سه شنبه 11 دی 1403
[Archive]
دوره 16، شماره 5 - ( 2-1397 )
جلد 16 شماره 5 صفحات 340-335 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Barati S, Movahedin M, Batooli H. In vitro antiapoptotic effects of the calligonum extract on spermatogonial stem cells. IJRM 2018; 16 (5) :335-340
URL: http://ijrm.ir/article-1-1109-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-1109-fa.html
براتی شیرین، موحدین منصوره، بتولی حسین. اثرات آنتی آپوپتوزی عصاره کالیگونوم بر سلول های بنیادی اسپرماتوگونی در محیط کشت. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1397; 16 (5) :335-340
شیرین براتی1 
، منصوره موحدین* 
2، حسین بتولی3
، منصوره موحدین* 2، حسین بتولی3
1- گروه آناتومی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
2- گروه آناتومی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران ،movahed.m@modares.ac.ir
3- ایستگاه تحقیقات کاشان (باغ گیاه شناسی کاشان)، ﺑﺨﺶ ﺗﺤﻘﯿﻘﺎت ﻣﻨﺎﺑﻊ ﻃﺒﯿﻌﯽ، ﻣﺮﮐﺰ ﺗﺤﻘﯿﻘﺎت و آﻣﻮزش ﮐﺸﺎورزی و ﻣﻨﺎﺑﻊ ﻃﺒﯿﻌﯽ اﺻﻔﻬﺎن، ﺳﺎزﻣﺎن ﺗﺤﻘﯿﻘﺎت، آﻣﻮزش و ﺗﺮویﺞ ﮐﺸﺎورزی، اصفهان، ایﺮان
2- گروه آناتومی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران ،
3- ایستگاه تحقیقات کاشان (باغ گیاه شناسی کاشان)، ﺑﺨﺶ ﺗﺤﻘﯿﻘﺎت ﻣﻨﺎﺑﻊ ﻃﺒﯿﻌﯽ، ﻣﺮﮐﺰ ﺗﺤﻘﯿﻘﺎت و آﻣﻮزش ﮐﺸﺎورزی و ﻣﻨﺎﺑﻊ ﻃﺒﯿﻌﯽ اﺻﻔﻬﺎن، ﺳﺎزﻣﺎن ﺗﺤﻘﯿﻘﺎت، آﻣﻮزش و ﺗﺮویﺞ ﮐﺸﺎورزی، اصفهان، ایﺮان
چکیده: (2814 مشاهده)
مقدمه: سلولهای بنیادی اسپرماتوگونی اساس اسپرماتوژنز و باروری مردان هستند. بنابراین حفظ و کشت آنها بسیار مهم است.
هدف: در این مطالعه، ما اثرات حفاظتی کالیگونوم را بر روی بقا، آپوپتوز و بیان ژنهای آنتیآپوپتوزی سلولهای بنیادی اسپرماتوگونی را، در محیط کشت ارزیابی کردیم.
موارد و روشها: بعد از 24 ساعت از کشت، سلولهای بنیادی اسپرماتوگونی با دوز 30 میکرومولار از H2O2 تیمار شدند و سپسμg/ml 10 از عصاره کالیگونوم را به مدت 3 هفته اضافه کردیم. بقا با تریپان بلو، آپوپتوز با استفاده از PI-Annexin و در نهایت بیان ژنهای Bax، Bcl-2 و P53 با Real-Time واکنش زنجیرهای پلیمراز ارزیابی گردید.
نتایج: پس از 3 هفته از تیمار، بقا در گروه H2O2 بهمراه عصاره کالیگونوم، بصورت معنیداری (p=0/001) بالاتر از گروه تیمار با H2O2 به تنهایی بود. در گروه H2O2 به همراه عصاره کالیگونوم، آپوپتوز و همچنین بیان ژنهای آپوپتوزی Bax و P53 بطور معنیداری پایینتر از گروه تیمار با H2O2 به تنهایی بود.
نتیجهگیری: نتایج این مطالعه نشان داد که دوز 30 میکرومولار از H2O2، آپوپتوز را افزایش میدهد اما بقا را در سلولهای بنیادی اسپرماتوگونی کاهش میدهد. کالیگونوم دارای خواص آنتیاکسیدانی است که میتواند آپوپتوز و بیان ژنهای Bax و P53 را کاهش دهد و بقا و بیان ژن Bcl-2 را افزایش دهد.
هدف: در این مطالعه، ما اثرات حفاظتی کالیگونوم را بر روی بقا، آپوپتوز و بیان ژنهای آنتیآپوپتوزی سلولهای بنیادی اسپرماتوگونی را، در محیط کشت ارزیابی کردیم.
موارد و روشها: بعد از 24 ساعت از کشت، سلولهای بنیادی اسپرماتوگونی با دوز 30 میکرومولار از H2O2 تیمار شدند و سپسμg/ml 10 از عصاره کالیگونوم را به مدت 3 هفته اضافه کردیم. بقا با تریپان بلو، آپوپتوز با استفاده از PI-Annexin و در نهایت بیان ژنهای Bax، Bcl-2 و P53 با Real-Time واکنش زنجیرهای پلیمراز ارزیابی گردید.
نتایج: پس از 3 هفته از تیمار، بقا در گروه H2O2 بهمراه عصاره کالیگونوم، بصورت معنیداری (p=0/001) بالاتر از گروه تیمار با H2O2 به تنهایی بود. در گروه H2O2 به همراه عصاره کالیگونوم، آپوپتوز و همچنین بیان ژنهای آپوپتوزی Bax و P53 بطور معنیداری پایینتر از گروه تیمار با H2O2 به تنهایی بود.
نتیجهگیری: نتایج این مطالعه نشان داد که دوز 30 میکرومولار از H2O2، آپوپتوز را افزایش میدهد اما بقا را در سلولهای بنیادی اسپرماتوگونی کاهش میدهد. کالیگونوم دارای خواص آنتیاکسیدانی است که میتواند آپوپتوز و بیان ژنهای Bax و P53 را کاهش دهد و بقا و بیان ژن Bcl-2 را افزایش دهد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Niu Z, Goodyear SM, Avarbock MR, Brinster RL. Chemokine (C-X-C) ligand 12 facilitates trafficking of donor spermatogonial stem cells. Stem Cells Int 2016; 2016: 5796305. [DOI:10.1155/2016/5796305]
2. Morena AR, Boitani C, Pesce M, De Felici M, Stefanini M. Isolation of highly purified type A spermatogonia from prepubertal rat testis. J Androl 1996; 17: 708-717.
3. Huleihel M, Lunenfeld E. Regulation of spermatogenesis by paracrine/autocrine testicular factors. Asian J Androl 2004; 6: 259-268.
4. Alvarez JG, Touchstone JC, Blasco L, Storey BT. Spontaneous lipid peroxidation and production of hydrogen peroxide and superoxide in human spermatozoa. Superoxide dismutase as major enzyme protectant against oxygen toxicity. J Androl 1987; 8: 338-348. [DOI:10.1002/j.1939-4640.1987.tb00973.x]
5. Chaudière J, Ferrari-Iliou R. Intracellular antioxidants: from chemical to biochemical mechanisms. Food Chem Toxicol 1999; 37: 949-962. [DOI:10.1016/S0278-6915(99)00090-3]
6. Szeto HH. Cell-permeable, mitochondrial-targeted, peptide antioxidants. AAPS J 2006; 8: E277-283. [DOI:10.1007/BF02854898]
7. Singh M, Sharma H, Singh N. Hydrogen peroxide induces apoptosis in HeLa cells through mitochondrial pathway. Mitochondrion 2007; 7: 367-373. [DOI:10.1016/j.mito.2007.07.003]
8. Agarwal A, Gupta S, Sikka S. The role of freeradicals and antioxidants in reproduction. Curr Opin Obstet Gynecol 2006; 18: 325-332. [DOI:10.1097/01.gco.0000193003.58158.4e]
9. Nagata H, Takekoshi S, Takagi T, Honma T, Watanabe K. Antioxidative action of flavonoids, quercetin and catechin, mediated by the activation of glutathione peroxidase. Tokai J Exp Clin Med 1999; 24: 1-11.
10. Ha SJ, Kim BG, Lee YA, Kim YH, Kim BJ, Jung SE, et al. Effect of antioxidants and apoptosis inhibitors on cryopreservation of murine germ cells enriched for spermatogonial stem cells. PloS One 2016; 11: e0161372. [DOI:10.1371/journal.pone.0161372]
11. Hashemi E, Akhavan O, Shamsara M, Daliri M, Dashtizad M, Farmany A. Synthesis and cyto-genotoxicity evaluation of graphene on mice spermatogonial stem cells. Colloids Surf Biointerfaces 2016; 146: 770-776. [DOI:10.1016/j.colsurfb.2016.07.019]
12. Shi L, Zhao H, Ren Y, Yao X, Song R, Yue W. Effects of different levels of dietary selenium on the proliferation of spermatogonial stem cells and antioxidant status in testis of roosters. Anim Reprod Sci 2014; 149: 266-272. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2014.07.011]
13. Batooli H, Haghir-Ebrahimabadi A, Choromzadeh M, Hadizade Hafshejani M, Mazoochi A. The survey and comparison of the essential oils chemical composition of two Calligonum L. species from Aran & Bidgol area. Eco-phytochem J Med Plants 2013; 1: 13-24.
14. Jahromi MA, Movahedin M, Amanloo M, Mowla JS, Mazaheri Z, Batouli H. [The effects of calligonum extract on sperm parameters and the rate of apoptosis in aged male mice testis issue.] Modares J Med Sci Pathobiol 2013; 16: 41-54. (in Persian)
15. Badria FA, Ameen M, Akl MR. Evaluation of cytotoxic compounds from calligonum comosum L growing in Egypt. Z Naturforsch C 2007; 62: 656-660. [DOI:10.1515/znc-2007-9-1005]
16. Boonsorn T, Kongbuntad W, Narrkong N, Aengwanich X. Effects of catechin addition to extender on sperm quality and lipid proxidation in boar semen. Am Eur J Agric Environ Sci 2010; 7: 283-288.
17. Shalabi M, Khilo K, Zakaria MM, Elsebaei MG, Abdo W, Awadin W. Anticancer activity of Aloe vera and Calligonum comosum extracts separetely on hepatocellular carcinoma cells. Asian Pac J Trop Biomed 2015; 5: 375-381. [DOI:10.1016/S2221-1691(15)30372-5]
18. Barati S, Movahedin M, Mazaheri Z, Batooli H, Tahmasebi F. Establishment of oxidative stress modeling during spermatogonial stem cells cultivation treated with different doses of H2O2. Anat Sci J 2015; 12: 23-28.
19. Fakhraei M, Nejati V, Delirazh N. Vanadium Schiff base compound mediated apoptosis and cytotoxicity effects in K562 cell line. J Army Univ Med Sci 2012; 10: 185-191.
20. Honaramooz A, Megee SO, Dobrinski I. Germ cell transplantation in pigs. Biol Reprod 2002; 66: 21-28. [DOI:10.1095/biolreprod66.1.21]
21. Ogawa T. Spermatogonial transplantation: the principle and possible applications. J Mol Med 2001; 79: 368-374. [DOI:10.1007/s001090100228]
22. Oatley JM, Avarbock MR, Telaranta AI, Fearon DT, Brinster RL. Identifying genes important for spermatogonial stem cell self-renewal and survival. Proc Natl Acad Sci USA 2006; 103: 9524-9529. [DOI:10.1073/pnas.0603332103]
23. Brinster RL, Zimmermann JW. Spermatogenesis following male germ-cell transplantation. Proc Natl Acad Sci USA 1994; 91: 11298-11302. [DOI:10.1073/pnas.91.24.11298]
24. Zhou DX, Qiu SD, Zhang J, Tian H, Wang HX. The protective effect of vitamin E against oxidative damage caused by formaldehyde in the testes of adult rats. Asian J Androl 2006; 8: 584-588. [DOI:10.1111/j.1745-7262.2006.00198.x]
25. Halliwell B. Cell culture, oxidative stress, and antioxidants: avoiding pitfalls. Biomed J 2014; 37: 99-105. [DOI:10.4103/2319-4170.128725]
26. Weisiger RA, Fridovich I. Mitochondrial superoxide dismutase Site of synthesis and intramitochondrial localization. J Biol Chem 1973; 248: 4793-4796.
27. Sikka SC. Oxidative stress and role of antioxidants in normal and abnormal sperm function. Front Biosci 1996; 1: e78-86. [DOI:10.2741/A146]
28. Lai HC, Yeh YC, Wang LC, Ting CT, Lee WL, Wang KY, et al. Propofol ameliorates doxorubicin-induced oxidative stress and cellular apoptosis in rat cardiomyocytes. Toxicol Appl Pharmacol 2011; 257:437-448. [DOI:10.1016/j.taap.2011.10.001]
29. Rengarajan T, Nandakumar N, Rajendran P, Haribabu L, Nishigaki I, Balasubramanian MP. D-Pinitol Promotes Apoptosis in MCF-7 Cells via Induction of p53 and Bax and Inhibition of Bcl-2 and NF-kB. Asian Pac J Cancer Prev 2014; 15: 1757-1762. [DOI:10.7314/APJCP.2014.15.4.1757]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
