شنبه 8 دی 1403
[Archive]
دوره 10، شماره 2 - ( 4-1391 )
جلد 10 شماره 2 صفحات 104-99 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Minaei M B, Barbarestani M, Nekoonam S, Abdolvahabi M A, Takzare N, Asadi M H, et al . Effect of Trolox addition to cryopreservation media on human sperm motility. IJRM 2012; 10 (2) :99-104
URL: http://ijrm.ir/article-1-268-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-268-fa.html
مینایی محمدباقر، بربرستانی محمود، نکونام سعید، عبدالوهابی میرعباس، تکزارع نسرین، اسدی محمدحسین، و همکاران.. تأثیر اضافه نمودن ترولوکس به محیط های کشت انجماد بر روی ویژگی های حرکت اسپرم انسان. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1391; 10 (2) :99-104
محمدباقر مینایی1 
، محمود بربرستانی1 ، سعید نکونام1 ، میرعباس عبدالوهابی1 ، نسرین تکزارع2 ، محمدحسین اسدی2 ، عظیم هدایت پور2 ، فردین عمیدی* 3
، محمود بربرستانی1 ، سعید نکونام1 ، میرعباس عبدالوهابی1 ، نسرین تکزارع2 ، محمدحسین اسدی2 ، عظیم هدایت پور2 ، فردین عمیدی* 3
1- گروه علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
2- دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تهران
3- دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تهران ،Famidi @tums.ac.ir
2- دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تهران
3- دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تهران ،
چکیده: (2925 مشاهده)
مقدمه: پارامترها و ویژگی های حرکتی اسپرم ها تحت تأثیر انجماد تغییر می کنند.
هدف: هدف اصلی مطالعه، مشخص کردن تأثیر غلظت های متفاوت ترولوکس به عنوان یک آنتی اکسیدان در فرآیند انجماد-ذوب بر ویژگی های حرکتی اسپرم انسان می باشد.
مواد و روشها: نمونههای سیمن از 20 فرد سالم تهیه و قبل از انجماد به 5 گروه تقسیم شدند. گروه اول با سیستم کامپیوتری آنالیز اسپرم (CASA) آنالیز حرکتی شد. بقیه با مواد محافظ در برابر انجماد و غلظت های متفاوت ترولوکس (0 و 20 و 40 و 80 میکرومول) مخلوط شدند. گروه های درمانی با ترولوکس در نیتروژن مایع قرار گرفتند. بعد از دو هفته نمونه ها ذوب و ویژگی های حرکتی اسپرم ها توسط CASA بررسی شد. درصد تحرک (Mot)، سرعت در مسیر منحنی (VCL)، سرعت در مسیر مستقیم (VSL)، سرعت میانگین (VAP)، حرکت در مسیر مستقیم (LIN) و میزان جابجایی سر اسپرم به طرفین ALH قبل و بعد از انجماد با هم مقایسه شدند.
نتایج: اضافه کردن 40 میکرومول ترولوکس منجر به افزایش معنی داری (0/05>p) در میزان VCL، VSL و VAP بعد از فرآیند انجماد-ذوب در مقایسه با دیگر گروه ها شده بود. بنابراین میزان اسپرم های متحرک پس از ذوب به طور معنی داری بیشتر بود (0/01>p).
نتیجه گیری: کیفیت، حرکت رو به جلو و سرعت میانگین اسپرم ها با اضافه کردن ترولوکس به طور معنیداری در این مطالعه بهبود یافت.
هدف: هدف اصلی مطالعه، مشخص کردن تأثیر غلظت های متفاوت ترولوکس به عنوان یک آنتی اکسیدان در فرآیند انجماد-ذوب بر ویژگی های حرکتی اسپرم انسان می باشد.
مواد و روشها: نمونههای سیمن از 20 فرد سالم تهیه و قبل از انجماد به 5 گروه تقسیم شدند. گروه اول با سیستم کامپیوتری آنالیز اسپرم (CASA) آنالیز حرکتی شد. بقیه با مواد محافظ در برابر انجماد و غلظت های متفاوت ترولوکس (0 و 20 و 40 و 80 میکرومول) مخلوط شدند. گروه های درمانی با ترولوکس در نیتروژن مایع قرار گرفتند. بعد از دو هفته نمونه ها ذوب و ویژگی های حرکتی اسپرم ها توسط CASA بررسی شد. درصد تحرک (Mot)، سرعت در مسیر منحنی (VCL)، سرعت در مسیر مستقیم (VSL)، سرعت میانگین (VAP)، حرکت در مسیر مستقیم (LIN) و میزان جابجایی سر اسپرم به طرفین ALH قبل و بعد از انجماد با هم مقایسه شدند.
نتایج: اضافه کردن 40 میکرومول ترولوکس منجر به افزایش معنی داری (0/05>p) در میزان VCL، VSL و VAP بعد از فرآیند انجماد-ذوب در مقایسه با دیگر گروه ها شده بود. بنابراین میزان اسپرم های متحرک پس از ذوب به طور معنی داری بیشتر بود (0/01>p).
نتیجه گیری: کیفیت، حرکت رو به جلو و سرعت میانگین اسپرم ها با اضافه کردن ترولوکس به طور معنیداری در این مطالعه بهبود یافت.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Thuwanut P, Chatdarong K, Techakumphu M, Axner E. The effect of antioxidants on motility, viability, acrosome integrity and DNA integrity of frozen-thawed epididymal cat spermatozoa. Theriogenology 2008; 70: 233-240. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2008.04.005]
2. Pérez-Cerezales S, Martínez-Páramo S, Cabrita E, Martínez-Pastor F, de Paz P, Herráez MP. Evaluation of oxidative DNA damage promoted by storage in sperm from sex-reversed rainbow trout. Theriogenology 2009; 71: 605-613. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2008.09.057]
3. Ozkavukcu S, Erdemli E, Isik A, Oztuna D, Karahuseyinoglu S. Effects of cryopreservation on sperm parameters and ultrastructural morphology of human spermatozoa. J Assist Reprod Genet 2008; 25: 403-411. [DOI:10.1007/s10815-008-9232-3]
4. Peirouvi T, Farjah G, Rad JS, Novin MG. Vitrification induced apoptosis in spermatozoa from fertile and subfertile men. Iran J Reprod Med 2007; 5: 117-120.
5. Correa LM, Thomas A, Meyers SA. The macaque sperm actin cytoskeleton reorganizes in response to osmotic stress and contributes to morphological defects and decreased motility. Biol Reprod 2007; 77: 942-953. [DOI:10.1095/biolreprod.107.060533]
6. Bollwein H, Fuchs I, Koess C. Interrelationship between plasma membrane integrity, mitochondrial membrane potential and DNA fragmentation in cryopreserved bovine spermatozoa. Reprod Domest Anim 2008; 43: 189-195. [DOI:10.1111/j.1439-0531.2007.00876.x]
7. Taylor K, Roberts P, Sanders K, Burton P. Effect of antioxidant supplementation of cryopreservation medium on post-thaw integrity of human spermatozoa. Reprod Biomed Online 2009; 18: 184-189. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60254-4]
8. Agarwal A, Sharma RK, Nallella KP, Thomas AJ Jr, Alvarez JG, Sikka SC. Reactive oxygen species as an independent marker of male factor infertility. Fertil Steril 2006; 86:878-885. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2006.02.111]
9. Jeong Y, Kim M, Song H, Kang E, Ock S, Mohana Kumar B, et al. Effect of -tocopherol supplementation during boar semen cryopreservation on sperm characteristics and expression of apoptosis related genes. Cryobiology 2009; 58: 181-189. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2008.12.004]
10. Paradiso Galatioto G, Gravina GL, Angelozzi G, Sacchetti A, Innominato PF, Pace G, et al. May antioxidant therapy improve sperm parameters of men with persistent oligospermia after retrograde embolization for varicocele? World J Urol 2008; 26: 97-102. [DOI:10.1007/s00345-007-0218-z]
11. Mui-o-Blanco T, Pérez-Pé R, Cebrián-Pérez J. Seminal Plasma Proteins and Sperm Resistance to Stress. Reprod Domest Anim 2008; 43: 18-31. [DOI:10.1111/j.1439-0531.2008.01228.x]
12. Ball B. Oxidative stress, osmotic stress and apoptosis: Impacts on sperm function and preservation in the horse. Anim Reprod Sci 2008; 107: 257-267. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2008.04.014]
13. Momeni HR, Mehranjani MS, Abnosi MH, Mahmoodi M. Effects of vitamin E on sperm parameters and reproductive hormones in developing rats treated with para-nonylphenol. Iran J Reprod Med 2009; 7: 111-116.
14. Liu Q, Li J, Xiao Z, Ding F, Yu D, Xu X. Use of computer-assisted sperm analysis (CASA) to evaluate the quality of cryopreserved sperm in red seabream (Pagrus major). Aquaculture 2007; 263: 20-25. [DOI:10.1016/j.aquaculture.2006.11.017]
15. Fréour T, Jean M, Mirallié S, Dubourdieu S, Barrière P. Computer-Assisted Sperm Analysis (CASA) parameters and their evolution during preparation as predictors of pregnancy in intrauterine insemination with frozen-thawed donor semen cycles. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2010; 149: 186-189. [DOI:10.1016/j.ejogrb.2009.12.029]
16. Calamera JC, Buffone MG, Doncel GF, Brugo-Olmedo S, de Vincentiis S, Calamera MM, et al. Effect of thawing temperature on the motility recovery of cryopreserved human spermatozoa. Fertil Steril 2010; 93: 789-794. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.10.021]
17. Breininger E, Beorlegui N, O'Flaherty C, Beconi M. Alpha-tocopherol improves biochemical and dynamic parameters in cryopreserved boar semen. Theriogenology 2005; 63: 2126-2135. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2004.08.016]
18. Lanzafame F, La Vignera S, Vicari E, Calogero A. Oxidative stress and medical antioxidant treatment in male infertility. Reprod biomed online 2009; 19: 638-659. [DOI:10.1016/j.rbmo.2009.09.014]
19. Vutyavanich T, Piromlertamorn W, Nunta S. Rapid freezing versus slow programmable freezing of human spermatozoa. Fertil Steril 2010; 93: 1921-1928. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.04.076]
20. Marcus-Braun N, Braun G, Potashnik G, Har-Vardi I. Effect of cryopreservation on quality and fertilization capacity of human sperm. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2004; 116: 63-66. [DOI:10.1016/j.ejogrb.2004.01.036]
21. Lahnsteiner F, Mansour N, Plaetzer K. Antioxidant systems of brown trout (Salmo trutta f. fario) semen. Anim Reprod Sci 2010; 119: 314-321. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2010.01.010]
22. Colás C, Junquera C, Pérez-Pé R, Cebrián-Pérez J, Mui-o-Blanco T. Ultrastructural study of the ability of seminal plasma proteins to protect ram spermatozoa against cold-shock. Microsc Res Tech 2009; 72: 566-572. [DOI:10.1002/jemt.20710]
23. Jobim M, Oberst E, Salbego C, Wald V, Horn A, Mattos R. BSP A1/A2-like proteins in ram seminal plasma. Theriogenology 2005; 63: 2053-2062. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2004.10.002]
24. Castellini C, Lattaioli P, Bosco AD, Minelli A, Mugnai C. Oxidative status and semen characteristics of rabbit buck as affected by dietary vitamin E, C and n-3 fatty acids. Reprod Nutr Dev 2003; 43: 91-104. [DOI:10.1051/rnd:2003008]
25. Jeong YJ, Kim MK, Song HJ, Kang EJ, Ock SA, Mohana Kumar B, et al. Effect of [alpha]-tocopherol supplementation during boar semen cryopreservation on sperm characteristics and expression of apoptosis related genes. Cryobiology 2009; 58: 181-189. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2008.12.004]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
