شنبه 1 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 16، شماره 8 - ( 5-1397 )
جلد 16 شماره 8 صفحات 528-519 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Fani M, Mohammadipour A, Ebrahimzadeh Bideskan A. The effect of crocin on testicular tissue and sperm parameters of mice offspring from mothers exposed to atrazine during pregnancy and lactation periods: An experimental study. IJRM 2018; 16 (8) :519-528
URL: http://ijrm.ir/article-1-1178-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-1178-fa.html
فانی معصومه، محمدی پور عباس، ابراهیم زاده بیدسکان علیرضا. مطالعه اثرات مواجهه با آترازین در طی حاملگی و شیردهی بر آپوپتوز سلولهای بیضه فرزندان موش صحرایی و اثرات محافظتی کروسین. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1397; 16 (8) :519-528
1- گروه علوم تشریحی و بیولوژی سلولی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مشهد، مشهد، ایران
2- گروه علوم تشریحی و بیولوژی سلولی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مشهد، مشهد، ایران ، EbrahimzadehBA@mums.ac.ir
2- گروه علوم تشریحی و بیولوژی سلولی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مشهد، مشهد، ایران ، EbrahimzadehBA@mums.ac.ir
چکیده: (3142 مشاهده)
مقدمه: آترازین یک علفکش است که با ورود به بدن انسان میتواند سلامت وی را تحت تأثیر قرار دهد. از طرفی کروسین ممکن است بتواند از عوارض احتمالی ناشی از آترازین جلوگیری نماید.
هدف: در این مطالعه اثرات آترازین بر بافت بیضه و پارامترهای اسپرم و اثرات محافظتی کروسین مورد مطالعه قرار گرفت.
موارد و روشها: 24 سر موش حامله نژادBalb/c بطور تصادفی به 4 گروه شامل گروه آترازین mg/kg 10، گروه آترازین-کروسین، گروه کروسین mg/kg 10 و گروه نرمال سالین تقسیم شدند. تجویز به صورت روزانه طی دوره بارداری و شیردهی به صورت گاواژ انجام شد. در پایان از هر مادر دو فرزند نر بهطور تصادفی انتخاب و به ترتیب در 23 و 75 روز پس از زایمان بعد از بیهوشی عمیق اپیدیدیم جهت ارزیابی پارامترهای اسپرم و سپس بیضه جهت بررسی تغییرات بافتی برداشته شد. بیضهها پس از آمادهسازی به روش معمول آزمایشگاه بافتشناسی با استفاده از روش تانل رنگآمیزی و با استفاده از تکنیکهای استریولوژی بافت بیضه مطالعه قرار گرفت.
نتایج: تعداد اسپرم در گروه آترازین در مقایسه با سایر گروهها کمتر بود و در گروه آترازین-کروسین در مقایسه با گروه آترازین به طور معنیداری (0/001p=) افزایش داشت. درصد اسپرمهای غیرطبیعی در گروه آترازین نسبت به گروههای نرمال سالین و کروسین افزایش معنیدار و در گروه آترازین-کروسین نسبت به گروه آترازین کاهش معنیداری داشت (0/001p≤). همچنین تعداد اسپرماتوگنیهای تانل مثبت در فرزندان 23 روزه در گروه آترازین نسبت گروهای نرمال سالین و کروسین افزایش معنیداری داشت (0/03p=). سلولهای اسپرماتوژنیک 75 روزه تانل مثبت در گروه آترازین به طور معنیداری نسبت به گروه نرمال سالین افزایش داشت (0/001p≤). ارتفاع اپیتلیوم در گروه آترازین نسبت به گروه کنترل کاهش معنیدار و در گروه کروسین نسبت به گروه نرمال سالین افزایش معنیداری وجود داشت (0/001p≤).
نتیجه گیری: آترازین سبب کاهش تعداد اسپرم و افزایش اسپرم غیرنرمال، افزایش سلولهای آپوپتوتیک و کاهش ارتفاع اپیتلیوم میشود و کروسین عوارض ناشی از آترازین را تا حدودی کاهش میدهد.
هدف: در این مطالعه اثرات آترازین بر بافت بیضه و پارامترهای اسپرم و اثرات محافظتی کروسین مورد مطالعه قرار گرفت.
موارد و روشها: 24 سر موش حامله نژادBalb/c بطور تصادفی به 4 گروه شامل گروه آترازین mg/kg 10، گروه آترازین-کروسین، گروه کروسین mg/kg 10 و گروه نرمال سالین تقسیم شدند. تجویز به صورت روزانه طی دوره بارداری و شیردهی به صورت گاواژ انجام شد. در پایان از هر مادر دو فرزند نر بهطور تصادفی انتخاب و به ترتیب در 23 و 75 روز پس از زایمان بعد از بیهوشی عمیق اپیدیدیم جهت ارزیابی پارامترهای اسپرم و سپس بیضه جهت بررسی تغییرات بافتی برداشته شد. بیضهها پس از آمادهسازی به روش معمول آزمایشگاه بافتشناسی با استفاده از روش تانل رنگآمیزی و با استفاده از تکنیکهای استریولوژی بافت بیضه مطالعه قرار گرفت.
نتایج: تعداد اسپرم در گروه آترازین در مقایسه با سایر گروهها کمتر بود و در گروه آترازین-کروسین در مقایسه با گروه آترازین به طور معنیداری (0/001p=) افزایش داشت. درصد اسپرمهای غیرطبیعی در گروه آترازین نسبت به گروههای نرمال سالین و کروسین افزایش معنیدار و در گروه آترازین-کروسین نسبت به گروه آترازین کاهش معنیداری داشت (0/001p≤). همچنین تعداد اسپرماتوگنیهای تانل مثبت در فرزندان 23 روزه در گروه آترازین نسبت گروهای نرمال سالین و کروسین افزایش معنیداری داشت (0/03p=). سلولهای اسپرماتوژنیک 75 روزه تانل مثبت در گروه آترازین به طور معنیداری نسبت به گروه نرمال سالین افزایش داشت (0/001p≤). ارتفاع اپیتلیوم در گروه آترازین نسبت به گروه کنترل کاهش معنیدار و در گروه کروسین نسبت به گروه نرمال سالین افزایش معنیداری وجود داشت (0/001p≤).
نتیجه گیری: آترازین سبب کاهش تعداد اسپرم و افزایش اسپرم غیرنرمال، افزایش سلولهای آپوپتوتیک و کاهش ارتفاع اپیتلیوم میشود و کروسین عوارض ناشی از آترازین را تا حدودی کاهش میدهد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Pavlovic D, Vrbnicanin S, Bozic D, Fischer AJ. Morphophysiological traits and atrazine sensitivity in Chenopodium album L. Pest Manag Sci 2008; 64: 101-107. [DOI:10.1002/ps.1473]
2. Farombi EO, Abarikwu SO, Adesiyan AC, Oyejola TO. Quercetin exacerbates the effects of subacute treatment of atrazine on reproductive tissue antioxidant defence system, lipid peroxidation and sperm quality in rats. Andrologia 2013; 45: 256-265. [DOI:10.1111/and.12001]
3. Banks KE, Hunter DH, Wachal DJ. Chlorpyrifos in surface waters before and after a federally mandated ban. Environ Int 2005; 31: 351-356. [DOI:10.1016/j.envint.2004.08.007]
4. Gojmerac T, Ostojić Z, Pauković D, Pleadin J, Ţurić M. Evaluation of surface water pollution with atrazine, an endocrine disruptor chemical, in agricultural areas of Turopolje, Croatia. Bull Environ Contam Toxicol 2006; 76: 490-496. [DOI:10.1007/s00128-006-0947-5]
5. McConnell LL, Nelson E, Rice CP, Baker JE, Johnson WE, Harman JA, et al. Chlorpyrifos in the air and surface water of Chesapeake Bay: predictions of atmospheric deposition fluxes. Environ Sci Technol 1997; 31: 1390-1398. [DOI:10.1021/es960614x]
6. Liu W, Du Y, Liu J, Wang H, Sun D, Liang D, et al. Effects of atrazine on the oxidative damage of kidney in Wister rats. Int J Clin Exp Med 2014; 7: 3235-3243.
7. Cooper RL, Stoker TE, Tyrey L, Goldman JM, McElroy WK. Atrazine disrupts the hypothalamic control of pituitary-ovarian function. Toxicol Sci 2000; 53: 297-307. [DOI:10.1093/toxsci/53.2.297]
8. Song Y, Jia ZC, Chen JY, Hu JX, Zhang LS. Toxic effects of atrazine on reproductive system of male rats. Biomed Environ Sci 2014; 27: 281-288.
9. Rosenberg BG, Chen H, Folmer J, Liu J, Papadopoulos V, Zirkin BR. Gestational exposure to atrazine: effects on the postnatal development of male offspring. J Androl 2008; 29: 304-311. [DOI:10.2164/jandrol.107.003020]
10. Kniewald J, Jakominić M, Tomljenović A, Šimić B, Romac P, Vranešić Ð, et al. Disorders of male rat reproductive tract under the influence of atrazine. J Appl Toxicol 2000; 20: 61-68.
https://doi.org/10.1002/(SICI)1099-1263(200001/02)20:1<61::AID-JAT628>3.0.CO;2-3 [DOI:10.1002/(SICI)1099-1263(200001/02)20:13.0.CO;2-3]
11. Trentacoste SV, Friedmann AS, Youker RT, Breckenridge CB, Zirkin BR. Atrazine effects on testosterone levels and androgen‐dependent reproductive organs in peripubertal male rats. J Androl 2001; 22: 142-148.
12. Lin Z, Dodd CA, Xiao S, Krishna S, Ye X, Filipov NM. Gestational and lactational exposure to atrazine via the drinking water causes specific behavioral deficits and selectively alters monoaminergic systems in C57BL/6 mouse dams, juvenile and adult offspring. Toxicol Sci 2014; 141: 90-102. [DOI:10.1093/toxsci/kfu107]
13. Chandak N, Bhardwaj JK, Zheleva-Dimitrova D, Kitanov G, Sharma RK, Sharma PK, et al. Effective attenuation of atrazine-induced histopathological changes in testicular tissue by antioxidant N-phenyl-4-aryl-polyhydroquinolines. J Enzyme Inhib Med Chem 2015; 30: 722-729. [DOI:10.3109/14756366.2014.960864]
14. Jin Y, Zhang X, Shu L, Chen L, Sun L, Qian H, et al. Oxidative stress response and gene expression with atrazine exposure in adult female zebrafish (Danio rerio). Chemosphere 2010; 78: 846-852. [DOI:10.1016/j.chemosphere.2009.11.044]
15. Agarwal A, Saleh RA. Role of oxidants in male infertility: rationale, significance, and treatment. Urol Clin North Am 2002; 29: 817-827. [DOI:10.1016/S0094-0143(02)00081-2]
16. Rahimipour M, Talebi AR, Anvari M, Abbasi Sarcheshmeh A, Omidi M. Saccharin consumption increases sperm DNA fragmentation and apoptosis in mice. Iran J Reprod Med 2014; 12: 307-312.
17. Aung HH, Wang CZ, Ni M, Fishbein A, Mehendale SR, Xie JT, et al. Crocin from Crocus sativus possesses significant anti-proliferation effects on human colorectal cancer cells. Exp Oncol 2007; 29: 175-180.
18. Bolhassani A, Khavari A, Bathaie SZ. Saffron and natural carotenoids: Biochemical activities and anti-tumor effects. Biochim Biophys Acta 2014; 1845: 20-30.
19. Wang Y, Wang Q, Yu W, Du H. Crocin Attenuates Oxidative Stress and Myocardial Infarction Injury in Rats. Int Heart J 2018: 59: 387-393. [DOI:10.1536/ihj.17-114]
20. Al-Snafi AE. The pharmacology of Crocus sativus- A review. IOSR J Pharm 2016; 6: 8-38.
21. Sarshoori JR, Asadi MH, Mohammadi MT. Neuroprotective effects of crocin on the histopathological alterations following brain ischemia-reperfusion injury in rat. Iran J Basic Med Sci 2014; 17: 895-902.
22. Rosenberg BG, Chen H, Folmer J, Liu J, Papadopoulos V, Zirkin BR. Gestational exposure to atrazine: effects on the postnatal development of male offspring. J Androl 2008; 29: 304-311. [DOI:10.2164/jandrol.107.003020]
23. Goyal SN, Arora S, Sharma AK, Joshi S, Ray R, Bhatia J, et al. Preventive effect of crocin of Crocus sativus on hemodynamic, biochemical, histopathological and ultrastuctural alterations in isoproterenol-induced cardiotoxicity in rats. Phytomedicine 2010; 17: 227-232. [DOI:10.1016/j.phymed.2009.08.009]
24. Bakhtiary Z, Shahrooz R, Ahmadi A, Zarei L. Evaluation of antioxidant effects of crocin on sperm quality in cyclophosphamide treated adult mice. Vet Res Forum 2014; 5: 213-218.
25. Khordad E, Fazel A, Ebrahimzadeh Bideskan A. The effect of ascorbic acid and garlic administration on lead-induced apoptosis in rat offspring's eye retina. Iran Biomed J 2013; 17: 206-213.
26. Ataei ML, Ebrahimzadeh-bideskan AR. The effects of nano-silver and garlic administration during pregnancy on neuron apoptosis in rat offspring hippocampus. Iran J Basic Med Sci 2014; 17: 411-418.
27. Bagheri-Abassi F, Alavi H, Mohammadipour A, Motejaded F, Ebrahimzadeh-Bideskan A. The effect of silver nanoparticles on apoptosis and dark neuron production in rat hippocampus. Iran J Basic Med Sci 2015; 18: 644-648.
28. Bandegi AR, Rashidy-Pour A, Vafaei AA, Ghadrdoost B. Protective effects of Crocus sativus L. extract and crocin against chronic-stress induced oxidative damage of brain, liver and kidneys in rats. Adv Pharm Bull 2014; 4 (Suppl.): 493-499.
29. Gely-Pernot A, Hao C, Becker E, Stuparevic I, Kervarrec C, Chalmel F, et al. The epigenetic processes of meiosis in male mice are broadly affected by the widely used herbicide atrazine. BMC Genomics 2015; 16: 885-891. [DOI:10.1186/s12864-015-2095-y]
30. Victor-Costa AB, Bandeira SM, Oliveira AG, Mahecha GA, Oliveira CA. Changes in testicular morphology and steroidogenesis in adult rats exposed to Atrazine. Reprod Toxicol 2010; 29: 323-331. [DOI:10.1016/j.reprotox.2009.12.006]
31. Salahshoor MR, Khazaei M, Jalili C, Keivan M. Crocin improves damage induced by nicotine on a number of reproductive parameters in male mice. Int J Fertil Steril 2016; 10: 71-78.
32. Song Y, Jia ZC, Chen JY, Hu JX, Zhang LS. Toxic effects of atrazine on reproductive system of male rats. Biomed Environ Sci 2014; 27: 281-288.
33. Najafi G, Hobe Naghi R, Hoshyari A, Moghadaszadeh M, Ghorbanzadeh B. The effect of atrazine on spermic parameters and fertility potential in mature rats. Arak Med Uni J 2013; 15: 85-94.
34. Bratton SB, MacFarlane M, Cain K, Cohen GM. Protein complexes activate distinct caspase cascades in death receptor and stress-induced apoptosis. Exp Cell Res 2000; 256: 27-33. [DOI:10.1006/excr.2000.4835]
35. Rayner JL, Wood C, Fenton SE. Exposure parameters necessary for delayed puberty and mammary gland development in Long–Evans rats exposed in utero to atrazine. Toxicol Appl pharmacol 2004; 195: 23-34. [DOI:10.1016/j.taap.2003.11.005]
36. Pogrmic-Majkic K, Kaisarevic S, Fa S, Dakic V, Glisic B, Hrubik J, et al. Atrazine effects on antioxidant status and xenobiotic metabolizing enzymes after oral administration in peripubertal male rat. Environ Toxicol Pharmacol 2012; 34: 495-501. [DOI:10.1016/j.etap.2012.06.004]
37. Nazem H, Modaresi M, Messripour M, Marghmaleki MA, Ebadi AG. Effect of saffron extract on pituitary-testis axis in mice. Asian J Chem 2009; 21: 1616-1618.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
