International Journal of Reproductive BioMedicine

en بررسی تأثیر افزودن ملاتونین و مایع فولیکولی انسان به محیط کشت بلوغ آزمایشگاهی بر تکوین تخمک های مرحله ژرمینال وزیکول موش: یک مطالعه آزمایشگاهی Effects of melatonin and human follicular fluid supplementation of in vitro maturation medium on mouse vitrified germinal vesicle oocytes: A laboratory study Assisted Reproductive Technologies Original Article Original Article <div style="text-align: justify;">مقدمه: انجماد شیشهای بعنوان موثرترین روش نگهداری طولانی مدت نگهداری تخمک، توانسته امکان نگهداری تخمک را در وضعیتهای مختلف به ویژه بیماران دچار سرطان تخمک و نیازمند جراحی، فراهم نماید. البته روشهای بلوغ آزمایشگاهی تخمک برای تخمکهای منجمد شده نیازمند اصلاح و بهبود است. هدف: از آنجا که ملاتونین و مایع فولیکولی ممکن است بر تکوین تخمک در محیط آزمایشگاه اثر بگذارند، مطالعه حاضر تأثیر آنها را در تغییر میزان صدمات احتمالی ناشی از انجماد شیشهای تخمکهای نارس موش بررسی کرده است. مواد و روش ها: چهارصد تخمک نارس از تخمدان موشهای نژاد NMRI تهیه و پس از انجماد شیشهای در گروههای زیر شامل گروه کنترل تیمار         (C-Vit-GV) و گروههای تیمار شامل: ملاتونین، مایع فولیکولی و هر دو، قرار گرفتند. تعدادی تخمک نابالغ منجمد نشده (Non-Vit-GV) و تعدادی تخمک بالغ متافازی منجمد نشده (Vivo-MII) به ترتیب برای بررسی شرایط انجماد شیشهای و بلوغ آزمایشگاهی بکار گرفته شدند. میزان بلوغ آزمایشگاهی و تکوین بعدی آنها به جنین 2 سلولی در گروههای مختلف بررسی شد. نتایج: تکوین جنین ها به مرحله دوسلولی در گروه Vivo-MII با گروه Non-Vit-GV قابل مقایسه بود. همچنین میزان بلوغ آزمایشگاهی و تکوین بعدی به جنین دوسلولی در گروه Non-Vit-GV با گروه C-Vit-GV قابل مقایسه بود. از طرفی میزان بلوغ آزمایشگاهی و لقاح آزمایشگاهی در گروههای            M-Vit-GV، hFF-Vit-GV و M+hFF-Vit-GV و C-Vit-GV نیز قابل مقایسه بود. نتیجه گیری: از نتایج مطالعه حاضر نتیجهگیری میکنیم در صورتیکه شرایط انجماد شیشهای، بلوغ آزمایشگاهی و لقاح آزمایشگاهی به اندازه کافی بهینه باشند بدون استفاده از مکملها میتوان به میزان قابل قبولی از بلوغ آزمایشگاهی و لقاح آزمایشگاهی دست پیدا کرد.</div> <div style="text-align: justify;">Background: Vitrification as the most efficient method of cryopreservation, enables successful storage of oocytes for couples who undergo specific procedures including surgery and chemotherapy. However, the efficacy of in vitro maturation (IVM) methods with vitrified germinal vesicle (GV) oocytes could be improved. Objectives: As melatonin and follicular fluid (FF) might enhance IVM conditions, we used these supplements to assess the maturation rate of vitrified GV oocytes and their artificial fertilization rate. Materials and Methods: Four hundred mouse GV oocytes were harvested, vitrified, and assigned into control (C-Vit-GV) and treatment groups of melatonin (M-Vit-GV), human follicular fluid (HFF-Vit-GV), and a combination (M + HFF-Vit-GV). A non-vitrified group of GV oocytes (non-Vit-GV) and a group of in vivo matured metaphase II (Vivo-MII) oocytes served as control groups to evaluate the vitrification and IVM conditions, respectively. Maturation of GV oocytes to MII and further development to two-cell-stage embryos were determined in the different groups. Results: Development to two-cell embryos was comparable between the Vivo-MII and non-Vit-GV groups. IVM and in vitro fertilization (IVF) results in the non-Vit-GV group were also comparable with the C-Vit-GV oocytes. In addition, the IVM and IVF outcomes were similar across the different treatment groups including the M-Vit-GV, HFF-Vit-GV, M + HFF-Vit-GV, and C-Vit-GV oocytes. Conclusion: Employing an appropriate technique of vitrification followed by suitable IVM conditions can lead to reasonable IVF outcomes which may not benefit from extra supplementations. However, whether utilizing other supplementation formulas could improve the outcome requires further investigation.</div> انجماد, ژرمینال وزیکول, بلوغ تخمک در شرایط آزمایشگاهی, ملاتونین, مایع فولیکولی. Vitrification, Germinal vesicle, In vitro oocyte maturation, Melatonin, Follicular fluid. 889 898 http://ijrm.ir/browse.php?a_code=A-10-173-1&slc_lang=en&sid=1 Razieh Doroudi r.doroudi67@gmail.com 0000-0002-4583-1495 No Department of Anatomy, Afzalipour School of Medicine, Kerman University of Medical Sciences, Kerman, Iran. Zohre Changizi zohrechangizi@gmail.com 0000-0003-4588-3639 No Leishmaniasis Research Center, Kerman University of Medical Sciences, Kerman, Iran. Seyed Noureddin Nematollahi-Mahani nnematollahi@kmu.ac.ir 0000-0002-4733-1953 Yes Kerman Physiology Research Center, Institute of Neuropharmacology, Kerman University of Medical Sciences, Kerman, Iran.