چهارشنبه 29 فروردین 1403
[Archive]
دوره 14، شماره 10 - ( 7-1395 )
جلد 14 شماره 10 صفحات 656-649 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Khanmohammadi N, Movahedin M, Safari M, Sameni H R, Yousefi B, Jafari B et al . Effect of L-carnitine on in vitro developmental rate, the zona pellucida and hatching of blastocysts and their cell numbers in mouse embryos. IJRM 2016; 14 (10) :649-656
URL: http://ijrm.ir/article-1-696-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-696-fa.html
خان محمدی نسرین، موحدین منصوره، صفری منوچهر، ثامنی حمید رضا، یوسفی بهپور، جعفری بهناز و همکاران.. اثر ال-کارنیتین بر روی شاخص رشد آزمایشکاهی، لایه زونا پلوسیدا، هچ شدن بلاستوسیست ها و تعداد سلول های آن ها در جنین موش. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1395; 14 (10) :649-656
نسرین خان محمدی1 
، منصوره موحدین2 ، منوچهر صفری1 ، حمید رضا ثامنی1 ، بهپور یوسفی1 ، بهناز جعفری1 ، سام زربخش* 3
، منصوره موحدین2 ، منوچهر صفری1 ، حمید رضا ثامنی1 ، بهپور یوسفی1 ، بهناز جعفری1 ، سام زربخش* 3
1- مرکز تحقیقات سلول های بنیادی سیستم عصبی، گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی سمنان، سمنان، ایران
2- گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
3- مرکز تحقیقات سلول های بنیادی سیستم عصبی، گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی سمنان، سمنان، ایران ، smzarbakhsh@gmail.com
2- گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
3- مرکز تحقیقات سلول های بنیادی سیستم عصبی، گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی سمنان، سمنان، ایران ، smzarbakhsh@gmail.com
چکیده: (3094 مشاهده)
مقدمه: ال-کارنیتین یک آنتی اکسیدان با توانایی افزایش رشد جنین در محیط آزمایشگاهی میباشد.
هدف: هدف از انجام این مطالعه بررسی اثر ال-کارنیتین بر روی برخی شاخصهای رشد جنین و کیفیت بلاستوسیست شامل ضخامت زونا پلوسیدا، میزان هچ شدن بلاستوسیستها و تعداد سلولهای بلاستوسیستی بود.
مواد و روشها: جنینهای موش به طور تصادفی به پنج گروه تقسیم شده، همراه با غلظتهای 0، 0/5، 1، 2 و 4 میلی گرم/میلی لیتر ال-کارنیتین از دو سلولی تا بلاستوسیست هچ شده قرار گرفتند. درصد بلاستوسیستها و بلاستوسیستهای هچ شده محاسبه گشت. ضخامت زونا پلوسیدای بلاستوسیستها اندازهگیری شد و تعداد سلولهای بلاستوسیستی با استفاده از رنگ آمیزی هوخست و پروپیدیوم یدید مورد شمارش قرار گرفت.
نتایج: نتایج نشان داد غلظت 5/0 میلیگرم/میلیلیتر ال-کارنیتین دارای اثر آنتیاکسیدانی میباشد به طوری که در این گروه درصد بلاستوسیستها و بلاستوسیستهای هچ شده (0/01=p)، ضخامت زونا پلوسیدا (0/00=p) و تعداد توده سلولی داخلی بلاستوسیستها به طور معناداری مطلوب تر از گروه کنترل بود (0/03=p)؛ و غلظت 4 میلی گرم/میلی لیتر ال-کارنیتین دارای اثر سمی بر رشد جنینها و کیفیت بلاستوسیستها بود (0/00=p).
نتیجه گیری: نتایج پیشنهاد میکند که ال-کارنیتین ممکن است باعث افزایش تعداد سلولهای بلاستوسیستی شود که احتمالا موجب رشد بلاستوسیت و نازک شدن زونا پلوسیدا و در نتیجه موفقیت در هچ شدن و لانه گزینی میگردد.
هدف: هدف از انجام این مطالعه بررسی اثر ال-کارنیتین بر روی برخی شاخصهای رشد جنین و کیفیت بلاستوسیست شامل ضخامت زونا پلوسیدا، میزان هچ شدن بلاستوسیستها و تعداد سلولهای بلاستوسیستی بود.
مواد و روشها: جنینهای موش به طور تصادفی به پنج گروه تقسیم شده، همراه با غلظتهای 0، 0/5، 1، 2 و 4 میلی گرم/میلی لیتر ال-کارنیتین از دو سلولی تا بلاستوسیست هچ شده قرار گرفتند. درصد بلاستوسیستها و بلاستوسیستهای هچ شده محاسبه گشت. ضخامت زونا پلوسیدای بلاستوسیستها اندازهگیری شد و تعداد سلولهای بلاستوسیستی با استفاده از رنگ آمیزی هوخست و پروپیدیوم یدید مورد شمارش قرار گرفت.
نتایج: نتایج نشان داد غلظت 5/0 میلیگرم/میلیلیتر ال-کارنیتین دارای اثر آنتیاکسیدانی میباشد به طوری که در این گروه درصد بلاستوسیستها و بلاستوسیستهای هچ شده (0/01=p)، ضخامت زونا پلوسیدا (0/00=p) و تعداد توده سلولی داخلی بلاستوسیستها به طور معناداری مطلوب تر از گروه کنترل بود (0/03=p)؛ و غلظت 4 میلی گرم/میلی لیتر ال-کارنیتین دارای اثر سمی بر رشد جنینها و کیفیت بلاستوسیستها بود (0/00=p).
نتیجه گیری: نتایج پیشنهاد میکند که ال-کارنیتین ممکن است باعث افزایش تعداد سلولهای بلاستوسیستی شود که احتمالا موجب رشد بلاستوسیت و نازک شدن زونا پلوسیدا و در نتیجه موفقیت در هچ شدن و لانه گزینی میگردد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. de Waal E, Mak W, Calhoun S, Stein P, Ord T, Krapp C, et al. In vitro culture increases the frequency of stochastic epigenetic errors at imprinted genes in placental tissues from mouse concepti produced through assisted reproductive technologies. Biol Reprod 2014; 90: 22. [DOI:10.1095/biolreprod.113.114785]
2. de Mouzon J, Goossens V, Bhattacharya S, Castilla JA, Ferraretti AP, Korsak V, et al. Assisted reproductive technology in Europe, 2007: results generated from European registers by ESHRE. Hum Reprod 2012; 27: 954-966. [DOI:10.1093/humrep/des023]
3. Schwarzer C, Esteves TC, Arauzo-Bravo MJ, Le Gac S, Nordhoff V, Schlatt S, et al. ART culture conditions change the probability of mouse embryo gestation through defined cellular and molecular responses. Hum Reprod 2012; 27: 2627-2640. [DOI:10.1093/humrep/des223]
4. Adler A, Lee HL, McCulloh DH, Ampeloquio E, Clarke-Williams M, Wertz BH, et al. Blastocyst culture selects for euploid embryos: comparison of blastomere and trophectoderm biopsies. Reprod Biomed Online 2014; 28: 485-491. [DOI:10.1016/j.rbmo.2013.11.018]
5. Kim JH, Lee HJ, Yu EJ, Jee BC, Suh CS, Kim SH. Dose-dependent embryotrophic effect of recombinant granulocyte-macrophage colony-stimulating factor and brain-derived neurotrophic factor in culture medium for mouse preimplantation embryo. Obstet Gynecol Sci 2014; 57: 373-378. [DOI:10.5468/ogs.2014.57.5.373]
6. Li XX, Lee KB, Lee JH, Kim KJ, Kim EY, Han KW, et al. Glutathione and cysteine enhance porcine preimplantation embryo development in vitro after intracytoplasmic sperm injection. Theriogenology 2014; 81: 309-314. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2013.09.030]
7. Cebral E, Carrasco I, Vantman D, Smith R. Preimplantation embryotoxicity after mouse embryo exposition to reactive oxygen species. Biocell 2007; 31: 51-9.
8. Mokhber Maleki E, Eimani H, Bigdeli MR, Ebrahimi B, Shahverdi AH, Golkar Narenji A, et al. A comparative study of saffron aqueous extract and its active ingredient, crocin on the in vitro maturation, in vitro fertilization, and in vitro culture of mouse oocytes. Taiwan J Obstet Gynecol 2014; 53: 21-25. [DOI:10.1016/j.tjog.2012.11.004]
9. Abdelrazik H, Sharma R, Mahfouz R, Agarwal A. L-carnitine decreases DNA damage and improves the in vitro blastocyst development rate in mouse embryos. Fertil Steril 2009; 91: 589-596. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.11.067]
10. Truong TT, Soh YM, Gardner DK. Antioxidants improve mouse preimplantation embryo development and viability. Hum Reprod 2016; 31: 1445-1454. [DOI:10.1093/humrep/dew098]
11. Yu S, Long H, Lyu QF, Zhang QH, Yan ZG, Liang HX, et al. Protective effect of quercetin on the development of preimplantation mouse embryos against hydrogen peroxide-induced oxidative injury. PloS One 2014; 9: e89520. [DOI:10.1371/journal.pone.0089520]
12. Bahadori MH, Ghasemian F, Ramezani M, Asgari Z. Melatonin effect during different maturation stages of oocyte and subsequent embryo development in mice. Iran J Reprod Med 2013; 11: 11-18.
13. Moawad AR, Tan SL, Xu B, Chen HY, Taketo T. L-carnitine supplementation during vitrification of mouse oocytes at the germinal vesicle stage improves preimplantation development following maturation and fertilization in vitro. Biol Reprod 2013; 88: 104. [DOI:10.1095/biolreprod.112.107433]
14. Takahashi T, Inaba Y, Somfai T, Kaneda M, Geshi M, Nagai T, et al. Supplementation of culture medium with L-carnitine improves development and cryotolerance of bovine embryos produced in vitro. Reprod Fertil Dev 2013; 25: 589-599. [DOI:10.1071/RD11262]
15. Phongnimitr T, Liang Y, Srirattana K, Panyawai K, Sripunya N, Treetampinich C, et al. Effect of L-carnitine on maturation, cryo-tolerance and embryo developmental competence of bovine oocytes. Anim Sci J 2013; 84: 719-725. [DOI:10.1111/asj.12067]
16. Kilani SS, Cooke S, Kan AK, Chapman MG. Do age and extended culture affect the architecture of the zona pellucida of human oocytes and embryos? Zygote 2006; 14: 39-44. [DOI:10.1017/S0967199406003625]
17. Balakier H, Sojecki A, Motamedi G, Bashar S, Mandel R, Librach C. Is the zona pellucida thickness of human embryos influenced by women's age and hormonal levels? Fertil Steril 2012; 98: 77-83. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2012.04.015]
18. Ghannadi A, Kazerooni M, Jamalzadeh F, Amiri S, Rostami P, Absalan F. The effects of laser assisted hatching on pregnancy rates. Iran J Reprod Med 2011; 9: 95-98.
19. Katayama M, Roberts RM. The effect of superovulation on the contributions of individual blastomeres from 2-cell stage CF1 mouse embryos to the blastocyst. Int J Dev Biol 2010; 54: 675-681. [DOI:10.1387/ijdb.092942mk]
20. Du QY, Wang EY, Huang Y, Guo XY, Xiong YJ, Yu YP, et al. Blastocoele expansion degree predicts live birth after single blastocyst transfer for fresh and vitrified/warmed single blastocyst transfer cycles. Fertil Steril 2016; 105: 910-919. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2015.12.014]
21. Dai SJ, Xu CL, Wang J, Sun YP, Chian RC. Effect of culture medium volume and embryo density on early mouse embryonic development: tracking the development of the individual embryo. J Assist Reprod Genet 2012; 29: 617-623. [DOI:10.1007/s10815-012-9744-8]
22. Melin J, Lee A, Foygel K, Leong DE, Quake SR, Yao MW. In vitro embryo culture in defined, sub-microliter volumes. Dev Dyn 2009; 238: 950-955. [DOI:10.1002/dvdy.21918]
23. Nematollahi-mahani SN, Nematollahi-mahani A, Moshkdanian G, Shahidzadehyazdi Z, Labibi F. The role of co-culture systems on developmental competence of preimplantation mouse embryos against pH fluctuations. J Assist Reprod Genet 2009; 26: 597-604. [DOI:10.1007/s10815-009-9363-1]
24. Filho ES, Noble JA, Wells D. A review on automatic analysis of human embryo microscope images. Open Biomed Eng J 2010; 4: 170-177. [DOI:10.2174/1874120701004010170]
25. Thouas GA, Korfiatis NA, French AJ, Jones GM, Trounson AO. Simplified technique for differential staining of inner cell mass and trophectoderm cells of mouse and bovine blastocysts. Reprod Biomed Online 2001; 3: 25-29. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)61960-8]
26. Thiyagarajan B, Valivittan K. Ameliorating effect of vitamin E on in vitro development of preimplantation buffalo embryos. J Assist Reprod Genet 2009; 26: 217-225. [DOI:10.1007/s10815-009-9302-1]
27. Mansour G, Abdelrazik H, Sharma RK, Radwan E, Falcone T, Agarwal A. L-carnitine supplementation reduces oocyte cytoskeleton damage and embryo apoptosis induced by incubation in peritoneal fluid from patients with endometriosis. Fertil Steril 2009; 91 (Suppl.): 2079-2086. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.02.097]
28. Fenkci SM, Fenkci V, Oztekin O, Rota S, Karagenc N. Serum total L-carnitine levels in non-obese women with polycystic ovary syndrome. Hum Reprod 2008; 23: 1602-1606. [DOI:10.1093/humrep/den109]
29. Qi SN, Zhang ZF, Wang ZY, Yoshida A, Ueda T. L-carnitine inhibits apoptotic DNA fragmentation induced by a new spin-labeled derivative of podophyllotoxin via caspase-3 in Raji cells. Oncol Rep 2006; 15: 119-122. [DOI:10.3892/or.15.1.119]
30. Vescovo G, Ravara B, Gobbo V, Sandri M, Angelini A, Della Barbera M, et al. L-Carnitine: a potential treatment for blocking apoptosis and preventing skeletal muscle myopathy in heart failure. Am J Physiol Cell Physiol 2002; 283: 802-810. [DOI:10.1152/ajpcell.00046.2002]
31. Dunning KR, Akison LK, Russell DL, Norman RJ, Robker RL. Increased beta-oxidation and improved oocyte developmental competence in response to l-carnitine during ovarian in vitro follicle development in mice. Biol Reprod 2011; 85: 548-555. [DOI:10.1095/biolreprod.110.090415]
32. Dunning KR, Cashman K, Russell DL, Thompson JG, Norman RJ, Robker RL. Beta-oxidation is essential for mouse oocyte developmental competence and early embryo development. Biol Reprod 2010; 83: 909-918. [DOI:10.1095/biolreprod.110.084145]
33. Asgari Z, Ghasemian F, Ramezani M, Bahadori MH. The effect of melatonin on the developmental potential and implantation rate of mouse embryos. Cell J 2012; 14: 203-208.
34. Lee YS, Thouas GA, Gardner DK. Developmental kinetics of cleavage stage mouse embryos are related to their subsequent carbohydrate and amino acid utilization at the blastocyst stage. Hum Reprod 2015; 30: 543-552. [DOI:10.1093/humrep/deu334]
35. Houng WL, Lin CA, Shen JL, Yeh HI, Wang HH, Chang WH, et al. Dihydrolipoic acid induces cytotoxicity in mouse blastocysts through apoptosis processes. Int J Mol Sci 2012; 13: 3988-4002. [DOI:10.3390/ijms13033988]
36. Zullo G, Albero G, Neglia G, De Canditiis C, Bifulco G, Campanile G, et al. L-ergothioneine supplementation during culture improves quality of bovine in vitro-produced embryos. Theriogenology 2016; 85: 688-697. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2015.10.008]
37. Bain NT, Madan P, Betts DH. The early embryo response to intracellular reactive oxygen species is developmentally regulated. Reprod Fertil Dev 2011; 23: 561-575. [DOI:10.1071/RD10148]
38. Zare Z, Masteri Farahani R, Salehi M, Piryaei A, Ghaffari Novin M, Fadaei Fathabadi F, et al. Effect of L-carnitine supplementation on maturation and early embryo development of immature mouse oocytes selected by brilliant cresyle blue staining. J Assist Reprod Genet 2015; 32: 635-643. [DOI:10.1007/s10815-015-0430-5]
39. Shiloh H, Lahav-Baratz S, Koifman M, Ishai D, Bidder D, Weiner-Meganzi Z, et al. The impact of cigarette smoking on zona pellucida thickness of oocytes and embryos prior to transfer into the uterine cavity. Hum Reprod 2004; 19: 157-159. [DOI:10.1093/humrep/deh029]
40. Karlsson JO, Szurek EA, Higgins AZ, Lee SR, Eroglu A. Optimization of cryoprotectant loading into murine and human oocytes. Cryobiology 2014; 68: 18-28. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2013.11.002]
41. Tang L, Rancourt DE. Murine implantation serine proteinases 1 and 2: structure, function and evolution. Gene 2005; 364: 30-36. [DOI:10.1016/j.gene.2005.07.041]
42. Sharma N, Liu S, Tang L, Irwin J, Meng G, Rancourt DE. Implantation Serine Proteinases heterodimerize and are critical in hatching and implantation. BMC Dev Biol 2006; 6: 61. [DOI:10.1186/1471-213X-6-61]
43. Montag M, Koll B, Holmes P, van der V. Significance of the number of embryonic cells and the state of the zona pellucida for hatching of mouse blastocysts in vitro versus in vivo. Biol Reprod 2000; 62: 1738-1744. [DOI:10.1095/biolreprod62.6.1738]
44. Bassam A. Elhelw MMES, Khaled M. El Nomrosy. Assisted hatching: routine or selective application in IVF. Middle East Fertil Soc J 2004; 9: 198-201.
45. Marco-Jimenez F, Naturil-Alfonso C, Jimenez-Trigos E, Lavara R, Vicente JS. Influence of zona pellucida thickness on fertilization, embryo implantation and birth. Anim Reprod Sci 2012; 132: 96-100. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2012.04.008]
46. Lu YC, Ding GL, Yang J, Zhang YL, Shi S, Zhang RJ, et al. Small-conductance calcium-activated K(+) channels 3 (SK3) regulate blastocyst hatching by control of intracellular calcium concentration. Hum Reprod 2012; 27: 1421-1430. [DOI:10.1093/humrep/des060]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
