جمعه 7 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 16، شماره 2 - ( 11-1396 )
جلد 16 شماره 2 صفحات 108-101 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Sameni H R, Javadinia S S, Safari M, Tabrizi Amjad M H, Khanmohammadi N, Parsaie H et al . Effect of quercetin on the number of blastomeres, zona pellucida thickness, and hatching rate of mouse embryos exposed to actinomycin D: An experimental study. IJRM 2018; 16 (2) :101-108
URL: http://ijrm.ir/article-1-971-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-971-fa.html
ثامنی حمید رضا، جوادی نیا سارا سادات، صفری منوچهر، تبریزی امجد محمد حسن، خان محمدی نسرین، پارسایی هومن و همکاران.. بررسی اثر کوئرستین بر روی تعداد بلاستومرها، ضخامت زونا پلوسیدا و میزان هچ شدن جنین های موش قرار گرفته در معرض اکتینومایسین D: یک مطالعه تجربی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1396; 16 (2) :101-108
حمید رضا ثامنی1 
، سارا سادات جوادی نیا1 ، منوچهر صفری1 ، محمد حسن تبریزی امجد1 ، نسرین خان محمدی1 ، هومن پارسایی1 ، سام زربخش* 2
، سارا سادات جوادی نیا1 ، منوچهر صفری1 ، محمد حسن تبریزی امجد1 ، نسرین خان محمدی1 ، هومن پارسایی1 ، سام زربخش* 2
1- مرکز تحقیقات سلول های بنیادی سیستم عصبی، گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی سمنان، سمنان، ایران
2- مرکز تحقیقات سلول های بنیادی سیستم عصبی، گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی سمنان، سمنان، ایران ، smzarbakhsh@gmail.com
2- مرکز تحقیقات سلول های بنیادی سیستم عصبی، گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی سمنان، سمنان، ایران ، smzarbakhsh@gmail.com
چکیده: (17033 مشاهده)
مقدمه: کوئرستین یک فلاونویید با توانایی بهبود رشد جنین در محیط آزمایشگاهی میباشد، و اکتینومایسین D یک القاءکننده آپوپتوز در سلولهای جنینی است.
هدف: هدف از انجام این مطالعه، بررسی اثر کوئرستین بر روی تعداد سلولهای زنده و آپوپتوزی، ضخامت زونا پلوسیدا و میزان هچ شدن جنینهای قرار گرفته در معرض اکتینومایسین D پیش از لانه گزینی در موش بود.
موارد و روشها: جنینهای دو سلولی به طور تصادفی به چهار گروه (کنترل، کوئرستین، اکتینومایسین D و کوئرستین+اکتینومایسین D) تقسیم شدند. درصد بلاستوسیست ها و بلاستوسیست های هچ شده و ضخامت زونا پلوسیدا محاسبه شد. تعداد بلاستومرها با استفاده از رنگآمیزی هوخست و پروپیدیوم یدید، و تعداد سلولهای آپوپتوزی با استفاده از روش تانل شمارش شد.
نتایج: نتایج نشان داد که استفاده از کوئرستین به طور معناداری رشد جنینها را در مقایسه با گروه کنترل بهبود بخشید (p=0/037). به علاوه، کوئرستین به طور معناداری اثرات مخرب اکتینومایسین D بر رشد جنینها را کاهش داد (p=0/026)
نتیجهگیری: کوئرستین ممکن است از جنینها در برابر اکتینومایسین D محافظت کند به طوری که تعداد سلولهای زنده را افزایش و تعداد سلولهای آپوپتوزی را کاهش دهد، که میتواند به رشد بلاستوسیستها، نازک شدن ضخامت زونا پلوسیدا و افزایش میزان هچ شدن جنین موش کمک کند.
هدف: هدف از انجام این مطالعه، بررسی اثر کوئرستین بر روی تعداد سلولهای زنده و آپوپتوزی، ضخامت زونا پلوسیدا و میزان هچ شدن جنینهای قرار گرفته در معرض اکتینومایسین D پیش از لانه گزینی در موش بود.
موارد و روشها: جنینهای دو سلولی به طور تصادفی به چهار گروه (کنترل، کوئرستین، اکتینومایسین D و کوئرستین+اکتینومایسین D) تقسیم شدند. درصد بلاستوسیست ها و بلاستوسیست های هچ شده و ضخامت زونا پلوسیدا محاسبه شد. تعداد بلاستومرها با استفاده از رنگآمیزی هوخست و پروپیدیوم یدید، و تعداد سلولهای آپوپتوزی با استفاده از روش تانل شمارش شد.
نتایج: نتایج نشان داد که استفاده از کوئرستین به طور معناداری رشد جنینها را در مقایسه با گروه کنترل بهبود بخشید (p=0/037). به علاوه، کوئرستین به طور معناداری اثرات مخرب اکتینومایسین D بر رشد جنینها را کاهش داد (p=0/026)
نتیجهگیری: کوئرستین ممکن است از جنینها در برابر اکتینومایسین D محافظت کند به طوری که تعداد سلولهای زنده را افزایش و تعداد سلولهای آپوپتوزی را کاهش دهد، که میتواند به رشد بلاستوسیستها، نازک شدن ضخامت زونا پلوسیدا و افزایش میزان هچ شدن جنین موش کمک کند.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Paternot G, Debrock S, D'Hooghe TM, Spiessens C. Early embryo development in a sequential versus single medium: a randomized study. Reprod Biol Endocrinol 2010; 8: 83. [DOI:10.1186/1477-7827-8-83]
2. Li XX, Lee KB, Lee JH, Kim KJ, Kim EY, Han KW, et al. Glutathione and cysteine enhance porcine preimplantation embryo development in vitro after intracytoplasmic sperm injection. Theriogenology 2014; 81: 309-314. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2013.09.030]
3. Truong TT, Soh YM, Gardner DK. Antioxidants improve mouse preimplantation embryo development and viability. Hum Reprod 2016; 31: 1445-1454. [DOI:10.1093/humrep/dew098]
4. Perez A, Gonzalez-Manzano S, Jimenez R, Perez-Abud R, Haro JM, Osuna A, et al. The flavonoid quercetin induces acute vasodilator effects in healthy volunteers: correlation with beta-glucuronidase activity. Pharmacol Res 2014; 89: 11-18. [DOI:10.1016/j.phrs.2014.07.005]
5. Lee SK, Oh KH, Chung AY, Park HC, Lee SH, Kwon SY, et al. Protective role of quercetin against cisplatin-induced hair cell damage in zebrafish embryos. Hum Exp Toxicol 2015; 34: 1043-1052. [DOI:10.1177/0960327114567766]
6. Kang JT, Moon JH, Choi JY, Park SJ, Kim SJ, Saadeldin IM, et al. Effect of antioxidant flavonoids (quercetin and taxifolin) on in vitro maturation of porcine oocytes. Asian-Australas J Anim Sci 2016; 29: 352-358. [DOI:10.5713/ajas.15.0341]
7. Sistani Karampour N, Arzi A, Najafzadeh Varzi H, Mohammadian B, Rezaei M. Quercetin preventive effects on theophylline-induced anomalies in rat embryo. Jundishapur J Nat Pharm Prod 2014; 9: e17834. [DOI:10.17795/jjnpp-17834]
8. Cao L, Tan C, Meng F, Liu P, Reece EA, Zhao Z. Amelioration of intracellular stress and reduction of neural tube defects in embryos of diabetic mice by phytochemical quercetin. Sci Rep 2016; 6: 21491. [DOI:10.1038/srep21491]
9. Cesconetto EC, Junior FS, Crisafuli FA, Mesquita ON, Ramos EB, Rocha MS. DNA interaction with Actinomycin D: mechanical measurements reveal the details of the binding data. Phys Chem Chem Phys 2013; 15: 11070-11077. [DOI:10.1039/c3cp50898f]
10. Abdelrazik H, Sharma R, Mahfouz R, Agarwal A. L-carnitine decreases DNA damage and improves the in vitro blastocyst development rate in mouse embryos. Fertil Steril 2009; 91: 589-596. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.11.067]
11. Niknafs B, Mehdipour A, Mohammadi Roushandeh A. Melatonin improves development of early mouse embryos impaired by actinomycin-D and TNF-α. Iran J Reprod Med 2014; 12: 799-804.
12. Marco-Jiménez F, Naturil-Alfonso C, Jiménez-Trigos E, Lavara R, Vicente JS. Influence of zona pellucida thickness on fertilization, embryo implantation and birth. Anim Reprod Sci 2012; 132: 96-100. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2012.04.008]
13. Filho ES, Noble JA, Wells D. A review on automatic analysis of human embryo microscope images. Open Biomed Eng J 2010; 4: 170-177. [DOI:10.2174/1874120701004010170]
14. Ghannadi A, Kazerooni M, Jamalzadeh F, Amiri S, Rostami P, Absalan F. The effects of laser assisted hatching on pregnancy rates. Iran J Reprod Med 2011; 9: 95-98.
15. Lundin K, Bergh C, Hardarson T. Early embryo cleavage is a strong indicator of embryo quality in human IVF. Hum Reprod 2001; 16: 2652-2657. [DOI:10.1093/humrep/16.12.2652]
16. Khanmohammadi N, Movahedin M, Safari M, Sameni HR, Yousefi B, Jafari B, et al. Effect of L-carnitine on in vitro developmental rate, the zona pellucida and hatching of blastocysts and their cell numbers in mouse embryos. Int J Reprod Biomed 2016; 14: 649-656. [DOI:10.29252/ijrm.14.10.649]
17. Yu S, Long H, Lyu QF, Zhang QH, Yan ZG, Liang HX, et al. Protective effect of quercetin on the development of preimplantation mouse embryos against hydrogen peroxide-induced oxidative injury. PLoS One 2014; 9: e89520. [DOI:10.1371/journal.pone.0089520]
18. Pérez-Pastén R, Martínez-Galero E, Chamorro-Cevallos G. Quercetin and naringenin reduce abnormal development of mouse embryos produced by hydroxyurea. J Pharm Pharmacol 2010; 62: 1003-1009. [DOI:10.1111/j.2042-7158.2010.01118.x]
19. Dai SJ, Xu CL, Wang J, Sun YP, Chian RC. Effect of culture medium volume and embryo density on early mouse embryonic development: tracking the development of the individual embryo. J Assist Reprod Genet 2012; 29: 617-623. [DOI:10.1007/s10815-012-9744-8]
20. Fouladi-Nashta AA, Alberio R, Kafi M, Nicholas B, Campbell KH, Webb R. Differential staining combined with TUNEL labelling to detect apoptosis in preimplantation bovine embryos. Reprod Biomed Online 2005; 10: 497-502. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60827-9]
21. Fouladi-Nashta AA, Wonnacott KE, Gutierrez CG, Gong JG, Sinclair KD, Garnsworthy PC, et al. Oocyte quality in lactating dairy cows fed on high levels of n-3 and n-6 fatty acids. Reproduction 2009; 138: 771-781. [DOI:10.1530/REP-08-0391]
22. Barreca D, Bellocco E, D'Onofrio G, Nabavi SF, Daglia M, Rastrelli L, et al. Neuroprotective Effects of Quercetin: From Chemistry to Medicine. CNS Neurol Disord Drug Targets 2016; 15: 964-975. [DOI:10.2174/1871527315666160813175406]
23. Sohn US, Lee SE, Lee SH, Nam Y, Hwang WK, Sohn UD. The protective mechanism of quercetin-3-O-β-D-glucuronopyranoside (QGC) in H2O2-induced injury of feline esophageal epithelial cells. Arch Pharm Res 2016; 39: 1324-1334. [DOI:10.1007/s12272-016-0808-7]
24. Shahzad H, Giribabu N, Karim K, Kassim N, Muniandy S, Kumar KE, et al. Quercetin interferes with the fluid volume and receptivity development of the uterus in rats during the peri-implantation period. Reprod Toxicol 2017; 71: 42-54. [DOI:10.1016/j.reprotox.2017.04.004]
25. Cortázar TM, Coombs GH, Walker J. Leishmania panamensis: comparative inhibition of nuclear DNA topoisomerase II enzymes from promastigotes and human macrophages reveals anti-parasite selectivity of fluoroquinolones, flavonoids and pentamidine. Exp Parasitol 2007; 116: 475-482. [DOI:10.1016/j.exppara.2007.02.018]
26. Crespo I, García-Mediavilla MV, Almar M, González P, Tu-ón MJ, Sánchez-Campos S, et al. Differential effects of dietary flavonoids on reactive oxygen and nitrogen species generation and changes in antioxidant enzyme expression induced by proinflammatory cytokines in Chang Liver cells. Food Chem Toxicol 2008; 46: 1555-1569. [DOI:10.1016/j.fct.2007.12.014]
27. Liu XF, Xiang L, Zhou Q, Carralot JP, Prunotto M, Niederfellner G, et al. Actinomycin D enhances killing of cancer cells by immunotoxin RG7787 through activation of the extrinsic pathway of apoptosis. Proc Natl Acad Sci U S A 2016; 113: 10666-10671. [DOI:10.1073/pnas.1611481113]
28. Moura MT, de Sousa RV, de Oliveira Leme L, Rumpf R. Analysis of actinomycin D treated cattle oocytes and their use for somatic cell nuclear transfer. Anim Reprod Sci 2008; 109: 40-49. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2007.10.013]
29. Bayir H, Kagan VE. Bench-to-bedside review: Mitochondrial injury, oxidative stress and apoptosis--there is nothing more practical than a good theory. Crit Care 2008; 12: 206. [DOI:10.1186/cc6779]
30. Jazvinšćak Jembrek M, Vuković L, Puhović J, Erhardt J, Oršolić N. Neuroprotective effect of quercetin against hydrogen peroxide-induced oxidative injury in P19 neurons. J Mol Neurosci 2012; 47: 286-299. [DOI:10.1007/s12031-012-9737-1]
31. Carrasco-Pozo C, Mizgier ML, Speisky H, Gotteland M. Differential protective effects of quercetin, resveratrol, rutin and epigallocatechin gallate against mitochondrial dysfunction induced by indomethacin in Caco-2 cells. Chem Biol Interact 2012; 195: 199-205. [DOI:10.1016/j.cbi.2011.12.007]
32. Nabavi SF, Nabavi SM, Latifi AM, Mirzaei M, Habtemariam S, Moghaddam AH. Mitigating role of quercetin against sodium fluoride-induced oxidative stress in the rat brain. Pharm Biol 2012; 50: 1380-1383. [DOI:10.3109/13880209.2012.675341]
33. Sovernigo TC, Adona PR, Monzani PS, Guemra S, Barros F, Lopes FG, et al. Effects of supplementation of medium with different antioxidants during in vitro maturation of bovine oocytes on subsequent embryo production. Reprod Domest Anim 2017; 52: 561-569. [DOI:10.1111/rda.12946]
34. Adler A, Lee HL, McCulloh DH, Ampeloquio E, Clarke-Williams M, Wertz BH, et al. Blastocyst culture selects for euploid embryos: comparison of blastomere and trophectoderm biopsies. Reprod Biomed Online 2014; 28: 485-491. [DOI:10.1016/j.rbmo.2013.11.018]
35. Basirat Z, Adib Rad H, Esmailzadeh S, Jorsaraei SG, Hajian-Tilaki K, Pasha H, et al. Comparison of pregnancy rate between fresh embryo transfers and frozen-thawed embryo transfers following ICSI treatment. Int J Reprod Biomed 2016; 14: 39-46. [DOI:10.29252/ijrm.14.1.39]
36. Aflatoonian A, Karimzadeh Maybodi MA, Aflatoonian N, Tabibnejad N, Amir-Arjmand MH, Soleimani M, et al. Perinatal outcome in fresh versus frozen embryo transfer in ART cycles. Int J Reprod Biomed 2016; 14: 167-172. [DOI:10.29252/ijrm.14.3.167]
37. Matos FD, Rocha JC, Nogueira MF. A method using artificial neural networks to morphologically assess mouse blastocyst quality. J Anim Sci Technol 2014; 56: 15. [DOI:10.1186/2055-0391-56-15]
38. Rocha JC, Passalia F, Matos FD, Maserati MPJr, Alves MF, Almeida TG, et al. Methods for assessing the quality of mammalian embryos: How far we are from the gold standard? JBRA Assist Reprod 2016; 20: 150-158.
39. Zullo G, Albero G, Neglia G, De Canditiis C, Bifulco G, Campanile G, et al. L-ergothioneine supplementation during culture improves quality of bovine in vitro-produced embryos. Theriogenology 2016; 85: 688-697. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2015.10.008]
40. Du QY, Wang EY, Huang Y, Guo XY, Xiong YJ, Yu YP, et al. Blastocoele expansion degree predicts live birth after single blastocyst transfer for fresh and vitrified/warmed single blastocyst transfer cycles. Fertil Steril 2016; 105: 910-919. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2015.12.014]
41. Bain NT, Madan P, Betts DH. The early embryo response to intracellular reactive oxygen species is developmentally regulated. Reprod Fertil Dev 2011; 23: 561-575. [DOI:10.1071/RD10148]
42. Karlsson JO, Szurek EA, Higgins AZ, Lee SR, Eroglu A. Optimization of cryoprotectant loading into murine and human oocytes. Cryobiology 2014; 68: 18-28. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2013.11.002]
43. Balakier H, Sojecki A, Motamedi G, Bashar S, Mandel R, Librach C. Is the zona pellucida thickness of human embryos influenced by women's age and hormonal levels? Fertil Steril 2012; 98: 77-83. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2012.04.015]
44. Montag M, Koll B, Holmes P, van der Ven. Significance of the number of embryonic cells and the state of the zona pellucida for hatching of mouse blastocysts in vitro versus in vivo. Biol Reprod 2000; 62: 1738-1744. [DOI:10.1095/biolreprod62.6.1738]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
