سه شنبه 25 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 14، شماره 1 - ( 10-1394 )
جلد 14 شماره 1 صفحات 52-47 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Eskandari F, Momeni H R. Silymarin protects plasma membrane and acrosome integrity in sperm treated with sodium arsenite. IJRM 2016; 14 (1) :47-52
URL: http://ijrm.ir/article-1-686-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-686-fa.html
اسکندری فرزانه، مؤمنی حمیدرضا. سیلیمارین تمامیت غشای پلاسمایی و آکروزوم اسپرم تیمار شده با سدیم آرسنیت را محافظت می‌کند
. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1394; 14 (1) :47-52
فرزانه اسکندری1 
، حمیدرضا مؤمنی* 2
، حمیدرضا مؤمنی* 2
1- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه اراک، اراک، ایران
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه اراک، اراک، ایران ، h-momeni@araku.ac.ir
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه اراک، اراک، ایران ، h-momeni@araku.ac.ir
چکیده: (2380 مشاهده)
مقدمه: آرسنیک با القای استرس اکسیداتیو منجر به اختلال عملکرد تولیدمثلی مرد میشود. سیلیمارین با خاصیت آنتی اکسیدانتی خود رادیکالهای آزاد را حذف می‌کند.
هدف: مطالعه حاضر با این هدف انجام شد تا مشخص نماید که آیا سیلیمارین قادر است اثرات مخرب سدیم آرسنیت را بر تمامیت غشای پلاسمایی و آکروزوم اسپرم قوچ مهار نماید.
مواد و روشها: اسپرمهای اپیدیدیم قوچ به پنج گروه تقسیم شدند: اسپرمهای لحظه صفر، اسپرمهای لحظه 180 دقیقه (کنترل)، اسپرمهای تیمار شده با سیلیمارین (Mμ20) + سدیم آرسنیت (Mµ10) بهمدت 180 دقیقه، اسپرمهای تیمار شده با سدیم آرسنیت (Mµ10) بهمدت 180 دقیقه و اسپرمهای تیمار شده با سیلیمارین (Mμ20) به مدت 180 دقیقه. ارزیابی تمامیت غشای پلاسمایی اسپرم با رنگ آمیزی هوخست و پروپیدیوم آیوداید، در حالیکه برای سنجش تمامیت آکروزوم از رنگ آمیزی کوماسی برلیانت بلو استفاده شد.
نتایج: تمامیت غشای پلاسمایی (001/0>p) و آکروزوم (05/0>p) اسپرم در گروه تیمار شده با سدیم آرسنیت به مدت 180 دقیقه نسبت به گروه کنترل به طور معنیداری کاهش یافت. در گروه تیمار شده با سیلیمارین + سدیم آرسنیت به مدت 180 دقیقه، سیلیمارین توانست به طور معنیداری (001/0>p) این اثرات را نسبت به گروه تیمار شده با سدیم آرسنیت جبران کند. انکوباسیون اسپرم به مدت 180 دقیقه سبب کاهش معنیداری (001/0>p) در تمامیت آکروزوم اسپرم نسبت به اسپرمهای لحظه صفر شد. کاربرد سیلیمارین به تنهایی به مدت180 دقیقه توانست تمامیت آکروزوم اسپرم را نسبت به گروه کنترل به طور معنیداری (05/0>p) افزایش دهد.
نتیجه گیری: سیلیمارین به عنوان یک آنتی اکسیدانت قوی قادر است اثرات مخرب سدیم آرسنیت را بر تمامیت غشای پلاسمایی و آکروزوم اسپرم قوچ مهار نماید.
هدف: مطالعه حاضر با این هدف انجام شد تا مشخص نماید که آیا سیلیمارین قادر است اثرات مخرب سدیم آرسنیت را بر تمامیت غشای پلاسمایی و آکروزوم اسپرم قوچ مهار نماید.
مواد و روشها: اسپرمهای اپیدیدیم قوچ به پنج گروه تقسیم شدند: اسپرمهای لحظه صفر، اسپرمهای لحظه 180 دقیقه (کنترل)، اسپرمهای تیمار شده با سیلیمارین (Mμ20) + سدیم آرسنیت (Mµ10) بهمدت 180 دقیقه، اسپرمهای تیمار شده با سدیم آرسنیت (Mµ10) بهمدت 180 دقیقه و اسپرمهای تیمار شده با سیلیمارین (Mμ20) به مدت 180 دقیقه. ارزیابی تمامیت غشای پلاسمایی اسپرم با رنگ آمیزی هوخست و پروپیدیوم آیوداید، در حالیکه برای سنجش تمامیت آکروزوم از رنگ آمیزی کوماسی برلیانت بلو استفاده شد.
نتایج: تمامیت غشای پلاسمایی (001/0>p) و آکروزوم (05/0>p) اسپرم در گروه تیمار شده با سدیم آرسنیت به مدت 180 دقیقه نسبت به گروه کنترل به طور معنیداری کاهش یافت. در گروه تیمار شده با سیلیمارین + سدیم آرسنیت به مدت 180 دقیقه، سیلیمارین توانست به طور معنیداری (001/0>p) این اثرات را نسبت به گروه تیمار شده با سدیم آرسنیت جبران کند. انکوباسیون اسپرم به مدت 180 دقیقه سبب کاهش معنیداری (001/0>p) در تمامیت آکروزوم اسپرم نسبت به اسپرمهای لحظه صفر شد. کاربرد سیلیمارین به تنهایی به مدت180 دقیقه توانست تمامیت آکروزوم اسپرم را نسبت به گروه کنترل به طور معنیداری (05/0>p) افزایش دهد.
نتیجه گیری: سیلیمارین به عنوان یک آنتی اکسیدانت قوی قادر است اثرات مخرب سدیم آرسنیت را بر تمامیت غشای پلاسمایی و آکروزوم اسپرم قوچ مهار نماید.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Mukherjee S, Mukhopadhyay P. Studies on arsenic toxicity in male rat gonads and its protection by high dietary protein supplementation. Al Ameen J Med Sci 2009; 2: 73-77.
2. Hughes JP, Polissar L, Vanbelle G. Evaluation and synthesis of health effects studies of communities surrounding arsenic producing industries. Int J Epidemiol 1988; 17: 407-413. [DOI:10.1093/ije/17.2.407]
3. Chou W-C, Dang C V. Acute promyelocytic leukemia: recent advances in therapy and molecular basis of response to arsenic therapies. Curr Opin Hematol 2005; 12: 1-6. [DOI:10.1097/01.moh.0000148552.93303.45]
4. Hu J, Fang J, Dong Y, Chen SJ, Chen Z. Arsenic in cancer therapy. Anticancer Drugs 2005; 16: 119-127. [DOI:10.1097/00001813-200502000-00002]
5. Akter KF, Owens G, Davey DE, Naidu R. Arsenic speciation and toxicity in biological systems. Springer; 2005. [DOI:10.1007/0-387-27565-7_3]
6. Kannan GM, Flora SJS. Chronic arsenic poisoning in the rat: treatment with combined administration of succimers and an antioxidant. Ecotoxicol Environ Saf 2004; 58: 37-43. [DOI:10.1016/S0147-6513(03)00096-4]
7. Wang A, Holladay SD, Wolf DC, Ahmed SA, Robertson JL. Reproductive and developmental toxicity of arsenic in rodents: a review. Int J Toxicol 2006; 25: 319-331. [DOI:10.1080/10915810600840776]
8. Soleimani Mehranjani M, Hemadi M. The effects of sodium arsenite on the testis structure and sex hormones in vasectomised rats. Iran J Reprod Med 2007; 5: 127-133.
9. Sarkar M, Chaudhuri GR, Chattopadhyay A, Biswas NM. Effect of sodium arsenite on spermatogenesis, plasma gonadotrophins and testosterone in rats. Asian J Androl 2003; 5: 27-32.
10. Ahmad I, Hussain T, Akthar K. Arsenic induced microscopic changes in rat testis. Prof Med J 2008; 15: 287-291.
11. Jana K, Jana S, Samanta PK. Effects of chronic exposure to sodium arsenite on hypothalamo-pituitary-testicular activities in adult rats: possible an estrogenic mode of action. Reprod Biol Endocrinol 2006; 4: 1-13. [DOI:10.1186/1477-7827-4-9]
12. Momeni HR, Eskandari N. Effect of vitamin E on sperm parameters and DNA integrity in sodium arsenite-treated rats. Iran J Reprod Med 2012; 10: 249-256.
13. Pant N, Murthy RC, Srivastava SP. Male reproductive toxicity of sodium arsenite in mice. Hum Exp Toxicol 2004; 23: 399-403. [DOI:10.1191/0960327104ht467oa]
14. Chang SI, Jin B, Youn P, Park C, Park J-D, Ryu D-Y. Arsenic-induced toxicity and the protective role of ascorbic acid in mouse testis. Toxicol Appl Pharmacol 2007; 218: 196-203. [DOI:10.1016/j.taap.2006.11.009]
15. Hadaruga DI, Hadaruga NG. Antioxidant activity of hepatoprotective Silymarin and Silybum marianum L. extract. Chem Bull 2009; 54: 2.
16. Nencini C, Giorgi G, Micheli L. Protective effect of silymarin on oxidative stress in rat brain. Phytomedicine 2007; 14: 129-135. [DOI:10.1016/j.phymed.2006.02.005]
17. Bongiovanni GA, Soria EA, Eynard AR. Effects of the plant flavonoids silymarin and quercetin on arsenite-induced oxidative stress in CHO-K1 cells. Food Chem Toxicol 2007; 45: 971-976. [DOI:10.1016/j.fct.2006.12.002]
18. Organization WH. WHO laboratory manual for the examination of human semen and sperm-cervical mucus interaction. Cambridge university press; 1999.
19. Sutradhar BC, Park J, Hong G, Choi SH, Kim G, others. Effects of trypsinization on viability of equine chondrocytes in cell culture. Pak Vet J 2010; 30: 232-238.
20. Feng HL, Han YB, Hershlag A, Zheng LJ. Impact of Ca2+ flux inhibitors on acrosome reaction of hamster spermatozoa. J Androl 2007; 28: 561-564. [DOI:10.2164/jandrol.106.001958]
21. Hosseini M-J, Shaki F, Ghazi-Khansari M, Pourahmad J. Toxicity of arsenic (III) on isolated liver mitochondria: A new mechanistic approach. Iran J Pharm Res 2013; 12 (Suppl.): 121.
22. Lash LH. Mitochondrial glutathione transport: physiological, pathological and toxicological implications. Chem Biol Interact 2006; 163: 54-67. [DOI:10.1016/j.cbi.2006.03.001]
23. Vernet P, Aitken RJ, Drevet JR. Antioxidant strategies in the epididymis. Mol Cell Endocrinol 2004; 216: 31-39. [DOI:10.1016/j.mce.2003.10.069]
24. Kohno H, Tanaka T, Kawabata K, Hirose Y, Sugie S, Tsuda H, et al. Silymarin, a naturally occurring polyphenolic antioxidant flavonoid, inhibits azoxymethane-induced colon carcinogenesis in male F344 rats. Int J Cancer 2002; 101: 461-468. [DOI:10.1002/ijc.10625]
25. Ickowicz D, Finkelstein M, Breitbart H. Mechanism of sperm capacitation and the acrosome reaction: role of protein kinases. Asian J Androl 2012; 14: 816. [DOI:10.1038/aja.2012.81]
26. Florea A-M, Yamoah EN, Dopp E. Intracellular calcium disturbances induced by arsenic and its methylated derivatives in relation to genomic damage and apoptosis induction. Environ Health Perspect 2005; 113: 659. [DOI:10.1289/ehp.7634]
27. Peris S, Solanes D, Pe-a A, Enric-Rodríguez-Gil J, Rigau T. Ion-mediated resistance to osmotic changes of ram spermatozoa: the role of amiloride and ouabain. Theriogenology 2000; 54: 1453-1467. [DOI:10.1016/S0093-691X(00)00467-2]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
