، شماره 5 - ( 4-1394 )
جلد 13 شماره 5 صفحات 290-283 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Ghasemnezhad R, Mohammadghasemi F, Faghani M, Bahadori M H. Oxytocin can decrease germ cells apoptotic index in testis under acute ischemia reperfusion in a rat model. IJRM 2015; 13 (5) :283-290
URL: http://ijrm.ir/article-1-647-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-647-fa.html
قاسم نژاد رضوانه، محمد قاسمی فهیمه، فغانی معصومه، بهادری محمدهادی. اکسی توسین می تواند ایندکس آپوپتوز را در بیضه موش صحرایی تحت ایسکمی-پرفوزیون مجدد حاد کاهش دهد . International Journal of Reproductive BioMedicine. 1394; 13 (5) :283-290
1- گروه آناتومی دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی گیلان، رشت، ایران ، rezvanehghasemnezhad@ymail.com
2- مرکز تحقیقات سلولی و مولکولی، دانشگاه علوم پزشکی گیلان، رشت، ایران
2- مرکز تحقیقات سلولی و مولکولی، دانشگاه علوم پزشکی گیلان، رشت، ایران
چکیده: (2507 مشاهده)
مقدمه: ایسکمی-پرفیوزیون مجدد خون مهمترین پاتوفیزیولژی پیچش بیضه بوده ویکی از اورژانس های اورولوژیک می باشد. شواهدی دال بر نقش اکسی توسین در ایسکمی-پرفوزیون مجدد دیده شده است.
هدف: هدف از این مطالعه بررسی این فرضیه بود که اکسیتوسین میتواند ایندکس آپوپتوز را در بیضه موش صحرایی تحت ایسکمی-پرفوزیون مجدد کاهش دهد.
مواد و روشها: 20 موش صحرایی بالغ نر به طور تصادفی به 4 گروه تقسیم شدند: 1-گروه کنترل، 2-گروه ایسکمی- ریپرفیوژن (IR)، 3-گروه اکسیتوسین (OT)، 4- گروه اکسیتوسین بلافاصله بعد از القای ریپرفیوژن (OTA). ایسکمی به طریقه چرخش 720 درجه طناب اسپرماتیک در جهت عقربههای ساعت القا شد. سپس بعد از 2 ساعت با چرخش خلاف عقربههای ساعت، ریپرفیوژن برقرار گردید. بلافاصله بعد از القاء مجدد اکسی توسین به میزان µ/Kg 03/0 بصورت داخل صفاقی (IP) در گروه OTA تزریق شد. 3 ساعت بعد از جراحی، بیضه چپ جهت ارزیابیهای: اسکور جانسون، ELISA، ایمونوهیستوشیمی و هیستومورفومتری به ترتیب به منظور تعیین ، بلوغ اسپرماتوژنز ، سطوح هورمونهای جنسی، ایندکس آپوپتوز و مطالعات کمی برداشته شد.
نتایج: نتایج نشان داد که در گروه IRعلاوه بر ادم و احتقان بافتی، نمره ی جانسون بطور معنی داری نسبت به گروه کنترل کاهش یافت(p=0.01) و ایندکس آپوپتوز به طور معنی داری افزایش یافت(P=0.001). تزریق OT در گروه OT+IR نمره ی جانسون را افزایش داد اما از نظر آماری معنی دار نبود. ضخامت اپیتلیوم ژرمینال به طور معنی داری افزایش یافت(P=0.03)، همچنین ایندکس آپوپتوز در مقایسه با گروه IR به طور معنی داری کاهش یافت(P=0.04).به هرجهت تفاوت معنی داری در سطوح سرمی تستوتسرون،LH ،FSH در هیچ یک از گروه ها دیده نشد(P=0.07).
نتیجهگیری: نتایج حاصل از این پژوهش نشان داد که اکسیتوسین میتواند باعث کاهش ایندکس آپوپتوز و بهبود عوارض ناشی از ایسکمی-پرفوزیون مجدد حاد در بیضه موش صحرایی شود.
هدف: هدف از این مطالعه بررسی این فرضیه بود که اکسیتوسین میتواند ایندکس آپوپتوز را در بیضه موش صحرایی تحت ایسکمی-پرفوزیون مجدد کاهش دهد.
مواد و روشها: 20 موش صحرایی بالغ نر به طور تصادفی به 4 گروه تقسیم شدند: 1-گروه کنترل، 2-گروه ایسکمی- ریپرفیوژن (IR)، 3-گروه اکسیتوسین (OT)، 4- گروه اکسیتوسین بلافاصله بعد از القای ریپرفیوژن (OTA). ایسکمی به طریقه چرخش 720 درجه طناب اسپرماتیک در جهت عقربههای ساعت القا شد. سپس بعد از 2 ساعت با چرخش خلاف عقربههای ساعت، ریپرفیوژن برقرار گردید. بلافاصله بعد از القاء مجدد اکسی توسین به میزان µ/Kg 03/0 بصورت داخل صفاقی (IP) در گروه OTA تزریق شد. 3 ساعت بعد از جراحی، بیضه چپ جهت ارزیابیهای: اسکور جانسون، ELISA، ایمونوهیستوشیمی و هیستومورفومتری به ترتیب به منظور تعیین ، بلوغ اسپرماتوژنز ، سطوح هورمونهای جنسی، ایندکس آپوپتوز و مطالعات کمی برداشته شد.
نتایج: نتایج نشان داد که در گروه IRعلاوه بر ادم و احتقان بافتی، نمره ی جانسون بطور معنی داری نسبت به گروه کنترل کاهش یافت(p=0.01) و ایندکس آپوپتوز به طور معنی داری افزایش یافت(P=0.001). تزریق OT در گروه OT+IR نمره ی جانسون را افزایش داد اما از نظر آماری معنی دار نبود. ضخامت اپیتلیوم ژرمینال به طور معنی داری افزایش یافت(P=0.03)، همچنین ایندکس آپوپتوز در مقایسه با گروه IR به طور معنی داری کاهش یافت(P=0.04).به هرجهت تفاوت معنی داری در سطوح سرمی تستوتسرون،LH ،FSH در هیچ یک از گروه ها دیده نشد(P=0.07).
نتیجهگیری: نتایج حاصل از این پژوهش نشان داد که اکسیتوسین میتواند باعث کاهش ایندکس آپوپتوز و بهبود عوارض ناشی از ایسکمی-پرفوزیون مجدد حاد در بیضه موش صحرایی شود.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Sari E, Aksit H, Erken HA, Yay A, Aksit D, Amasyali AS, et al. Protective effect of 2-APB on testicular ischemia-reperfusion injury in rats. J Urol 2014; pii: S0022-5347.
2. Wei S, Yan Z, Zhou J. Curcumin attenuates ischemia-reperfusion injury in rat testis. Fertil Steril 2009; 91: 271-277. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.10.082]
3. Wei S, Yan Z, Zhou J. Protective effect of rutin on testicular ischemia-reperfusion injury. J Pediatr Surg 2011; 46: 1419-1424. [DOI:10.1016/j.jpedsurg.2010.09.044]
4. Hamed GM, Ahmed R, Emara MM, Mahmoud MH. Effect of erythropoietin on experimental unilateral testicular torsion detorsion in rat model. Life Sci J 2011; 8: 405-412.
5. Ozgur BC, Telli O, Yuceturk CN, Sarici H, Ozer E, Surer H, et al. The effect of sildenafil and udenafil on testicular damage following ischemia-reperfusion injury in rats. J Urol 2014; 192: 1272-1277. [DOI:10.1016/j.juro.2014.04.011]
6. Gonzalez F, Cutrin BS, Boveris J. Time course and mechanism of oxidative stress and tissue damage in rat liver subjected to in vivo ischemia-reperfusion. J Clin Invest 1993; 91: 456-464. [DOI:10.1172/JCI116223]
7. Cutrin JCBA, Zingaro B, Corvetti G, Poli G. In situ determination by surface chemiluminescence of temporal relationships between evolving warm ischemia-reperfusion injury in rat liver and phagocyte activation and recruitment. Hepatology 2000; 31: 622-631. [DOI:10.1002/hep.510310312]
8. Yamato M, Egashira THU. Application of in vivo ESR spectroscopy to measurement of cerebrovascular ros generation in stroke. Biol med 2003; 35: 1619-1631. [DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2003.09.013]
9. Tugtepe H, Sener G, Biyikli KN, Yuksel M, Cetinel S, Gedik N, et al. The protective effect of oxytocin on renal ischemia/reperfusion injury in rats. Regul Pept 2007; 140: 101-108. [DOI:10.1016/j.regpep.2006.11.026]
10. Schumer M, Colombel CM, Sawczuk SI, Gobe G, Connor J, Kathlee M, et al. Morphologic, biochemical, and molecular evidence of apoptosis during the reperfusion phase after brief periods of renal lschemia. Am J Pathol 1992; 140: 831-838.
11. Faghihi M, Alizade AM, Khori V, Latifpour M, Khodayari S. The role of nitric oxide, reactive oxygen species, and protein kinase c inoxytocin-induced cardioprotection in ischemic rat heart. Peptides 2012; 37: 314-319. [DOI:10.1016/j.peptides.2012.08.001]
12. Wenwen Z, Jianfu Z, Ming XU, Yongmei Z. Effect of oxytocin on gastric ischemia-reperfusion injury in rats. Front Med China 2007; 1: 433-437. [DOI:10.1007/s11684-007-0085-4]
13. Striepens N, Scheele D, Kendrick MK, Becker B, Schafer L, Schwalba K, et al. Oxytocin facilitates protective responses to aversive social stimuli in males. Proc Natl Acad Sci USA 2012; 109: 18144-18149. [DOI:10.1073/pnas.1208852109]
14. Savaskan E, Ehrhardt E, Schulz A, Walter M, Schachinger H. Post-learning intranasal oxytocin modulates human memory for facial identity. Psychoneuroendocrinology 2008; 33: 368-374. [DOI:10.1016/j.psyneuen.2007.12.004]
15. Moghimian M, Faghihi M, Karimian SM, Imani A, Houshamnd F, Azizi Y. The role of central oxytocin in stress-induced cardioprotection in ischemic-reperfused heart model. J Cardiol 2013; 61: 79-86. [DOI:10.1016/j.jjcc.2012.08.021]
16. Thakare H, Nicholson HD, K W. Oxytocin-its role in male reproduction and new potential therapeutic uses. Hum Reprod Update 2006; 12: 437-448. [DOI:10.1093/humupd/dmk002]
17. Nicholson DH, Frayne J. Effect of oxytocin on testosterone production by isolated rat leydig cells is mediated via a specific oxytocin receptor. Biol Reprod 1995; 52: 1268-1273. [DOI:10.1095/biolreprod52.6.1268]
18. Frayne J, Townsend D, Nicholson HD. Effects of oxytocin on sperm transport in the pubertal rat. J Reprod Fertil 1996; 107: 299-306. [DOI:10.1530/jrf.0.1070299]
19. Jankowski M, Bissonauth V, Gao L, Gangal M, Wang D, Danalache B, et al. Anti-inflammatory effect of oxytocin in rat myocardial infarction. Basic Res Cardiol 2010; 105: 205-218. [DOI:10.1007/s00395-009-0076-5]
20. Erkanli SG, Erkanli K, Aydin U, Arbak S, Ercan F, Tuncdemir M, et al. The protective effect of oxytocin on ischemia-reperfusion injury in rat urinary bladder. Peptides 2013; 40: 82-88. [DOI:10.1016/j.peptides.2012.12.006]
21. Alizade AM, Faghihi M, Sadeghipouri HR, Mohamadghasemi F, Imani A, Houshman F, et al. Oxytocin protects rat heart against ischemia-reperfusion injury via pathway involving mitochondrial atp-dependent potassiumchannel. Peptides 2010; 31: 1341-1345. [DOI:10.1016/j.peptides.2010.04.012]
22. Saller S, Kunz L, Dissen GA, Stouffer R, Ojeda RS, Berg D, et al. Oxytocin receptors in the primate ovary: molecular identity and link to apoptosis in human granulosa cells. Hum Reprod 2010; 25: 969-976. [DOI:10.1093/humrep/dep467]
23. Imani H, Syiadat SF, Parivar K, Eftekhari Yazdi P, Rzazadeh Valojerdi MAS. Autologus transplantation of intact mouse ovaries in gluteus superficialis muscle. Yakhteh Med J 2009; 11: 184-189.
24. Alizadeh AM, Faghihi M, Khori V, Sohanaki H, Pourkhalili K, Mohamadghasemi F, et al. Oxytocin protects cardiomyocytes from apoptosis induced by ischemia–reperfusion in rat heart: role of mitochondrial atp-dependent potassium channel and permeability transition pore. Peptides 2012; 36: 71-77. [DOI:10.1016/j.peptides.2012.03.023]
25. Hess ra. Quantitative and qualitative characteristics of the stages and transitions in the cycle of the rat seminiferous epithelium: light microscopic observations of perfusion-fixed and plastic-embedded testes. Biol Reprod 1990; 43: 525-542. [DOI:10.1095/biolreprod43.3.525]
26. Hess RA, Luiz F. Spermatogenesis and cycle of the seminiferous epithelium. Adv Exp Med Biol 2008; 45: 15-30.
27. Potten CS. What is an apoptotic index measuring?A commentary. Br J Cancer 1996; 74: 1743-1748. [DOI:10.1038/bjc.1996.624]
28. Yulug E, Turedi S, Karaguzel E, Kutlu O, Mentese A, Alver A. The short term effects of resveratrol on ischemia-reperfusion injury in rat testis. J Pediatr Surg 2014; 49: 484-489. [DOI:10.1016/j.jpedsurg.2013.08.028]
29. Yang C, Song B, Tan J, X L, G W. Testicular torsion inchildren:a 20-year retrospective study in a single institution. Sci World J 2011; 11: 362-368. [DOI:10.1100/tsw.2011.39]
30. Kurcer Z, Ozbakis-Dengiz G, Baba F, Nur banogul Z. The effects of statins on testicular ischemia reperfusion-induced histopathologic injury. Ulusal Farmakoloji Kongresi 2012; 21: 19-21.
31. Filho AU, Lnouye CM, Pontes JC, SilvaI VAC, Rodrigues S, Marques CH. Propofol effects on the morphology of rat testes subjected to ttesticular ischemia- reperfusion. Acta Ciroe rgica Brasileira 2012; 27: 172-178. [DOI:10.1590/S0102-86502012000200013]
32. Aktas A, Tuncer CM, Yildirim A, Nergiz Y, Akkus M. Protective Effect of melatonin on testicular torsion and detorsion in sprague-dawley rats. Int J Morphol 2011; 29: 7-15. [DOI:10.4067/S0717-95022011000100001]
33. Kadkhodaee M, Golab F, Zahmatkesh M, Ghaznavi R, Hedayati M, Arab AH, et al. Effects of different periods of renal ischemia on liver as a remote organ. World J Gastroenterol 2009; 15: 1113-1118. [DOI:10.3748/wjg.15.1113]
34. Houshmand FFM, Zahediasl S. The role of oxytocin on cardiac ischemia-reperfusion-induced oxidative stress in rats. Iran J Endocrinol Metab 2011; 12: 633-640.
35. Carmelo R, Pietro I, Teresa A, Pietro A, Mariella V, Silvio M, et al. Late hormonal function after testicular torsion. J Pediatr Surg 2010; 45: 411-413. [DOI:10.1016/j.jpedsurg.2009.10.086]
36. Aarp MA, Vicentini FC, Cocuzza M, Hallak J, Athayde K, Lucon MA, et al. Late hormonal levels, semen parameters, and presence of antisperm antibodies in atients treated for testicular torsion. J Androl 2007; 28: 528-532. [DOI:10.2164/jandrol.106.002097]
37. Visser AJ, Heyns CF. Testicular function after torsion of the spermatic cord. BJU Int 2003; 92: 200-203. [DOI:10.1046/j.1464-410X.2003.04307.x]
38. Turner TT, Bang HJ, Lysiak JJ. Experimental testicular torsion: Reperfusion blood flow and subsequent testicular venous plasma testosterone consentration. Urology 2005; 25: 390-394. [DOI:10.1016/j.urology.2004.09.033]
39. Pentikäinen V. Regulation of male germ cell apoptosis Roles of sex steroids and the cellular death receptors Fas and TNFR1. Academic Dissertation University of Helsinki Finland. 2002: 1-69.
40. Eefting F, Rensing B, Wigman J, Pannekoek WJ, Liu WM, Carmer MJ, et al. Role of apoptosis in reperfusion injury. Cardiovascr Res 2004; 61: 414-426. [DOI:10.1016/j.cardiores.2003.12.023]
41. Kiss A, Mikkelsen JD. Oxytocin- anatomy and functional assignments: A minireview. Endocrine Regulat 2005; 39: 97-105.
42. Assinder SJ, Rezvani A, Nicholson HD. Oxytocin promotes spermiation and sperm transfer in the mouse. Int J Androl 2002; 25: 19-27. [DOI:10.1046/j.1365-2605.2002.0318a.x]
43. Assinder SJ, Carey M, Parkinson T, Nicholson HD. Oxytocin and vasopressin expression in the ovine testis and epididymis: changes with the onset of spermatogenesis. Biol Reprod 2000; 63: 448-456. [DOI:10.1095/biolreprod63.2.448]
44. Erkanli SG, Erkanli K, Aydin U, Arbak S, Ercan F, Tuncdemir M, et al. Oxytocin ameliorates skeletal muscle after ischemia-reperfusion injury. Surg Res 2011; 162: 122-131.
45. Alizadeh AM, Faghihi M, Sadeghipouri HR, Mohamadghasemi F, Khori V. Role of endogenous oxytocin in cardiac ischemic preconditioning. Regul Pept 2011; 167: 86-90. [DOI:10.1016/j.regpep.2010.11.004]
46. Gutkowska J, Jankowski M. Oxytocin: old hormone, new drug. Pharmaceuticals 2009; 2: 168-183. [DOI:10.3390/ph203168]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
