دوره 14، شماره 10 - ( 7-1395 )                   جلد 14 شماره 10 صفحات 642-637 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Nazari M, Talebi A R, Hosseini Sharifabad M, Abbasi A, Khoradmehr A, Danafar A H. Acute and chronic effects of gold nanoparticles on sperm parameters and chromatin structure in Mice. IJRM 2016; 14 (10) :637-642
URL: http://ijrm.ir/article-1-699-fa.html
نظری مهسا، طالبی علیرضا، حسینی شریف آباد محمد، عباسی ابوالقاسم، خرادمهر آرزو، دانافر امیرحسین. بررسی تأثیرات حاد و مزمن نانوذرات طلا با دوزهای مختلف بر پارامترها و ساختار کروماتین اسپرم در موش. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1395; 14 (10) :637-642

URL: http://ijrm.ir/article-1-699-fa.html


1- دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، پردیس بین الملل، یزد، ایران
2- مرکز تحقیقاتی درمانی ناباروری، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران ، prof_talebi@ssu.ac.ir
3- گروه بیولوژی و علوم تشریح، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
4- مرکز تحقیقاتی درمانی ناباروری، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
چکیده:   (2818 مشاهده)
مقدمه: به ذرات جامد کلوئیدی که اندازه­ای درمحدوده nm 100-1دارند، نانوذره اطلاق می­شود. از مهم­ترین نانوذراتی که امروزه دارای کاربرد وسیع هستند   می­توان به نانوذرات فلزی اشاره کرد و یکی از پرکاربردترین نانوذرات فلزی، نانوطلا می­باشد.
هدف: این مطالعه به بررسی تأثیرات نانوذره طلا برکیفیت کروماتین اسپرم موش می پردازد.
مواد و روش­ها: تعداد 72 موش نر نژاد bulb-c را در 9 گروه شامل 4 گروه تیمار، 4 گروه شم و 1 گروه کنترل مورد آزمایش قرار دادیم. گروه تیمار محلول نانوذره طلا را با دوزهای µg/kg/day 200 و 40 به مدت 7 و 35 روز از طریق تزریق داخل صفاتی دریافت کردند. گروه ششم، محلول سدیم سیترات mM 2/1 را با همان دوزها و طی همان زمان ها دریافت کردند وگروه کنترل طی آزمایش، جز آب و غذای مخصوص موش ماده ای دریافت نکردند. مورفولوژی و تحرک اسپرم ها مورد بررسی قرار گرفت. همچنین کیفیت کروماتین با استفاده از رنگ آمیزی های AB، TB و CMA3 ارزیابی شد.
نتایج: نتایج آنالیز اسپرم نشان دادکه تحرک و مورفولوژی اسپرم­ها در مقایسه با گروه کنترل از نظر آماری تفاوت معنی­دار داشت (به ویژه در گروه­هایی که به مدت 35 روز با نانو طلا تیمار شده­اند). نتایج رنگ­آمیزی­های AB، TB و CMA3 نیز افزایش معنی­داری را در تعداد اسپرم­های غیرنرمال در تمام گروه­های تیمار شده با نانوطلا نشان داد.
نتیجه­ گیری: با توجه به نتایج این مطالعه می­توان اظهار داشت که نانوذرات طلا سبب کاهش کیفیت پارامترهای اسپرم از جمله کاهش تحرک و افزایش ناهنجاری­های مورفولوژیکی می­گردند و همچنین بر ایجاد تراکم کروماتین اثر می­گذارند. که این اثرات درحداکثر دوز و فاز مزمن بیشتر آشکار بود.
واژه‌های کلیدی: نانو ذرات، کروماتین اسپرم، موش.
نوع مطالعه: Original Article |

فهرست منابع
1. Thakkar KN, Mhatre SS, Parikh RY. Biological synthesis of metallic nan- oparticles. Nanomedicine 2010; 6: 257-262. [DOI:10.1016/j.nano.2009.07.002]
2. Komatsu T, Tabata M, Kubo-Irie M, Shimizu T, Suzuki K, Nihei Y, et al. The effects of nanoparticles on mouse testis Leydig cells in vitro. Toxicol In Vitro 2008; 22: 1825-1831. [DOI:10.1016/j.tiv.2008.08.009]
3. Talebi AR, Khorsandi L, Moridian M. The effect of zinc oxide nanoparticles on mouse spermatogenesis. 60TJ Assist Reprod Genet60T 2013; 30: 1203-1209. [DOI:10.1007/s10815-013-0078-y]
4. Taylor A. herapeotic uses of trace elements. 60TClin Endocrinol Metab60T 1985; 14: 703-724. [DOI:10.1016/S0300-595X(85)80013-X]
5. Sigler JW, Gilbert BB, Howard D, John TS, Dwight C, Mccrum WR. Gold Salts in the Treatment of Rheumatoid Arthritis: A Double-Blind Study. Ann Int Med 1974; 80: 21-26. [DOI:10.7326/0003-4819-80-1-21]
6. Zakhidov ST, Marshak TL, Malolina EA, Yu A, Kulibin IA, Zelenina S M, et al. Gold Nanoparticles Disturb Nuclear Chromatin Decondensation in Mouse Sperm in vitro. Biochem 2010; 4: 293-296. [DOI:10.1134/S1990747810030074]
7. Appasamy M, Muttukrishna S, Pizzey AR, Ozturk O,Groome NP, Serhal P, Jauniaux E, et al.Relationship between male reproductive hormones,sperm DNA damage and markers of oxidative stress in infertility. Reprod Biomed Online 2007; 14: 159- [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60783-3]
9. Wiwanitkit V, Sereemaspun A, Rojanathanes R. Effect of Gold Nanoparticles on Spermatozoa. The First World Report. Fertil Steril 2009; 91: 7-8. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.08.021]
10. Zakhidova ST, Pavlyuchenkovaa SM, Marshak TL, Rudoy VM, Dement'eva OV, Zelenina IA, et al. [Effect of Gold Nanoparticles on Mouse Spermatogenesis]. Izv Akad Nauk Ser Biol 2012; 39: 229-236. (In Russian)
11. Greco E, Iacobelli M, Rienzi L, Ubaldi F, Ferrero S, Tesarik J. Reduction of the incidence of sperm DNA fragmentation by oral antioxidant treatment. J Androl 2005; 26: 349-353. [DOI:10.2164/jandrol.04146]
12. Tarozzi N, Bizzaro D, Flamigni C, Borini A. Clinical relevance of sperm DNA damage in assisted reproduction. Reprod Biomed Online 2007; 14: 746-757. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60678-5]
13. Morris ID, Ilott S, Dixon L, Brison DR. The spectrum of DNA damage in human sperm assessed by single cell gel electrophoresis (Comet assay) and its relationship to fertilization and embryo development. Hum Reprod 2002; 17: 990-998. [DOI:10.1093/humrep/17.4.990]
14. Tavalaee M, Razavi S, Nasr-Esfahani MH. [Effects of spermiogenesis defecys on Fertilization and pregnancy rate in IVF patients]. Yakhteh 2007; 9:103-101. (In Persian).
15. Razavi S, Nasr-Esfahani MH, Tavalaee M, Ameri A. [Assessing the sperm DNA damage on ART outcome]. J Arak Univ of Med Sci 2008; 11: 21-33. (In Persian)
16. Shayesteh M, Nasr-Esfahani MH, Razavi S, Nazem HA, Deemeh MR, Tavalaee M. The efficiency of Zeta method in separation of sperm with normal morphology and chromatin structure. Shahrekord Univ Med Sci J 2008; 10: 20-27.
17. Nasr-Esfahani MH, Tavalaee M, Deemeh MR. Origins and Evaluation of DNA Damage in Infertile Individual. J Iran Anat Sci 2008; 24: 489-500.
18. Tavalaee M, Razavi R, Nasr-Esfahani MH. Influence of sperm chromatin anomalies on assisted reproductive technology outcome. Fertil Steril 2009; 91: 1119-1126. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.01.063]
19. Mardani M, Nasr-Esfahani MH, Razavi S, Shirazi R, Tavalaee M. [Differentiation between the effect of protamine deficiency and failed oocyte activation on fertilization post ICSI]. J Iran Anat Sci 2006; 4: 95-103. (In Persian)
20. Rezvanfar M A, Shahverdi AR, Ahmadi A, Baeeri M, Mohammadirad A, Abdollahi M, et al. Protection of cisplatin-induced spermatotoxicity, DNA damage and chromatin abnormality by selenium nano-particles. Toxicol Appl Pharmacol 2013; 266: 356-365. [DOI:10.1016/j.taap.2012.11.025]
21. Lasagna-Reeves C, Gonzalez-Romero D, Barria MA, Olmedo I, Clos A, Sadagopa Ramanujam VM, et al. Bioaccumulation and toxicity of gold nanoparticles after repeated administration in mice. Biochem Biophys Res Commun 2010; 393: 649-455. [DOI:10.1016/j.bbrc.2010.02.046]
22. Talebi AR, Moein MR, Tabibnejad N, Ghasemzadeh J. Effect of varicocele on chromatin condensation and DNA integrity of ejaculated spermatozoa using cytochemical tests. Andrologia 2008; 40: 245-251. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2008.00852.x]
23. Gromadzka-Ostrowska J, Dziendzikowska K, Lankoff A, Dobrzyn´ska M, Instanes C, Brunborg G. Silver nanoparticles effects on epididymal sperm in rats. Toxicol Lett 2012; 214: 251-258. [DOI:10.1016/j.toxlet.2012.08.028]
24. Talebi AR, Khalili MA, Hossaini A. Assessment of nuclear DNA integrity of epididymal spermatozoa following experimental chronic spinal cord injury in the rat. Int J Androl 2007; 30: 163-169. [DOI:10.1111/j.1365-2605.2006.00736.x]
25. Iranpour FG, Nasr-Esfahani MH, Valojerdi MR, Al-Taraihi TM. Chromomycin A3 staining as a useful tool for evaluation of male fertility. J Assist Reprod Genet 2000; 17: 60-66. [DOI:10.1023/A:1009406231811]
26. Reed JA, Cook A, Halaas DJ, Parazzoli P, Robinson A, Matula TJ, Grieser F. The Effects of Microgravity on Nanoparticle Size Distributions Generated by the Ultrasonic Reduction of an Aqueous Gold-Chloride Solution. Ultrasonics Sonochem 2003; 10: 285-289. [DOI:10.1016/S1350-4177(03)00093-2]
27. Pryor JL, Hughes C, Foster W, Hales BF, Robaire B. Critical windows of exposure for children's health: The reproductive system in animals and humans. Environ Health Perspect 2000; 108: 491-503. [DOI:10.1289/ehp.00108s3491]
28. Li C, Taneda S, Taya K, Watanabe G, Li X, Fujitani Y, Nakajima T, Suzuki AK. Effect of in utero exposure to nanoparticle-rich diesel exhaust on testicular function in immature male rats. Toxicol Lett 2009; 185: 1-8. [DOI:10.1016/j.toxlet.2008.11.012]
29. Moretti E, TerzuoliG, Renieri T, Iacoponi F, Castellini C, Giordano C, CollodeG.In vitro effect of gold and silver nanoparticles on human spermatozoa. Andrologia 2013; 45: 392-396. [DOI:10.1111/and.12028]
30. Skuridin SG, Dubinskaya VA, Rudoi VM. Effect of Gold Nanoparticles on DNA Package in Model Systems. Dokl. Biochem Biophys 2010; 432: 141-143. [DOI:10.1134/S1607672910030130]
31. Pawar K, Kaul G. Toxicity of titanium oxide nanoparticles causes functionality and DNA damage in buffalo (Bubalusbubalis) sperm in vitro. Toxicol Ind Health 2012; 30: 520-533. [DOI:10.1177/0748233712462475]

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به International Journal of Reproductive BioMedicine می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2024 CC BY-NC 4.0 | International Journal of Reproductive BioMedicine

Designed & Developed by : Yektaweb