سه شنبه 4 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 9، شماره 2 - ( 4-1390 )
جلد 9 شماره 2 صفحات 130-125 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Talaei-khozani T, Borzoei Z, Bahmanpour S, Zolghadr J, Dehbashi S, Zareh H R. Effects of sera taken from women with recurrent spontaneous abortion on sperm motility and apoptosis. IJRM 2011; 9 (2) :125-130
URL: http://ijrm.ir/article-1-214-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-214-fa.html
طلایی خوزانی طاهره، برزویی زهرا، بهمن پور صغرا، ذوالقدر ژاله، دهباشی صدیقه، زارع حمید رضا. اثر سرم بیمارانی با سابقه سقط خودبخود مکرر بر روی مرگ برنامه دار و تحرک اسپرم. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1390; 9 (2) :125-130
طاهره طلایی خوزانی* 
1، زهرا برزویی2 ، صغرا بهمن پور2 ، ژاله ذوالقدر3 ، صدیقه دهباشی3 ، حمید رضا زارع4
1، زهرا برزویی2 ، صغرا بهمن پور2 ، ژاله ذوالقدر3 ، صدیقه دهباشی3 ، حمید رضا زارع4
1- گروه علوم تشریحی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران ، talaeit@sums.ac.ir
2- گروه علوم تشریحی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
3- گروه زنان و زایمان، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
4- گروه ایمونولوژی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
2- گروه علوم تشریحی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
3- گروه زنان و زایمان، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
4- گروه ایمونولوژی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
چکیده: (2580 مشاهده)
مقدمه: سقطهای خودبخود مکرر در 10% از زوجها مشاهده می شود. اثرات سمی سرم بر روی جنینهای که در محیط رحم زنهای با سابقه سقط خودبخود رشد می کنند، نشان داده شده است. بنابراین شرایط غیر طبیعی محیط رحم ممکن است بر کیفیت اسپرم اثر گذارد.
هدف: هدف از این تحقیق بررسی این موضوع می باشد که آیا سرم بیماران با سابقه سقط خود بخود مکرر می تواند بر روی کیفیت DNA در هسته اسپرم و میزان تحرک آن تأثیرگذار باشد؟
مواد و روش ها: سرم 20 زن با سابقه سقط مکرر و 20 زن سالم با حداقل دو بچه به نمونه اسپرم گرفته شده از 20 مرد سالم به مدت 2 ساعت اضافه گردید. پس از اضافه نمودن سرمها، تحرک نمونه اسپرمها ارزیابی شد. جهت بررسی میزان قطعه قطعه شدن DNA، نمونه ها با کمک روش TUNEL رنگ آمیزی شدند. نمونه ها باکمک فلوسیتومتری ارزیابی و درصد سلولهای واکنش دهنده با تست TUNEL محاسبه گردید. آنالیز داده ها با کمک T-test انجام شد.
نتایج: در معرض قرار گرفتن نمونههای اسپرم با سرم بیمارانی با سابقه سقط خودبخود باعث کاهش معنی دار درصد اسپرم های متحرک از 55% در گروه کنترل به 41% در گروه آزمایش شد (0/038p=). گرچه درصد سلول هایی با DNA قطعه قطعه شده در گروهی که در معرض سرم بیماران با سابقه سقط قرار داشتند (26/6 % ) نسبت به گروه کنترل (21/2 %) افزایش نشان داد، اما این افزایش معنی دار نبود.
نتیجه گیری: به نظر میرسد که سرم بیمارانی با سابقه سقط خود بخود نمی تواند باعث افزایش درصد اسپرمهایی با DNA قطعه قطعه شده شود، هر چند سرم این بیماران می تواند با کاهش معنیدار تحرک اسپرم ها باعث کاهش باروری در این بیماران گردد.
هدف: هدف از این تحقیق بررسی این موضوع می باشد که آیا سرم بیماران با سابقه سقط خود بخود مکرر می تواند بر روی کیفیت DNA در هسته اسپرم و میزان تحرک آن تأثیرگذار باشد؟
مواد و روش ها: سرم 20 زن با سابقه سقط مکرر و 20 زن سالم با حداقل دو بچه به نمونه اسپرم گرفته شده از 20 مرد سالم به مدت 2 ساعت اضافه گردید. پس از اضافه نمودن سرمها، تحرک نمونه اسپرمها ارزیابی شد. جهت بررسی میزان قطعه قطعه شدن DNA، نمونه ها با کمک روش TUNEL رنگ آمیزی شدند. نمونه ها باکمک فلوسیتومتری ارزیابی و درصد سلولهای واکنش دهنده با تست TUNEL محاسبه گردید. آنالیز داده ها با کمک T-test انجام شد.
نتایج: در معرض قرار گرفتن نمونههای اسپرم با سرم بیمارانی با سابقه سقط خودبخود باعث کاهش معنی دار درصد اسپرم های متحرک از 55% در گروه کنترل به 41% در گروه آزمایش شد (0/038p=). گرچه درصد سلول هایی با DNA قطعه قطعه شده در گروهی که در معرض سرم بیماران با سابقه سقط قرار داشتند (26/6 % ) نسبت به گروه کنترل (21/2 %) افزایش نشان داد، اما این افزایش معنی دار نبود.
نتیجه گیری: به نظر میرسد که سرم بیمارانی با سابقه سقط خود بخود نمی تواند باعث افزایش درصد اسپرمهایی با DNA قطعه قطعه شده شود، هر چند سرم این بیماران می تواند با کاهش معنیدار تحرک اسپرم ها باعث کاهش باروری در این بیماران گردد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Stirrat GM. Recurrent pregnancy loss I: definition and epidemiology. Lancet 1990; 336: 673-675. [DOI:10.1016/0140-6736(90)92159-F]
2. Coulam CB. Epidemiology of recurrent spontaneous abortion. Am J Reprod Immunol 1991; 26: 23-27. [DOI:10.1111/j.1600-0897.1991.tb00697.x]
3. Saxena P, Misro MM, Roy S, Chopra K, Sinha D, Nandan D, et al. Possible role of male factors in recurrent pregnancy loss. Indian J Physiol Pharmacol 2008; 52: 274-282.
4. Saxena P, Misro MM, Chaki SP, Chopra K, Roy S, Nandan D. Is abnormal sperm function an indicator among couples with recurrent pregnancy loss? Fertil Steril 2008; 90: 1854-1858. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.09.031]
5. Gopalkrishnan K, Padwal V, Meherji PK, Gokral JS, Shah R, Juneja HS. Poor quality of sperm as it affects repeated early pregnancy loss. Arch Androl 2000; 45: 111-117. [DOI:10.1080/014850100418800]
6. Zorn B, Virant-Klun I, Drobni S, Sinkovec J, Meden-Vrtovec H. Male and female factors that influence ICSI outcome in azoospermia or aspermia. Reprd Biomed online 2009; 18: 168-176. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60252-0]
7. Zini A, Boman JM, Belzile E, Ciampi A. Sperm DNA damage is associated with an increased risk of pregnancy loss after IVF and ICSI: systematic review and meta-analysis. Hum Reprod 2008; 23: 2663-2668. [DOI:10.1093/humrep/den321]
8. Gandini L, Lombardo F, Paoli D, Caruso F, Eleuteri P, Leter G, et al. Full-term pregnancies achieved with ICSI despite high levels of sperm chromatin damage. Hum Reprod 2004; 19: 1409-1417. [DOI:10.1093/humrep/deh233]
9. Bungum M, Humaidan P, Spano M, Jepson K, Bungum L, Giwercman A. The predictive value of sperm chromatin structure assay (SCSA) parameters for the outcome of intrauterine insemination, IVF and ICSI. Hum Reprod 2004; 19: 1401-1408. [DOI:10.1093/humrep/deh280]
10. Fernandez-Gonzalez R, Moreira PN, Perez-Crespo M, Sanchez-Martin M, Ramirez MA, Pericuesta E, et al: Long-term effects of mouse intracytoplasmic sperm injection with DNA-fragmented sperm on health and behavior of adult offspring. Biol Reprod 2008; 78: 761-772. [DOI:10.1095/biolreprod.107.065623]
11. Perez-Crespo M, Moreira P, Pintado B, Gutierrez-Adan A. Factors from damaged sperm affect its DNA integrity and its ability to promote embryo implantation in mice. J Androl 2008; 29: 47-54. [DOI:10.2164/jandrol.107.003194]
12. Ming-Huei Lin, Robert Kuo-Kuang Lee, Sheng-Hsiang Li, Chung-Hao Lu, Fang-Ju Sun, Yuh-Ming Hwu. Sperm chromatin structure assay parameters are not related to fertilization rates, embryo quality, and pregnancy rates in in vitro fertilization and intracytoplasmic sperm injection, but might be related to spontaneous abortion rates. Fertil Steril 2008; 90: 352-359. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.06.018]
13. Abir R, Zusman I, Ben Hur H, Yaffe P, Ornoy A. The effects of serum from women with miscarriages on the in vitro development of mouse preimplantation embryos. Acta Obstet Gynecol Scand 1990; 69: 27-33. [DOI:10.3109/00016349009021035]
14. Talaei-Khozani T, Aminizadeh N, Aliabadi E, Mesbah SF, Zolghadr J. lectin reactivity of expanded mouse blastocysts after exposure to sera from women with unexplained recuurent spontaneous abortion. Rep Toxicol. 2005; 20: 531-537. [DOI:10.1016/j.reprotox.2005.04.015]
15. Al-Hussein K, Al-Mukhalafi Z, Bertilsson PA, Jaroudi K, Shoukri M, Hollander j. Value of flow cytometric assay for the detection of antisperm antibodies in women with a history of recurrent abortion. Am J Reprod Immunol 2002; 47: 31-37. [DOI:10.1034/j.1600-0897.2002.1o013.x]
16. Clarke GN. Etiology of sperm immunity in women. Fertil Steril 2009: 91: 639-643. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.11.045]
17. Haller K, Sikut A, Karro H, Uibo R, Salumets A. Circulating anti-follicle-stimulating hormone immunoglobulin A in women: a sperm-prone reaction of mucosal tolerance? Fertil Steril 2008; 90: 1253-1255. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.08.073]
18. Carreau S, Delalande C, Galeraud-Denis I. Mammalian sperm quality and aromatase expression. Microsc Res Tech 2009; 72: 552-557. [DOI:10.1002/jemt.20703]
19. Walczak-Jedrzejowska R, Slowikowska-Hilczer J, Marchlewsk K, Oszukowska E, Kula K. During seminiferous tubule maturation testosterone and synergistic action of FSH with estradiol support germ cell survival while estradiol alone has pro-apoptotic effect. Folia Histochem Cytobiol 2007; 45: 59-64.
20. World Health Organization. Laboratory manual for the examination of human semen and sperm-cervical mucus interaction. 4th Ed. Cambridge University Press; Cambridge; 1991.
21. Getpook C, Wirotkarun S. Sperm motility stimulation and preservation with various concentrations of follicular fluid. J Assist Reprod Genet 2007; 24: 425-428. [DOI:10.1007/s10815-007-9145-6]
22. Cerkiene Z, Eidukaite A, Usoniene A. Follicular fluid levels of interleukin-10 and interferon-gamma do not predict outcome of assisted reproductive technologies. Am J Reprod Immunol 2008; 59: 118-126. [DOI:10.1111/j.1600-0897.2007.00552.x]
23. Lampiao F, du Plessis SS. TNF-alpha and IL-6 affect human sperm function by elevating nitric oxide production. Reprod Biomed Online 2008; 17: 628-631. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60309-4]
24. Gupta S, Agarwal A, Banerjee J, Alvarez JG. The role of oxidative stress in spontaneous abortion and recurrent pregnancy loss: A systematic review. Obstet Gynecol Surv 2007; 62: 335-347. [DOI:10.1097/01.ogx.0000261644.89300.df]
25. Kao SH, Chao HT, Chen HW, Hwang TI, Liao TL, Wei YH. Increase of oxidative stress in human sperm with lower motility. Fertil Steril 2008; 89: 1183-1190. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.05.029]
26. Allam JP , Fronhoffs F, Fathy A, Novak N, Oltermann I, Bieber T, et al. High percentage of apoptotic spermatozoa in ejaculates from men with chronic genital tract inflammation. Inter J Andrologica 2008; 40: 329-334. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2008.00864.x]
27. Moskovtsev SI, Willis J, White J, Mullen JB. Sperm DNA damage: correlation to severity of semen abnormalities. Urology 2009; 74: 789-793. [DOI:10.1016/j.urology.2009.05.043]
28. Toy H, Camuzcuoglu H, Celik H, Erel O, Aksoy N. Assessment of serum paraoxonase and arylesterase activities in early pregnancy failure. Swiss Med Wkly 2009; 139: 76-81.
29. Aitken RJ, Koppers AJ. Apoptosis and DNA damage in human spermatozoa. Asian J Androl. 2010; 30: 36-42.
30. Gandini L, Lombardo F, Paoli D, Caponecchia L, Familiari G, Verlengia C, et al. study of apoptotic DNA fragmentation in human spermatozoa. Hum Repord 2000; 15: 830-839. [DOI:10.1093/humrep/15.4.830]
31. Oosterhuis GJE, Vermes I. apoptosis in human ejaculated spermatozoa. J Biol Regul Homeost 2004; 18: 115-119.
32. Shen HM, Dai J, Chia SE, Lim A, Ong CN. Detection of apoptotic alterations in sperm in subfertile patients and their correlation with sperm quality. Hum Reprod 2002; 17: 1266-1273. [DOI:10.1093/humrep/17.5.1266]
33. Coulam CB. Association between infertility and spontaneous abortion. Am J Reprod Immunol 1992; 27: 128-129. [DOI:10.1111/j.1600-0897.1992.tb00739.x]
34. Ferrari DA, Gilles PA, Klein NW, Nadler D, Weeks BS, Lammi-Keefe CJ, Hillman RE, et al. Rat embryo development on human sera is related to numbers of previous spontaneous abortions and nutritional factors. Am J Obstet Gynecol 1994; 170: 228-236. [DOI:10.1016/S0002-9378(94)70412-0]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
