شنبه 1 دی 1403
[Archive]
دوره 17، شماره 2 - ( 11-1397 )
جلد 17 شماره 2 صفحات 98-89 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Mirzaee S, Bayatpoor M E, Shahyad S, Mohammadi M T, Bahari Z. The protective effects of Crocin on testopathy in fat-fed and streptozotocin-treated diabetic rats: An experimental study. IJRM 2019; 17 (2) :89-98
URL: http://ijrm.ir/article-1-1398-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-1398-fa.html
میرزایی سعید، بیات‌پور محمد احسان، شهیاد شیما، محمدی محمدتقی، بهاری زهرا. اثرات حفاظتی کروسین بر اختلال عملکرد بیضه در دیابت ناشی از استرپتوزوتوسین و رژیم پرچرب در موش صحرایی، یک مطالعه تجربی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1397; 17 (2) :89-98
سعید میرزایی1 
، محمد احسان بیات‌پور1 ، شیما شهیاد2 ، محمدتقی محمدی* 3، زهرا بهاری4
، محمد احسان بیات‌پور1 ، شیما شهیاد2 ، محمدتقی محمدی* 3، زهرا بهاری4
1- کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران
2- مرکز تحقیقات علوم اعصاب، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران
3- گروه فیزیولوژی و فیزیک پزشکی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران ،mohammadi.mohammadt@ yahoo.com
4- گروه فیزیولوژی و فیزیک پزشکی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران
2- مرکز تحقیقات علوم اعصاب، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران
3- گروه فیزیولوژی و فیزیک پزشکی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران ،
4- گروه فیزیولوژی و فیزیک پزشکی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران
چکیده: (2904 مشاهده)
مقدمه: دیابت نوع 2 به دلیل اختلال در عملکرد بیضهها سبب هیپوگنادیسم میشود. جهت درمان دیابت و عوارض ناشی از آن به گیاهان دارویی توجه ویژه ای می شود.
هدف: هدف از مطالعه حاضر بررسی اثر کروسین بر اختلال عملکرد بیضه ناشی از دیابت القا شده با تزریق دوز کم استرپتوزوتوسین و رژیم پرچرب می باشد.
موارد و روش ها: در مطالعه حاضر، دیابت قندی نوع 2 از طریق تزریق دوز کم استرپتوزوتوسین و رژیم پرچرب القا شد. موش های صحرایی نر و نژاد ویستار به گروههای کنترل (رژیم غذایی استاندارد)، دیابتی (استرپتوزوتوسین و رژیم پرچرب) و تریتمنت (استرپتوزوتوسین، رژیم پرچرب و کروسین در دوز 20 میلیگرم/ کیلوگرم/ روز برای 60 روز، تزریق داخل صفاقی) تقسیم شدند. بعد از گذشت 60 روز، حیوانات بیهوش شده و بیضه ها و اپیدیدیم استخراج و وزن بیضه ها و تعداد اسپرم آنالیز شد. به منظور مطالعات هیستوپاتولوژی، رنگ آمیزی هماتوکسیلین و ائوزین انجام شد. نمونه های خونی جهت اندازه گیری غلظت خونی گلوکز و کلسترول اندازه گیری شد.
نتایج: تجویز دوز کم استرپتوزوتوسین و رژیم پرچرب سبب افزایش معنی دار سطوح سرمی گلوکز و کلسترول، در مقایسه با گروه کنترل شد. علاوه بر این، در مقایسه با گروه کنترل، وزن بیضه ها (راست و چپ) و تعداد توتال اسپرم در گروه دیابتی به طورمعنی داری کمتر بود. همچنین، نتایج حاضر نشان داد که دیابت قندی نوع 2 سبب دژنراسیون توبول های سمینفر شد. تجویز کروسین توانست به طور معنی‌داری سبب کاهش سطوح سرمی گلوکز و کلسترول شود. علاوه بر این، تجویز کروسین توانست به طور معنی داری سبب افزایش وزن بیضهها و تعداد توتال اسپرم در گروه دیابتی شود. همچنین، تجویز کروسین توانست به طور معنی داری سبب تضعیف تغییرات پاتولوژی در بیضه ها در گروه تریتمنت شود.
نتیجه گیری: می توان از یافته های حاضر این نتیجه را گرفت که درمان با کروسین سبب بهبود اختلال عملکرد بیضه و تغییرات توبولهای سمینفر در دیابت القا شده با استرپتوزوتوسین و رژیم پرچرب می شود.
هدف: هدف از مطالعه حاضر بررسی اثر کروسین بر اختلال عملکرد بیضه ناشی از دیابت القا شده با تزریق دوز کم استرپتوزوتوسین و رژیم پرچرب می باشد.
موارد و روش ها: در مطالعه حاضر، دیابت قندی نوع 2 از طریق تزریق دوز کم استرپتوزوتوسین و رژیم پرچرب القا شد. موش های صحرایی نر و نژاد ویستار به گروههای کنترل (رژیم غذایی استاندارد)، دیابتی (استرپتوزوتوسین و رژیم پرچرب) و تریتمنت (استرپتوزوتوسین، رژیم پرچرب و کروسین در دوز 20 میلیگرم/ کیلوگرم/ روز برای 60 روز، تزریق داخل صفاقی) تقسیم شدند. بعد از گذشت 60 روز، حیوانات بیهوش شده و بیضه ها و اپیدیدیم استخراج و وزن بیضه ها و تعداد اسپرم آنالیز شد. به منظور مطالعات هیستوپاتولوژی، رنگ آمیزی هماتوکسیلین و ائوزین انجام شد. نمونه های خونی جهت اندازه گیری غلظت خونی گلوکز و کلسترول اندازه گیری شد.
نتایج: تجویز دوز کم استرپتوزوتوسین و رژیم پرچرب سبب افزایش معنی دار سطوح سرمی گلوکز و کلسترول، در مقایسه با گروه کنترل شد. علاوه بر این، در مقایسه با گروه کنترل، وزن بیضه ها (راست و چپ) و تعداد توتال اسپرم در گروه دیابتی به طورمعنی داری کمتر بود. همچنین، نتایج حاضر نشان داد که دیابت قندی نوع 2 سبب دژنراسیون توبول های سمینفر شد. تجویز کروسین توانست به طور معنی‌داری سبب کاهش سطوح سرمی گلوکز و کلسترول شود. علاوه بر این، تجویز کروسین توانست به طور معنی داری سبب افزایش وزن بیضهها و تعداد توتال اسپرم در گروه دیابتی شود. همچنین، تجویز کروسین توانست به طور معنی داری سبب تضعیف تغییرات پاتولوژی در بیضه ها در گروه تریتمنت شود.
نتیجه گیری: می توان از یافته های حاضر این نتیجه را گرفت که درمان با کروسین سبب بهبود اختلال عملکرد بیضه و تغییرات توبولهای سمینفر در دیابت القا شده با استرپتوزوتوسین و رژیم پرچرب می شود.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. 1] Akinnuga AM, Olubayode B, Ebunlomo OAB, Adeniyi O, Adeleyea GS, Ebomuche LC. Hypoglycaemic effects of dietary intake of ripe and unripe lycopersicon esculentum (tomatoes) on streptozotocin-induced diabetes mellitus in rats. Online J Biol Sci 2010; 10: 50–53. [DOI:10.3844/ojbsci.2010.50.53]
2. [2] Khaneshi F, Nasrolahi O, Azizi S, Nejati V. Sesame effects on testicular damage in streptozotocin-induced diabetes rats. Avicenna J Phytomed 2013; 3: 347–355.
3. [3] Long L, Wang J, Lu X, Xu Y, Zheng S, Luo C, Li Y. Protective effects of scutellarin on type II diabetes mellitusinduced testicular damages related to reactive oxygen species/Bcl-2/Bax and reactive oxygen species/microcirculation/staving pathway in diabetic rat. J Diabetes Res 2015; 2015: 252530–252542. [DOI:10.1155/2015/252530]
4. [4] Ding GL, Liu Y, Liu ME, Pan JX, Guo MX, Sheng JZ, et al. The effects of diabetes on male fertility and epigenetic regulation during spermatogenesis. Asian J Androl 2015; 17: 948–953. [DOI:10.4103/1008-682X.150844]
5. [5] Kanter M, Aktas C, Erboga M. Protective effects of quercetin against apoptosis and oxidative stress in streptozotocin-induced diabetic rat testis. Food Chem Toxicol 2012; 50: 719–725. [DOI:10.1016/j.fct.2011.11.051]
6. [6] Ghanbari E, Nejati V, Najafi G, Khazaei M, Babaei M. Study on the effect of Royal Jelly on reproductive parameters in Streptozotocin-Induced Diabetic Rats. Int J Fertil Steril 2015; 9: 113–120.
7. [7] Baynes JW Thorpe SR. Role of oxidative stress in diabetic complications: a new perspective on an old paradigm. Diabetes 1999; 48: 1–9. [DOI:10.2337/diabetes.48.1.1]
8. [8] Niedowicz DM, Daleke DL. The role of oxidative stress in diabetic complications. Cell Biochem Biophys 2005; 43: 289–330. [DOI:10.1385/CBB:43:2:289]
9. [9] Patel DK, Kumar R, Prasad SK, Sairam K, Hemalatha S. Antidiabetic and in vitro antioxidant potential of Hybanthus enneaspermus (Linn) F. Muell in streptozotocin-induced diabetic rats. Asian Pac J Trop Biomed 2011; 1: 316–322. [DOI:10.1016/S2221-1691(11)60051-8]
10. [10] Patel DK, Kumar R, Laloo D, Hemalatha S. Diabetes mellitus: an overview on its pharmacological aspects and reported medicinal plants having antidiabetic activity. Asian Pac J Trop Biomed 2012; 2: 411–420. [DOI:10.1016/S2221-1691(12)60067-7]
11. [11] Pham TQ, Cormier F, Farnworth E, Tong VH, Van Calsteren MR. Antioxidant properties of crocin from gardenia jasminoides Ellis and study of the reactions of crocin with linoleic acid and crocin with oxygen. J Agric Food Chem 2000; 48: 1455–1461. [DOI:10.1021/jf991263j]
12. [12] Lee IA, Lee JH, Baek NI, Kim DH. Antihyperlipidemic effect of crocin isolated from the fructus of Gardenia jasminoides and its metabolite Crocetin. Biol Pharm Bull 2005; 28(11): 2106–10. [DOI:10.1248/bpb.28.2106]
13. [13] Poma A, Fontecchio G, Carlucci G, Chichiricco G. Antiinflammatory properties of drugs from saffron crocus. Antiinflamm Antiallergy Agents Med Chem 2012; 11: 37–51. [DOI:10.2174/187152312803476282]
14. [14] Hosseinzadeh H, Younesi HM. Antinociceptive and antiinflammatory effects of Crocus sativus L. stigma and petal extracts in mice. BMC Pharmacol 2002; 2: 7–14. [DOI:10.1186/1471-2210-2-7]
15. [15] Amin B, Hosseinzadeh H. Evaluation of aqueous and ethanolic extracts of saffron, Crocus sativus L., and its constituents, safranal and crocin in allodynia and hyperalgesia induced by chronic constriction injury model of neuropathic pain in rats. Fitoterapia 2012; 83: 888–895. [DOI:10.1016/j.fitote.2012.03.022]
16. [16] Chen L, Qi Y, Yang X. Neuroprotective effects of crocin against oxidative stress induced by ischemia/reperfusion injury in rat retina. Ophthalmic Res 2015; 54: 157–168. [DOI:10.1159/000439026]
17. [17] Ghodrat M, Sahraei H, Razjouyan J, Meftahi GH. Effects of a Saffron alcoholic extract on visual short-term memory in humans: a psychophysical study. Neurophysiology 2014; 46: 247–253. [DOI:10.1007/s11062-014-9436-3]
18. [18] Hadipour M, Kaka G, Bahrami F, Meftahi GH, Pirzad Jahromi G, Mohammadi A, et al. Crocin improved amyloid beta induced long-term potentiation and memory deficits in the hippocampal CA1 neurons in freely moving rats. Synapse 2018; 72: e22026–22041. [DOI:10.1002/syn.22026]
19. [19] Mokhtari Hashtjini M, Pirzad Jahromi G, Meftahi GH, Esmaeili D, Javidnazar D. Aqueous extract of saffron administration along with amygdala deepbrain stimulation promoted alleviation of symptoms in post-traumatic stress disorder (PTSD) in rats. Avicenna J Phytomed 2018; 8: 358–369.
20. [20] King AJ. The use of animal models in diabetes research. Br J Pharmacol 2012; 166: 877–894. [DOI:10.1111/j.1476-5381.2012.01911.x]
21. [21] Skovso S. Modeling type 2 diabetes in rats using high fat diet and streptozotocin. J Diabetes Investig 2014; 5: 349–358. [DOI:10.1111/jdi.12235]
22. [22] Dogukan A, Sahin N, Tuzcu M, Juturu V, Orhan C, Onderci M, et al. The effects of chromium histidinate on mineral status of serum and tissue in fat-fed and streptozotocintreated type II diabetic rats. Biol Trace Elem Res 2009; 131:124–132. [DOI:10.1007/s12011-009-8351-8]
23. [23] Suman RK, Ray Mohanty I, Borde MK, Maheshwari U, Deshmukh YA. Development of an experimental model of diabetes Co-Existing with metabolic syndrome in rats. Adv Pharmacol Sci 2016: 2016: 9463476–9463486.
24. [24] Skovso S. Modeling type 2 diabetes in rats using high fat diet and streptozotocin. J Diabetes Investig 2014; 5: 349–358. [DOI:10.1111/jdi.12235]
25. [25] Gheibi S, Kashfi K, Ghasemi A. A practical guide for induction of type-2 diabetes in rat: Incorporating a high-fat diet and streptozotocin. Biomed Pharmacother 2017; 95:605–613. [DOI:10.1016/j.biopha.2017.08.098]
26. [26] Farshid AA, Tamaddonfard E, Moradi-Arzeloo M, Mirzakhani N. The effects of crocin, insulin and their coadministration on the heart function and pathology in streptozotocin-induced diabetic rats. Avicenna J Phytomed 2016; 6: 658–670.
27. [27] Zhang M, Lv XY, Li J, Xu ZG, Chen L. The characterization of high-fat diet and multiple low-dose streptozotocin induced type 2 diabetes rat model. Exp Diabetes Res 2008; 2008: 704045–704054. [DOI:10.1155/2008/704045]
28. [28] Kalsoom MI, Jafari SA. Effect of punica granatum flowers extract on hypercholesterolemic and alloxan induced diabetic rats. Glob J Biotecnol Biochem 2011; 6: 83–86.
29. [29] Zlatkis A, Zak B, Boyle AJ. A new method for the direct determination of serum cholesterol. J Lab Clin Med 1993; 41:486–492.
30. [30] Pomjunya A, Ratthanophart J, Fungfuang W. Effects of vernonia cinerea on reproductive performance in streptozotocin-induced diabetic rats. J Vet Med Sci 2017; 79: 572–578. [DOI:10.1292/jvms.16-0466]
31. [31] Ghanbari E, Nejati V, Khazaei M. Antioxidant and protective effects of Royal jelly on histopathological changes in testis of diabetic rats. Int J Reprod Biomed (Yazd) 2016; 14: 519–526. [DOI:10.29252/ijrm.14.8.519]
32. [32] Gupta S, Kataria M, Gupta PK, Murganandan S, Yashroy RC. Protective role of extracts of neem seeds in diabetes caused by streptozotocin in rats. J Ethnopharmacol 2004;90: 185–189. [DOI:10.1016/j.jep.2003.09.024]
33. [33] Shirali S, Bathaie SZ, Nakhjavani M. Effect of crocin on the insulin resistance and lipid profile of streptozotocininduced diabetic rats. Phytother Res 2013; 27: 1042–1047. [DOI:10.1002/ptr.4836]
34. [34] Sheng L, Qian Z, Zheng S, Xi L. Mechanism of hypolipidemic effect of crocin in rats: crocin inhibits pancreatic lipase. Eur J Pharmacol 2006; 543: 116–122. [DOI:10.1016/j.ejphar.2006.05.038]
35. [35] Glueck CJ, Ford S Jr, Scheel D, Steiner P. Colestipol and cholestyramine resins: comparative effects in familial type II hyperlipoproteinemia. JAMA 1972; 222: 676–681. [DOI:10.1001/jama.1972.03210060032007]
36. [36] Shrilatha B, Muralidhara. Early oxidative stress in testis and epididymal sperm in streptozotocin-induced diabetic mice: Its progression and genotoxic consequences. Reprod Toxicol 2007; 23: 578–587. [DOI:10.1016/j.reprotox.2007.02.001]
37. [37] Ricci G, Catizone A, Esposito R, Pisanti FA, Vietri MT, Galdieri M. Diabetic rat testes: morphological and functional alterations. Andrologia 2009; 41: 361–368. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2009.00937.x]
38. [38] Skinner MK, Norton JN, Mullaney BP, Rosselli M, Whaley PD, Anthony CT. Cell-cell interactions and the regulation of testis function. Ann NY Acad Sci 1991; 637: 354–363. [DOI:10.1111/j.1749-6632.1991.tb27322.x]
39. [39] Slegtenhorst-Eegdeman KE, de Rooij DG, Verhoef-Post M, van de Kant HJ, Bakker CE, Oostra BA, et al.Macroorchidism in FMR1 knockout mice is caused by increased sertoli cell proliferation during testicular development. Endocrinology 1998; 139: 156–162. [DOI:10.1210/endo.139.1.5706]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
