شنبه 8 دی 1403
[Archive]
دوره 14، شماره 4 - ( 1-1395 )
جلد 14 شماره 4 صفحات 262-255 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Amini E, Asadpour R, Roshangar L, Jafari-Joozani R. Effect of linoleic acid supplementation on in vitro maturation, embryo development and apoptotic related gene expression in ovine. IJRM 2016; 14 (4) :255-262
URL: http://ijrm.ir/article-1-738-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-738-fa.html
امینی ابراهیم، اسدپور رضا، روشنگر لیلا، جعفری- جوزانی رضی اله. اثرات اضافه کردن لینولئیک اسید به محیط بلوغ اووسیت، بر روی رشد رویان های گوسفندی و بیان ژن های مرتبط با آپوپتوز . International Journal of Reproductive BioMedicine. 1395; 14 (4) :255-262
ابراهیم امینی1 
، رضا اسدپور* 2، لیلا روشنگر3 ، رضی اله جعفری- جوزانی1
، رضا اسدپور* 2، لیلا روشنگر3 ، رضی اله جعفری- جوزانی1
1- گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
2- گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران ،rasadpour4@gmail.com
3- گروه آناتومی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، تبریز، ایران
2- گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران ،
3- گروه آناتومی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، تبریز، ایران
چکیده: (3410 مشاهده)
مقدمه: لینولئیک اسید فراونترین اسید چرب در مایع فولیکولی بوده که بهعنوان ممانعت کننده بلوغ و رشد اووسیت شناخته شده است.
هدف: در مطالعه حاضر هدف بررس اثر لینولئیک اسید روی اتساع سلولهای کومولوس اووفروس، بلوغ اووسیت، رشد بلاستوسیست و بیان ژنهای Bax و Bcl2 در بلاستوسیت گوسفند میباشد.
مواد و روشها: برای این منظور از 450 اووسیت که حداقل دارای 2 لایه یا بیشتر سلولول کوکولوس اطراف اووسیت بود، استفاده شد. مجموعه کمپلکس اووسیت- کومولوس به شکل تصادرفی در یکی از 4 گروه درمانی شامل گروه کنترل بدون لینولئیک اسید و گروههای با غلظتهای 50، 100 و 200 میکرومولار در هر میلی لیتر قرار گرفته و به مدت 24 ساعت کشت داده شد.
نتایج: افزودن 200 میکرومولار در هر میلی لیتر لینولئیک اسید به محیط کشت باعث کاهش اتساع سلولهای کومولوس اووفروس و تشکیل بلاستوسیت در مقایسه با گروه کنترل گردید. افزودن 100 میکرومولار در هر میلی لیتر لینولئیک اسید به محیط بلوغ باعث افزایش اتساع سلولهای کومولوس- اووفروس اطراف اووسیت و افزایش درصد رسیدن اووسیتها به مرحله متافاز 2 در مقایسه با گروه کنترل شد. هیچ تفاوتی بین درصد تشکیل بلاستوسیست در غلظتهای 50، 100 و 200 میکرومولار دیده نشد ( 13%، 14% و 12%).
نتیجه گیری: نتایج این مطالعه نشان داد اضافه کردن لینولینولئیک اسید به محیط بلوغ اووسیتها شاید باعث بهبود میزان رشد بلاستوسیتها در آزمایشگاه نشود.
هدف: در مطالعه حاضر هدف بررس اثر لینولئیک اسید روی اتساع سلولهای کومولوس اووفروس، بلوغ اووسیت، رشد بلاستوسیست و بیان ژنهای Bax و Bcl2 در بلاستوسیت گوسفند میباشد.
مواد و روشها: برای این منظور از 450 اووسیت که حداقل دارای 2 لایه یا بیشتر سلولول کوکولوس اطراف اووسیت بود، استفاده شد. مجموعه کمپلکس اووسیت- کومولوس به شکل تصادرفی در یکی از 4 گروه درمانی شامل گروه کنترل بدون لینولئیک اسید و گروههای با غلظتهای 50، 100 و 200 میکرومولار در هر میلی لیتر قرار گرفته و به مدت 24 ساعت کشت داده شد.
نتایج: افزودن 200 میکرومولار در هر میلی لیتر لینولئیک اسید به محیط کشت باعث کاهش اتساع سلولهای کومولوس اووفروس و تشکیل بلاستوسیت در مقایسه با گروه کنترل گردید. افزودن 100 میکرومولار در هر میلی لیتر لینولئیک اسید به محیط بلوغ باعث افزایش اتساع سلولهای کومولوس- اووفروس اطراف اووسیت و افزایش درصد رسیدن اووسیتها به مرحله متافاز 2 در مقایسه با گروه کنترل شد. هیچ تفاوتی بین درصد تشکیل بلاستوسیست در غلظتهای 50، 100 و 200 میکرومولار دیده نشد ( 13%، 14% و 12%).
نتیجه گیری: نتایج این مطالعه نشان داد اضافه کردن لینولینولئیک اسید به محیط بلوغ اووسیتها شاید باعث بهبود میزان رشد بلاستوسیتها در آزمایشگاه نشود.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Santos JE, Bilby TR, Thatcher WW, Staples CR, Silvestre FT. Long chain fatty acids of diet as factors influencing reproduction in cattle. Reprod Domest Anim 2008; 43 (Suppl.): 23-30. [DOI:10.1111/j.1439-0531.2008.01139.x]
2. Spector AA. Essentiality of fatty acids. Lipids 1999; 34: S1-3. [DOI:10.1007/BF02562220]
3. SampathH, Ntambi, JM. Polyunsaturated fatty acid regulation of genes of lipid metabolism. Ann Rev Nutr 2005; 25: 317-340. [DOI:10.1146/annurev.nutr.25.051804.101917]
4. Fouladi-Nashta AA, Wonnacott KE, Gutierrez CG, Gong JG, Sinclair KD, Garnsworthy PC, et al. Oocyte quality in lactating dairy cows fed on high levels of n-3 and n-6 fatty acids. Reproduction 2009; 138: 771-781. [DOI:10.1530/REP-08-0391]
5. Homa S, Brown C. Changes in linoleic acid during follicular development and inhibition of spontaneous breakdown of germinal vesicles in cumulus-free bovine oocytes. J Reprod Fertil 1992; 94:153-160. [DOI:10.1530/jrf.0.0940153]
6. Sturmey R, Reis A, Leese H, McEvoy T. Role of fatty acids in energy provision during oocyte maturation and early embryo development. Reprod Domest Anim 2009; 44: 50-58. [DOI:10.1111/j.1439-0531.2009.01402.x]
7. WonnacottKE, Kwong WY, Hughes J, Salter AM, Lea RG, Garnsworthy PC, et al. Dietary omega-3 and -6 polyunsaturated fatty acids affect the composition and development of ovinegranulosa cells, oocytes and embryos. Reproduction 2010; 139: 57-69. [DOI:10.1530/REP-09-0219]
8. Hughes J, Kwong WY, Li D, Salter AM, Lea RG, Sinclair KD. Effects of omega-3 and -6 polyunsaturated fatty acids on ovine follicular cell steroidogenesis, embryo development and molecular markers of fatty acid metabolism. Reproduction 2011; 141: 105-118. [DOI:10.1530/REP-10-0337]
9. AardemaH, Vos PL, Lolicato F, Roelen BA, Knijn HM, Vaandrager AB. Oleic acid prevents detrimental effects of saturated fatty acids on bovine oocyte developmental competence. Biol Reprod 2011; 85: 62-69. [DOI:10.1095/biolreprod.110.088815]
10. Gulliver CE, Friend MA, King BJ, Clayton EH. The role of omega-3 polyunsaturated fatty acids in reproduction of ovine and cattle. Anim Reprod Sci 2012; 131: 9-22. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2012.02.002]
11. Fouladi-Nashta AA, Gutierrez CG, Gong JG, Garnsworthy PC, Webb R. Impact of dietary fatty acids on oocyte quality and development in lactating dairy cows. Biol Reprod 2007; 77: 9-17. [DOI:10.1095/biolreprod.106.058578]
12. Bender K, Walsh S, Evans AC, Fair T, Brennan L. Metabolite concentrations in follicularfluid may explain differences in fertility between heifers and lactating cows. Reproduction 2010; 139: 1047-1055. [DOI:10.1530/REP-10-0068]
13. Pereira RM, Baptista MC, Vasques MI, Horta AE, Portugal PV, Bessa RJ, et al. Cryosurvival of bovine blastocysts is enhanced by culture with trans-10 cis-12 conjugated linoleic acid (10t, 12c CLA). Anim Reprod Sci 2007; 98: 293-301. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2006.03.015]
14. Marei WF, Wathes DC, Fouladi-Nashta AA. Impact of linoleic acid on bovine oocyte maturation and embryo development. Reproduction 2010; 139: 979-988. [DOI:10.1530/REP-09-0503]
15. Ghaffarilaleh V, Fouladi-Nashta AA, Paramio MT. Effect of α-linolenic acid on oocyte maturation and embryo development of prepubertal sheep oocytes. Theriogenology 2014; 82: 686-696. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2014.05.027]
16. Khalil WA, Marei WFA, Khalid M. Protective effects of antioxidants on linoleic acid-treated bovine oocytes during maturation and subsequent embryo development. Theriogenology 2013; 80: 161-823. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2013.04.008]
17. Leão BCS, Rocha-Frigoni NAS, Cabral EC, Coelho MB, Ferreira CR, Eberlin MN, et al. Improved embryonic cryosurvival observed after in vitrosupplementation with conjugated linoleic acid is related tochanges in the membrane lipid profile Theriogenology 2015; 84: 127-136 [DOI:10.1016/j.theriogenology.2015.02.023]
18. Yang MY, Rajamahendran R. Expression of Bcl-2 and Bax proteins in relation to quality of bovine oocytes and embryos produced in vitro. Anim Reprod Sci 2002; 70: 159-169. [DOI:10.1016/S0378-4320(01)00186-5]
19. Marei WF, Wathes DC, Fouladi-Nashta AA. The effect of linolenic acid on bovine oocyte maturation and development. Biol Reprod 2009; 81: 1064-1072. [DOI:10.1095/biolreprod.109.076851]
20. Cognié Y, Baril G, Poulin N, Mermillod P. Current status of embryo technologies in ovine and goat. Theriogenology 2003; 59: 171-188. [DOI:10.1016/S0093-691X(02)01270-0]
21. Dehghani-Mohammadabadi M, Salehi M, Farifteh F, Nematollahi S, Arefian E, Hajjarizadeh A, et al. Melatonin modulates the expression of BCL-xl and improve the development of vitrified embryos obtained by IVF in mice. J Assist Reprod Genet 2014; 31: 453-461. [DOI:10.1007/s10815-014-0172-9]
22. Lopes CN, Scarpa AB, Cappellozza BI, Cooke RF, Vasconcelos JLM. Effects of rumen-protected polyunsaturated fatty acid supplementation on reproductive performance of Bosindicus beef cows. J Anim Sci 2009; 87: 3935-3943. [DOI:10.2527/jas.2009-2201]
23. Juchem SO, Cerri RL, Villasenor M, Galvao KN, Bruno RG. Rutigliano HM, et al. Supplementation with calcium salts of linoleic and transoctadecenoic acids improves fertility of lactating dairy cows. Reprod Domest Anim 2010; 45: 55-62. [DOI:10.1111/j.1439-0531.2008.01237.x]
24. Ambrose DJ, Kastelic JP, Corbett R, Pitney PA, Petit HV, Small JA, et al. Lower pregnancy losses in lactating dairy cows fed a diet enriched in alpha-linolenic acid. J Dairy Sic 2006; 89: 3066-3074. [DOI:10.3168/jds.S0022-0302(06)72581-4]
25. Marei WF, Wathes DC, Fouladi-Nashta AA. Differential effects of linoleic and alpha-linolenic fatty acids on spatial and temporal mitochondrial distribution and activity in bovine oocytes. Reprod Fertil Dev 2012; 24: 679-690. [DOI:10.1071/RD11204]
26. Carro M, Buschiazzo J, Ríos GL, Oresti GM, Alberio RH. Linoleic acid stimulates neutral lipid accumulation in lipid drop lets of maturing bovine oocytes. Theriogenology 2013; 79: 687-694. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2012.11.025]
27. Kim JY, Kinoshita M, OhnishiM, FukuiY. Lipid and fatty acid analysis of fresh and frozen-thawed immature and in vitro matured bovine oocytes. Reproduction 2001; 122: 131-138. [DOI:10.1530/rep.0.1220131]
28. Zhang X, Wu XQ, Lu S, Guo YL, Ma X. Deficit of mitochondria derived ATP during oxidative stress impairs mouse MII oocyte spindles. Cell Res 2006; 16: 841-850. [DOI:10.1038/sj.cr.7310095]
29. Absalón-Medina VA, Bedford-Guaus SJ, Gilbert RO, Siqueira LC, Esposito G, Schneider A, Cheong SH, et al. The effects of conjugated linoleic acid isomers cis-9, trans-11 and trans-10,cis-12 on in vitro bovine embryo production and cryopreservation. J Dairy Sci 2014; 97: 6164-6176. [DOI:10.3168/jds.2013-7719]
30. Reis A, Rooke JA, McCallum GJ, Staines ME, Ewen M, Lomax MA, et al. Consequences of exposure to serum, with or without vitamin E supplementation, in terms of the fatty acid content and viability of bovine blastocysts produced in vitro. Reprod Fertil Dev 2003; 15: 275-284. [DOI:10.1071/RD03004]
31. Stinshoff H, Wilkening S, Hanstedt A, Bollwein H, Wrenzycki C. Dimethylsulfoxide and conjugated linoleic acids affect bovine embryo developmentin vitro. Reprod Fertil Dev 2014; 26: 502-510. [DOI:10.1071/RD12372]
32. Marei WF, Wathes DC, Fouladi-Nashta AA. The effect of linolenic acid on bovine oocyte maturation and development. Biol Reprod 2009; 81: 1064- 1072. [DOI:10.1095/biolreprod.109.076851]
33. Knijn HM, Wrenzycki C, Hendriksen PJM, VosPLAM, Zeinstra EC, van der Weijden GC, et al. In vitro and in vivo culture effects on mRNA expression of genes involved in metabolism and apoptosis in bovine embryos. Reprod Fertil Dev 2005; 17: 775-784. [DOI:10.1071/RD05038]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
