دوشنبه 3 دی 1403
[Archive]
دوره 13، شماره 8 - ( 6-1394 )
جلد 13 شماره 8 صفحات 512-507 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Safian F, Khalili M A, Karimi-Zarchi M, Mohsenzadeh M, Ashourzadeh S, Omidi M. Developmental competence of immature oocytes aspirated from antral follicles in patients with gynecological diseases. IJRM 2015; 13 (8) :507-512
URL: http://ijrm.ir/article-1-673-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-673-fa.html
صفیان فرشته، خلیلی محمدعلی، کریمی زارچی مژگان، محسن زاده مهدی، عاشورزاده ساره، امیدی مرجان. توانایی تکاملی تخمکهای نابالغ بازیابی شده از فولیکول های آنترال در بیماری های زنان. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1394; 13 (8) :507-512
فرشته صفیان1 
، محمدعلی خلیلی1 ، مژگان کریمی زارچی* 2، مهدی محسن زاده3 ، ساره عاشورزاده4 ، مرجان امیدی3
، محمدعلی خلیلی1 ، مژگان کریمی زارچی* 2، مهدی محسن زاده3 ، ساره عاشورزاده4 ، مرجان امیدی3
1- گروه بیولوژی و علوم تشریح دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
2- گروه زنان و زایمان دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران ،drkarimi2001@yahoo.com
3- مرکزتحقیقاتی و درمانی ناباروری، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
4- مرکز درمانی ناباروری بیمارستان افضلی پور، دانشگاه علوم پزشکی، کرمان، ایران
2- گروه زنان و زایمان دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران ،
3- مرکزتحقیقاتی و درمانی ناباروری، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
4- مرکز درمانی ناباروری بیمارستان افضلی پور، دانشگاه علوم پزشکی، کرمان، ایران
چکیده: (4861 مشاهده)
مقدمه: بلوغ آزمایشگاهی تخمک های نابالغ جمع آوری شده از تخمدان چشم اندازی امیدبخش برای حفظ باروری زنان است. بعلاوه کیفیت تخمک ها پس از بلوغ آزمایشگاهی یکی از فاکتورهای تعیین کننده توانایی تکاملی آنهاست. با استفاده ازسیستم غیرتهاجمی پلیسکوپ می توان دوک میوزی و لایه شفاف تخمک های زنده را ارزیابی نمود.
هدف: مقصود اصلی از مطالعه حاضر ارزیابی توانایی تکاملی تخمکهای نابالغ جمع آوری شده از تخمدان پس از بلوغ بعنوان یک روش حفظ باروری در زنان با بیماری های زنان است.
مواد و روش ها: کورتکس تخمدان از 26 زن با بیمارهای خوش خیم و بدخیم با محدوده سنی 21-45 سال به طور مستقیم از بیمارستان مربوطه دریافت شد، سپس بر روی یخ به مرکز ناباروری یزد منتقل شد. در مجموع 61 تخمک نابالغ جمع آوری شد که 18 عدد از آنها دژنره بوده و حذف گردید. 43 تخمک سالم باقیمانده برای 48 ساعت در محیط کشت IVM قرار داده شد. ریت بلوغ و نیز میزان خاصیت انکساری لایه شفاف و دوک میوزی با پلیسکوپ ارزیابی شد.
نتایج: از 43 تخمک تحت بلوغ آزمایشگاهی قرار گرفته 30/2% به مرحله متافاز میوز II رسیده و بافت تخمدان 9 بیمار فاقد هر گونه تخمکی بود. طی ارزیابی باسیستم پلیسکوپ فقط در یک تخمک بالغ دوک میوزی مشاهده گردید اما لایه شفاف باخاصیت انکساری بالا در اکثر تخمک ها بعد از بلوغ آزمایشگاهی مشاهده گردید (61/5%).
نتیجه گیری: تخمک های بالغ شده در شرایط آزمایشگاهی از تخمدان بدون تحریک در بیماری های زنان توانایی تکاملی خوب نشان داد. لذا مطالعات آینده باید روی برنامه پیشرفته بلوغ آزمایشگاهی مثل کشت همزمان جهت حفظ باروری انجام شود.
هدف: مقصود اصلی از مطالعه حاضر ارزیابی توانایی تکاملی تخمکهای نابالغ جمع آوری شده از تخمدان پس از بلوغ بعنوان یک روش حفظ باروری در زنان با بیماری های زنان است.
مواد و روش ها: کورتکس تخمدان از 26 زن با بیمارهای خوش خیم و بدخیم با محدوده سنی 21-45 سال به طور مستقیم از بیمارستان مربوطه دریافت شد، سپس بر روی یخ به مرکز ناباروری یزد منتقل شد. در مجموع 61 تخمک نابالغ جمع آوری شد که 18 عدد از آنها دژنره بوده و حذف گردید. 43 تخمک سالم باقیمانده برای 48 ساعت در محیط کشت IVM قرار داده شد. ریت بلوغ و نیز میزان خاصیت انکساری لایه شفاف و دوک میوزی با پلیسکوپ ارزیابی شد.
نتایج: از 43 تخمک تحت بلوغ آزمایشگاهی قرار گرفته 30/2% به مرحله متافاز میوز II رسیده و بافت تخمدان 9 بیمار فاقد هر گونه تخمکی بود. طی ارزیابی باسیستم پلیسکوپ فقط در یک تخمک بالغ دوک میوزی مشاهده گردید اما لایه شفاف باخاصیت انکساری بالا در اکثر تخمک ها بعد از بلوغ آزمایشگاهی مشاهده گردید (61/5%).
نتیجه گیری: تخمک های بالغ شده در شرایط آزمایشگاهی از تخمدان بدون تحریک در بیماری های زنان توانایی تکاملی خوب نشان داد. لذا مطالعات آینده باید روی برنامه پیشرفته بلوغ آزمایشگاهی مثل کشت همزمان جهت حفظ باروری انجام شود.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Huang JY, Tulandi T, Holzer H, Tan SL, Chian R-C. Combining ovarian tissue cryobanking with retrieval of immature oocytes followed by in vitro maturation and vitrification: an additional strategy of fertility preservation. Fertil Steril 2008; 89: 567-572. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.03.090]
2. Kim CH, Jeon GH. Fertility preservation in female cancer patients. ISRN obstet gynecol 2012; 2012: 807302.
3. Chung K, Donnez J, Ginsburg E, Meirow D. Emergency IVF versus ovarian tissue cryopreservation: decision making in fertility preservation for female cancer patients. Fertil steril 2013; 99: 1534-1542. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2012.11.057]
4. Cromi A, Bogani G, Uccella S, Casarin J, Serati M, Ghezzi F. Laparoscopic fertility-sparing surgery for early stage ovarian cancer: a single-centre case series and systematic literature review. J Ovarian Res 2014; 7: 59. [DOI:10.1186/1757-2215-7-59]
5. Cakmak H, Rosen MP. Ovarian stimulation in cancer patients. Fertil steril 2013; 99: 1476-1484. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2013.03.029]
6. Fatemi HM, Kyrou D, Al-Azemi M, Stoop D, De Sutter P, Bourgain C, et al. Ex-vivo oocyte retrieval for fertility preservation. Fertil steril 2011; 95: 1787. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2010.11.023]
7. Chian R-C, Uzelac PS, Nargund G. In vitro maturation of human immature oocytes for fertility preservation. Fertil steril 2013; 99: 1173-1181. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2013.01.141]
8. Huang J, Tulandi T, Holzer H, Lau N, Macdonald S, Tan S, et al. Cryopreservation of ovarian tissue and in vitro matured oocytes in a female with mosaic Turner syndrome: case report. Hum Reprod 2008; 23: 336-339. [DOI:10.1093/humrep/dem307]
9. Wilken-Jensen HN, Kristensen SG, Jeppesen JV, Yding Andersen C. Developmental competence of oocytes isolated from surplus medulla tissue in connection with cryopreservation of ovarian tissue for fertility preservation. Acta Obstet Gynecol Scand 2014; 93: 32-37. [DOI:10.1111/aogs.12264]
10. Ata B, Chian R-C, Tan SL. Cryopreservation of oocytes and embryos for fertility preservation for female cancer patients. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol 2010; 24: 101-112. [DOI:10.1016/j.bpobgyn.2009.11.007]
11. Fadini R, Dal Canto M, Mignini Renzini M, Milani R, Fruscio R, Cantù MG, et al. Embryo transfer following in vitro maturation and cryopreservation of oocytes recovered from antral follicles during conservative surgery for ovarian cancer. J Assist Reprod Genet 2012: 29: 779-781. [DOI:10.1007/s10815-012-9768-0]
12. Revel A, Safran A, Benshushan A, Shushan A, Laufer N, Simon A. In vitro maturation and fertilization of oocytes from an intact ovary of a surgically treated patient with endometrial carcinoma: case report. Hum Reprod 2004; 19: 1608-1611. [DOI:10.1093/humrep/deh241]
13. Imesch P, Scheiner D, Xie M, Fink D, Macas E, Dubey R, et al. Developmental potential of human oocytes matured in vitro followed by vitrification and activation. J Ovarian Res 2013; 6: 30. [DOI:10.1186/1757-2215-6-30]
14. Khalili MA, Nottola SA, Shahedi A, Macchiarelli G. Contribution of human oocyte architecture to success of in vitro maturation technology. Iran J Reprod Med 2013; 11: 1-10.
15. Omidi M, Khalili MA, Ashourzadeh S, Rahimipour M. Zona pellucida birefringence and meiotic spindle visualisation of human oocytes are not influenced by IVM technology. Reprod Fertil Dev 2014; 26: 407-413. [DOI:10.1071/RD13001]
16. Molinari E, Evangelista F, Racca C, Cagnazzo C, Revelli A. Polarized light microscopy-detectable structures of human oocytes and embryos are related to the likelihood of conception in IVF. J Assisted Reprod Genet 2012; 29: 1117-1122. [DOI:10.1007/s10815-012-9840-9]
17. Mohsenzadeh M, Khalili MA, Nazari S, Jahromi VH, Agharahimi A, Halvaei I. Effect of vitrification on morphology and in-vitro maturation outcome of human immature oocytes. Ital J Anat Embryol 2012; 117: 190-198.
18. Yazdanpanah F, Khalili MA, Eftekhar M, Karimi H. The effect of vitrification on maturation and viability capacities of immature human oocytes. Arch Gynecol Obstet 2013; 288: 439-444. [DOI:10.1007/s00404-013-2777-0]
19. Khalili MA, Mojibian M, Sultan A-M. Role of oocyte morphology on fertilization and embryo formation in assisted reproductive techniques. Middle East Fertility Society Journal 2005; 10: 72-77.
20. Serhal P, Ranieri D, Kinis A, Marchant S, Davies M, Khadum I. Oocyte morphology predicts outcome of intracytoplasmic sperm injection. Hum Reprod 1997; 12: 1267-1270. [DOI:10.1093/humrep/12.6.1267]
21. Omidi M, Khalili MA, Nahangi H, Ashourzadeh S, Rahimipour M. Does women's age influence zona pellucida birefringence of metaphase ΙΙ oocytes in in-vitro maturation program? Iran J Reprod Med 2013; 11: 823-828.
22. Fasano G, Moffa F, Dechène J, Englert Y, Demeestere I. Vitrification of in vitro matured oocytes collected from antral follicles at the time of ovarian tissue cryopreservation. Reprod Biol Endocrinol 2011; 9: 150.
23. Escribá M-J, Grau N, Escrich L, Novella-Maestre E, Sánchez-Serrano M. Spontaneous in vitro maturation of oocytes prior to ovarian tissue cryopreservation in natural cycles of oncologic patients. J Assist Reprod Genet 2012; 29: 1261-1265.
24. Cha K-Y, Chian R-C. Maturation in vitro of immature human oocytes for clinical use. Hum Reprod Update 1998; 4: 103-120.
25. Xia P. Intracytoplasmic sperm injection: correlation of oocyte grade based on polar body, perivitelline space and cytoplasmic inclusions with fertilization rate and embryo quality. Hum Reprod 1997; 12: 1750-1755.
26. Nazari S, Khalili MA, Esmaielzadeh F, Mohsenzadeh M. Maturation capacity, morphology and morphometric assessment of human immature oocytes after vitrification and in-vitro maturation. Iran J Reprod Med 2011; 9: 209-216.
27. Rienzi L, Ubaldi FM, Iacobelli M, Minasi MG, Romano S, Ferrero S, et al. Significance of metaphase II human oocyte morphology on ICSI outcome. Fertil Steril 2008; 90: 1692-1700.
28. Halvaei I, Khalili MA, Razi MH, Nottola SA. The effect of immature oocytes quantity on the rates of oocytes maturity and morphology, fertilization, and embryo development in ICSI cycles. J Assist Reprod Genet 2012; 29: 803-810.
29. Miao Y, Ma S, Liu X, Miao D, Chang Z, Luo M, et al. Fate of the first polar bodies in mouse oocytes. Mol Reprod Dev 2004; 69: 66-76.
30. Braga DP, Figueira RdeS, Rodrigues D, Madaschi C, Pasqualotto FF, Iaconelli Jr A, et al. Prognostic value of meiotic spindle imaging on fertilization rate and embryo development in in vitro-matured human oocytes. Fertil Steril 2008; 90: 429-433.
31. Raju G, Prakash G, Krishna KM, Madan K. Meiotic spindle and zona pellucida characteristics as predictors of embryonic development: a preliminary study using PolScope imaging. Reprod Biomed Online 2007; 14: 166-174.
32. Lasienė K, Vitkus A, Valančiūtė A, Lasys V. Morphological criteria of oocyte quality. Medicina Kaunas 2009; 45: 509-515.
33. Braga DPdAF, Figueira RdCS, Queiroz P, Madaschi C, Iaconelli A, Borges E. Zona pellucida birefringence in in vivo and in vitro matured oocytes. Fertil Steril 2010; 94: 2050-2053.
34. Petersen CG, Vagnini LD, Mauri AL, Massaro FC, Silva LF, Cavagna M, et al. Evaluation of zona pellucida birefringence intensity during in vitro maturation of oocytes from stimulated cycles. Reprod Biol Endocrinol 2011; 9: 53.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
