یکشنبه 15 تیر 1404
[Archive]
دوره 9، شماره 3 - ( 4-1390 )
جلد 9 شماره 3 صفحات 216-209 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Nazari S, Khalili M A, Esmaielzadeh F, Mohsenzadeh M. Maturation capacity, morphology and morphometric assessment of human immature oocytes after vitrification and in-vitro maturation. IJRM 2011; 9 (3) :209-216
URL: http://ijrm.ir/article-1-229-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-229-fa.html
نظری سعیده، خلیلی محمدعلی، اسماعیل زاده فروزان، محسن زاده مهدی. ارزیابی مرفومتری، مرفولوژی و میزان بلوغ تخمک های نارس انسانی بعد از انجام انجماد و بلوغ آزمایشگاهی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1390; 9 (3) :209-216
سعیده نظری*1 
، محمدعلی خلیلی1 ، فروزان اسماعیل زاده2 ، مهدی محسن زاده3
، محمدعلی خلیلی1 ، فروزان اسماعیل زاده2 ، مهدی محسن زاده3
1- مرکز تحقیقاتی و درمانی ناباروری، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
2- دانشگاه آزاد اسلامی، واحد مرودشت، گروه علوم دامی، مرودشت، ایران
3- دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
2- دانشگاه آزاد اسلامی، واحد مرودشت، گروه علوم دامی، مرودشت، ایران
3- دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
چکیده: (3497 مشاهده)
مقدمه: در سیکل های تکنولوژی کمک باروری 15% تخمک های جمع آوری شده نابالغ هستند (11% ژرمینال وزیکول، 4% متافاز1). امکان انجماد این تخمک ها جهت استفاده بیشتر در برنامه IVMوجود دارد.
هدف: هدف از این بررسی تعیین میزان بلوغ، پارامترهای مرفومتری و مرفولوژی تخمک های نارس انسانی در دو گروه fresh IVM (fIVM) و vitrified-IVM (vIVM) بود.
مواد و روشها: در این بررسی 93 زن که تحریک کنترل شده تخمدانی جهت ART برای آنها انجام شده بود، شرکت کردند. از این زنان تعداد 203 تخمک نابالغ به دست آمد که به دو گروه تقسیم شدند: (1) تخمک های نابالغ (101=N) که به طور مستقیم در محیط آزمایشگاه IVM شدند و (2) تخمک های نابالغ (102=N) که در ابتدا منجمد، سپس در آزمایشگاه بالغ شدند. تمام تخمک ها متحمل IVM در HAMʼs F10 مکمل شده با LH و FSH و مایع فولیکولی انسانی شدند. بعد از 48 ساعت از کشت، نسبت بلوغ تخمک ها بعلاوه ارزیابی مرفومتری و مرفولوژی سیتوپلاسمی با استفاده از برنامه Cornus انجام گرفت.
نتایج: نسبت بلوغ تخمک ها در vIVM در مقایسه باfIVM کاهش یافت (40/4% در مقایسه 59/4%، 0/001>p). در ارزیابی های مورفومتریک بعدی تفاوت معنی داری در میانگین قطر تخمک (µm) بین vIVM و fIVM مشاهده نگردید (به ترتیب 6/8± 156/3 و 9/9±154/07). دیگر پارامترها از جمله محیط و مساحت تخم بعلاوه حجم تخمک و اووپلاسم در دو گروه مشابه بودند. همچنین ناهنجاری های مرفولوژی بیشتری نظیر واکوئل و تخمک تیره در تخمک های vIVM دیده شد.
نتیجه گیری:گروه fIVM از نظر میزان بلوغ نسبت به vIVM موفق تر بودند. هیچ اختلاف آماری قابل توجهی در دو گروه مشاهده نگردید. لذا پیش بینی می شود که پارامترهای مرفومتری نتوانند به عنوان یک فاکتور پیشگویی کننده در سرانجام بلوغ تخمک در برنامه IVM بکار برده شوند.
هدف: هدف از این بررسی تعیین میزان بلوغ، پارامترهای مرفومتری و مرفولوژی تخمک های نارس انسانی در دو گروه fresh IVM (fIVM) و vitrified-IVM (vIVM) بود.
مواد و روشها: در این بررسی 93 زن که تحریک کنترل شده تخمدانی جهت ART برای آنها انجام شده بود، شرکت کردند. از این زنان تعداد 203 تخمک نابالغ به دست آمد که به دو گروه تقسیم شدند: (1) تخمک های نابالغ (101=N) که به طور مستقیم در محیط آزمایشگاه IVM شدند و (2) تخمک های نابالغ (102=N) که در ابتدا منجمد، سپس در آزمایشگاه بالغ شدند. تمام تخمک ها متحمل IVM در HAMʼs F10 مکمل شده با LH و FSH و مایع فولیکولی انسانی شدند. بعد از 48 ساعت از کشت، نسبت بلوغ تخمک ها بعلاوه ارزیابی مرفومتری و مرفولوژی سیتوپلاسمی با استفاده از برنامه Cornus انجام گرفت.
نتایج: نسبت بلوغ تخمک ها در vIVM در مقایسه باfIVM کاهش یافت (40/4% در مقایسه 59/4%، 0/001>p). در ارزیابی های مورفومتریک بعدی تفاوت معنی داری در میانگین قطر تخمک (µm) بین vIVM و fIVM مشاهده نگردید (به ترتیب 6/8± 156/3 و 9/9±154/07). دیگر پارامترها از جمله محیط و مساحت تخم بعلاوه حجم تخمک و اووپلاسم در دو گروه مشابه بودند. همچنین ناهنجاری های مرفولوژی بیشتری نظیر واکوئل و تخمک تیره در تخمک های vIVM دیده شد.
نتیجه گیری:گروه fIVM از نظر میزان بلوغ نسبت به vIVM موفق تر بودند. هیچ اختلاف آماری قابل توجهی در دو گروه مشاهده نگردید. لذا پیش بینی می شود که پارامترهای مرفومتری نتوانند به عنوان یک فاکتور پیشگویی کننده در سرانجام بلوغ تخمک در برنامه IVM بکار برده شوند.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Ben-Ami I, Komsky A, Bern O, kasterstein E, Komarovsky D, Ron-El R. In vitro maturation of human germinal vesicle-stage oocytes: role of epidermal growth factor-like growth factors in the culture medium. Hum Reprod 2011; 26: 76-78. [DOI:10.1093/humrep/deq290]
2. Liu S, Jing JJ, Feng HL, Ma SY, Li M, Li Y. Evaluation of the immature human oocytes from unstimulated cycles in polycystic ovary syndrome patients using a novel scoring system. Fertil Steril 2010; 93: 2202-2209. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2009.01.062]
3. Al-hasani S, Ozmen B, Koutlaki N, Schoepper B, Diedrich K, Schultze-mosgau A. three years of routine vitrification of human zygotes: is it still fair to advocate slow-rate freezing? Reprod Biomed Online 2007; 14: 288-293. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60869-3]
4. wininger JD, Kort HI. cryopreservation of immature and mature human oocytes. Seminreprod Med 2002; 20: 45-49. [DOI:10.1055/s-2002-23519]
5. Vajta G, Nagy ZP. Are programmable freezers still needed in embryo laboratory? Reprod Biomed Online 2006; 12: 779-796. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)61091-7]
6. Humburg R, Van der veen F, Silber SJ. Oocyte vitrification-women's emancipation set in stone. Fertil Steril 2009; 91: 1319-1320. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.02.127]
7. Cobo A, Kuwayama M, Pérez S, Ruiz A, Pellicer A, Remohí J. Comparison of concomitant outcome achieved with fresh and cryopreserved donor oocytes vitrified by the cryotop method. Fertil Steril 2008; 89: 1657-1664. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.05.050]
8. Cha KY, Koo JJ, Ko JJ, Choi DH, Han SY, Yoon TK . pregnancy after in vitro fertilization of human follicular oocytes collected from nonstimulated cycles, their culture in vitro and their transfer in a donor oocyte program. Fertil Steril 1991; 55: 109-113. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)54068-0]
9. Trounson A, wood C, Kausche A. In vitro maturation and the fertilization and developmental compotence oocytes recovered from untreated polycystic ovarian patients. Fertil Steril 1994; 62: 353-362. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)56891-5]
10. Durinzi KL, Saniga EM, Lanzerdorf SE. the relationship between : size and maturation in vitro in the unstimulated human oocyte. Fertil Steril 1995; 63: 404-406. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)57377-4]
11. Mikkelsen AL, Lindenberg S. morphology of in-vitro matured oocytes: impact on fertility potential and embryo quality. Hum Reprod 2001; 16: 1714-1718. [DOI:10.1093/humrep/16.8.1714]
12. Alberts b, Brray D, Lewis J, Raff M, Robert K, Waston JD. Molecular biology of the cell. Garland publishing Inc; 1983.
13. Lasiene K, Vitkuse A, Valanciute A, Lasys V. morphological criteria of oocyte quality. Medicina (Kaunas) 2009; 45: 509-514. [DOI:10.3390/medicina45070067]
14. Bao S, Obata Y, Carroll J, Domeki I, Kono T. epigenetic modifications neccessary for normal development are estabilished during oocyte growth in mice. Biol Reprod 2000; 62: 616-621. [DOI:10.1095/biolreprod62.3.616]
15. Cavilla JL, Kennedy CR, Byskov AG, Hatshorne GM. human immature oocytes grow during cultue for IVM. Hum Reprod 2008; 23: 37-45. [DOI:10.1093/humrep/dem178]
16. Michelmann HW, Bogdan A, Hinney B. micromorphometry and spermatozoa binding patterns of fertilized and unfertilized human oocytes after in-vitro fertilization. Hum Reprod 1995; 10: 3154-3160. [DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a135878]
17. kim BK, Lee SC, Kim KJ, Han CH, Kim JH. in vitro maturation, fertilization and development of human germinal vesicle oocytes collected from stimulated cycles. Fertil Steril 2000; 74: 1153-1158. [DOI:10.1016/S0015-0282(00)01617-4]
18. Cao YX, Chian RC. fertility preservation with immature and in vitro matured oocytes. Semin Reprod Med 2009; 27: 457-464. [DOI:10.1055/s-0029-1241055]
19. Paynter SJ. cryopreservation of human unfertilized oocytes. Hum Reprod Update 2000; 6: 449-456. [DOI:10.1093/humupd/6.5.449]
20. Russell JB. Immature oocyte retrieval combined with in-vitro oocyte maturation. Hum Reprod 1998; 13: 63-70. [DOI:10.1093/humrep/13.suppl_3.63]
21. Toth TH, Baka SG, Veeck LL, Jones HW, Muasher S, Lanzendorf SE. fertilization and in vitro development of cryopreserved human prophase 1 oocytes. Fertil Steril 1994; 61: 891-894. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)56702-8]
22. Gougeon A. Dynamics of follicular growth in the human: a model from preliminary results. Hum Reprod 1986; 1: 81-87. [DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a136365]
23. veek L. abnormal morphology of the human oocyte and conceptus. In: An Atlas of Human Gametes and Conceptuses. Lancs; 1999.
24. Bertand E, Van den Bergh M, Englert Y. Does zona pellucida tickness influence the fertilization rate? Hum Reprod 1995; 10: 1189-1193. [DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a136116]
25. Yuan YQ, Van Soom A, Leroy JL, Dewulf J, Van Zeveren A, de Kruif A, et al. Apoptosis in cumulus cells , but not in oocytes may influence bovine embryopnic developmental compotence. Theriogenology 2005; 63: 2147-2163. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2004.09.054]
26. Zeuner A, Muller K, Reguszynski K, Jewgenow K. apoptosis within bovine follicular cells and its effect on oocyte development during in viro maturation. Theriogenology 2003; 59: 1421-1433. [DOI:10.1016/S0093-691X(02)01190-1]
27. Balaban B, Urman B. Effect of oocyte morphology on embryo development and implantation. Reprod Biomed Online 2006; 12: 608-615. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)61187-X]
28. Xia P. Intracytoplasmic sperm injection: correlation of oocyte grade based on polar body, perivitelline space and cytoplasmic inclusions with fertilization rate and embryo quality. Hum Reprod 1997; 12: 1750-1755. [DOI:10.1093/humrep/12.8.1750]
29. Ubaldi F, Rienzi L. morphological selection of gamets. Placenta 2008; 29: 5115-5120. [DOI:10.1016/j.placenta.2008.08.009]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
