دوشنبه 24 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 10، شماره 2 - ( 4-1391 )
جلد 10 شماره 2 صفحات 82-77 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Aliabadi E, Soleimani Mehranjani M, Borzoei Z, Talaei-Khozani T, Mirkhani H, Tabesh H. Effects of L-carnitine and L-acetyl-carnitine on testicular sperm motility and chromatin quality. IJRM 2012; 10 (2) :77-82
URL: http://ijrm.ir/article-1-271-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-271-fa.html
علی آبادی الهام، سلیمانی مهرنجانی ملک، برزویی زهرا، طلایی خوزانی طاهره، میرخانی حسین، تابش حامد. اثرات ال- کارنیتین و ال- استیل کارنیتین بر میزان تحرک و کیفیت کروماتین اسپرم بیضه. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1391; 10 (2) :77-82
الهام علی آبادی* 
1، ملک سلیمانی مهرنجانی2 ، زهرا برزویی2 ، طاهره طلایی خوزانی3 ، حسین میرخانی4 ، حامد تابش5
1، ملک سلیمانی مهرنجانی2 ، زهرا برزویی2 ، طاهره طلایی خوزانی3 ، حسین میرخانی4 ، حامد تابش5
1- گروه علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران ، mahzad626@yahoo.com
2- گروه بیولوژی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه اراک، اراک، ایران
3- گروه علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
4- گروه فارماکولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
5- گروه آمار حیاتی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
2- گروه بیولوژی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه اراک، اراک، ایران
3- گروه علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
4- گروه فارماکولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
5- گروه آمار حیاتی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
چکیده: (3181 مشاهده)
مقدمه: اسپرم های استخراج شده از بیضه (TESE) دارای تحرک وکیفیت کروماتینی پایینی هستند. تاکنون مواد مختلفی در آزمایشگاه جهت افزایش تحرک اسپرم و به دنبال آن بهبود نتایج تکنیکهای کمکی در تولیدمثل (ART) به کار رفتهاند، اما تحقیقاتی که کیفیت کروماتین و تحرک این اسپرم ها را هم زمان بررسی نماید، بسیار اندک بوده است.
هدف: هدف از انجام این تحقیق، ارزیابی تغییرات تحرک و کیفیت کروماتین اسپرم های استخراج شده از بیضه پس از مجاورت با ال- کارنیتین(LC) و ال- استیل- کارنیتین (LAC) که به طور طبیعی در بیضه و اپیدیدیم تجمع پیدا می کنند، در مقایسه با پنتوکسیفیلین(PF) ، ماده مورد استفاده جهت افزایش تحرک اسپرم در آزمایشگاه هایIVF ، بوده است.
مواد و روش ها: نمونههای TESE به دست آمده از30 موش سوری نر، به چهار قسمت تقسیم گردیدند. به هر قسمت، محیط کشت Ham' F10(کنترل) و یا محیط کشت Ham' F10 حاوی LC، LAC و یا PFبه میزان 76/1 میلی مولار اضافه شد. تمام نمونهها در دمای آزمایشگاه به مدت 30، 90 و 180 دقیقه قرار گرفته و سپس در زمان های مذکور تحرک و کیفیت کروماتین اسپرم اندازه گیری گردید. همچنین جهت بررسی کیفیت کروماتین اسپرم از رنگ آمیزی آنیلین بلو و کرومومایسین A3 استفاده شد. نتایج با روش آماری آنالیز واریانس یک طرفه ((ANOVA بررسی و مقدار p کمتر از 05/0 به عنوان مرز معنی دار بودن داده ها در نظر گرفته شد.
نتایج: نتایج نشان داد LC، LACو PFافزایش معنیداری در تحرک اسپرم ایجاد میکنند. در حالیکه بهبود در کیفیت کروماتین تنها پس از مجاورت با LC و LACافزایش معنیداری پیدا کرد.
نتیجه گیری: مجاورکردن اسپرم های بیضه با LC و LACمیتواند باعث افزایش تحرک و همچنین بهبود کیفیت کروماتین آن گردد. این امر ممکن است به دلیل توانایی این مواد در ایجاد شرایطی مشابه با مراحل آخر اسپرماتوژنز در بدن مرد (In-vivo) برای اسپرم باشد.
هدف: هدف از انجام این تحقیق، ارزیابی تغییرات تحرک و کیفیت کروماتین اسپرم های استخراج شده از بیضه پس از مجاورت با ال- کارنیتین(LC) و ال- استیل- کارنیتین (LAC) که به طور طبیعی در بیضه و اپیدیدیم تجمع پیدا می کنند، در مقایسه با پنتوکسیفیلین(PF) ، ماده مورد استفاده جهت افزایش تحرک اسپرم در آزمایشگاه هایIVF ، بوده است.
مواد و روش ها: نمونههای TESE به دست آمده از30 موش سوری نر، به چهار قسمت تقسیم گردیدند. به هر قسمت، محیط کشت Ham' F10(کنترل) و یا محیط کشت Ham' F10 حاوی LC، LAC و یا PFبه میزان 76/1 میلی مولار اضافه شد. تمام نمونهها در دمای آزمایشگاه به مدت 30، 90 و 180 دقیقه قرار گرفته و سپس در زمان های مذکور تحرک و کیفیت کروماتین اسپرم اندازه گیری گردید. همچنین جهت بررسی کیفیت کروماتین اسپرم از رنگ آمیزی آنیلین بلو و کرومومایسین A3 استفاده شد. نتایج با روش آماری آنالیز واریانس یک طرفه ((ANOVA بررسی و مقدار p کمتر از 05/0 به عنوان مرز معنی دار بودن داده ها در نظر گرفته شد.
نتایج: نتایج نشان داد LC، LACو PFافزایش معنیداری در تحرک اسپرم ایجاد میکنند. در حالیکه بهبود در کیفیت کروماتین تنها پس از مجاورت با LC و LACافزایش معنیداری پیدا کرد.
نتیجه گیری: مجاورکردن اسپرم های بیضه با LC و LACمیتواند باعث افزایش تحرک و همچنین بهبود کیفیت کروماتین آن گردد. این امر ممکن است به دلیل توانایی این مواد در ایجاد شرایطی مشابه با مراحل آخر اسپرماتوژنز در بدن مرد (In-vivo) برای اسپرم باشد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Isidori AM, Pozza C, Gianfrilli D, Isidori A. Medical treatment to improve sperm quality. Reprod Biomed Online 2006; 12: 704-714. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)61082-6]
2. Su LM, Palermo GD, Goldstein M, Veeck LL, Rosenwaks Z, Schlegel PN. Testicular sperm extraction with intracytoplasmic sperm injection for nonobstructive azoospermia: testicular histology can predict success of sperm retrieval. J Urol 1999; 161: 112-116. [DOI:10.1016/S0022-5347(01)62079-2]
3. Jeulin C, Lewin LM. Role of free L-carnitine and acetyl-L-carnitine in post-gonadal maturation of mammalian spermatozoa. Hum Reprod Update 1996; 2: 87-102. [DOI:10.1093/humupd/2.2.87]
4. Golan R, Cooper TG, Oschry Y, Oberpenning F, Schulze H, Shochat L, et al. Changes in chromatin condensation of human spermatozoa during epididymal transit as determined by flow cytometry. Hum Reprod 1996; 11: 1457-1462. [DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a019419]
5. Liu J, Tsai Y, Katz E, Compton G, Garcia GE, Baramki TA. Outcome of in-vitro culture of fresh and frozen–thawed human testicular spermatozoa. Hum Reprod 1997; 12: 1667-1672. [DOI:10.1093/humrep/12.8.1667]
6. Jones RC, Dacheux JL, Nixon B, Ecroyd HW. Role of the epididymis in sperm competition. Asian J Androl 2007; 9: 493-499. [DOI:10.1111/j.1745-7262.2007.00284.x]
7. Pruneda A, Yeung CH, Bonet S, Pinart E, Cooper TG. Concentrations of carnitine, glutamate and myo-inositol in epididymal fluid and spermatozoa from boars. Anim Reprod Sci 2007; 97: 344-355. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2006.01.013]
8. Kobayashi D, Goto A, Maeda T, Nezu JI, Tsuji A, Tamai I. OCTN2-mediated transport of carnitine in isolated Sertoli cells. Reproduction 2005; 129: 729-736. [DOI:10.1530/rep.1.00507]
9. Abdelrazik H, Agrawal A. L-carnitine and assisted reproduction. Arch Med Sci 2009; 5: 43-47.
10. Kanter M, Topcu-Tarladacalisir Y, Parlar S. Antiapoptotic effect of L-carnitine on testicular irradiation in rats. J Mol Histol 2010; 41: 121-128. [DOI:10.1007/s10735-010-9267-5]
11. Tunc O, Thompson J, Tremellen K. Improvement in sperm DNA quality using an oral antioxidant therapy. Reprod Biomed Online 2009; 18: 761-768. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60024-7]
12. De Iuliis GN, Thomson LK, Mitchell LA, Finnie JM, Koppers AJ, Hedges A, et al. DNA damage in human spermatozoa is highly correlated with the efficiency of chromatin remodeling and the formation of 8-hydroxy-2'-deoxyguanosine, a marker of oxidative stress. Biol Reprod 2009; 81: 517-524. [DOI:10.1095/biolreprod.109.076836]
13. Balaban B, Urman B, Isiklar A, Alatas C, Aksoy S, Mercan R, Nuhoglu A. Progression to the blastocyst stage of embryos derived from testicular round spermatids. Hum Reprod 2000; 15: 1377-1382. [DOI:10.1093/humrep/15.6.1377]
14. Sato M, Ishikawa A. Room temperature storage of mouse epididymal spermatozoa: exploration of factors affecting sperm survival. Theriogenology 2004; 61: 1455-1469. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2003.07.013]
15. Kovacic B, Vlaisavljevic V, Reljic M. Clinical Use of Pentoxifylline for Activation of Immotile Testicular Sperm before ICSI in Patients with Azoospermia. Androl 2006; 2: 45-52. [DOI:10.2164/jandrol.05079]
16. World Health Organization. WHO Laboratory manual for examination of human semen and sperm-cervical mucuinteraction. 4th Ed. Cambridge; Cambridge University Press; 2010.
17. Moreira Jr, Sergio G, Lipshult z, Larry I. Management of Male Infertility. TSWJ 2004; 4: 214-448.
18. Terquem A, Dadoune JP. Aniline blue staining of human spermatozoa chromatin Evaluation of nuclear maturation. J Androl(ed) J sperm cell 1983; 249-252.
19. Lolis D, Georgiou I, Syrrou M, Zikopoulos K, Konstantelli M, Messinis I. Chromomycin A3 staining as an indicator of protamine deficiency and fertilization. Int Androl 1996; 19: 23-27. [DOI:10.1111/j.1365-2605.1996.tb00429.x]
20. Lenzi A, Sgrò P, Salacone P, Paoli D, Gilio B, Lombardo F, et al. Aplacebo-controlleddouble-blind randomized trial of the use of combined L-carnitine and L-acetyl-carnitine treatment in men with asthenozoospermia. Fertil Steril 2004; 81: 1578-1584. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2003.10.034]
21. Tasdemir I, Tasdemir M, Tavukcuoglu S. Effect of pentoxifylline on immotile testicular spermatozoa. Assist Reprod Genet 1998; 15: 90-92. [DOI:10.1007/BF02766832]
22. Tanphaichitr N. In vitro stimulation of human sperm motility by acetylcarnitine biological chemistry. Int J Fertility 1977; 22: 85-91.
23. Shi JZ, Zhang SS, Zhang Z, Liang Q, Shi Y, Hua JL, et al. Expressions of sperm-specific genes in carnitine-cultured testis sperm of obstructive azoospermia patients. Zhonghua Nan Ke Xue 2010; 16: 504-509.
24. Aitken RJ, Baker MA. Oxidative stress, sperm survival and fertility control. Mol Cel Endocrinol 2006; 250: 66-69. [DOI:10.1016/j.mce.2005.12.026]
25. Solarska K, Lewińska A, Karowicz-Bilińska A, Bartosz G.The antioxidant properties of carnitine in vitro. Cell Mol Biol Lett 2010; 15: 90-97. [DOI:10.2478/s11658-009-0036-y]
26. Aitken RJ, Clarkson JS. Cellular basis of defective sperm function and its association with the genesis of reactive oxygen species by human spermatozoa. J Reprod Fertil 1987; 81: 459-469. [DOI:10.1530/jrf.0.0810459]
27. de Lamirande E, Gagnon C. Reactive oxygen species and human spermatozoa. II Depletion of adenosine triphosphate plays an important role in the inhibition of sperm motility. J Androl 1992; 13: 379-386.
28. Dokmeci D. Oxidative stress, male infertility and the role of carnitines. Folia Med (Plovdiv) 2005; 47: 26-30.
29. Brooks DE. Carnitine, acetylcarnitine and the activity of carnitine acyltransferases in seminal plasma and spermatozoa of men, rams and rats. Reprod Fertil 1979; 56: 667-673. [DOI:10.1530/jrf.0.0560667]
30. Casillas ER, Chaipayungpan S. The distribution of carnitine and acetylcarnitine in the rabbit epididymis and the carnitine content of rabbit spermatozoa during maturation. Reprod Fertil 1979; 56: 439-444. [DOI:10.1530/jrf.0.0560439]
31. Emiliani S, Bergh M, Vannin A, Biramane J, Verdoodt M, Englert Y. Increased sperm motility after in-vitro culture of testicular biopsies from obstructive azoospermic patients results in better post-thaw recovery rate. Hum Reprod 2000; 1: 2371-2374. [DOI:10.1093/humrep/15.11.2371]
32. Tanaka H, Baba T. Gene expression in spermiogenesis. Cell Mol Life Sci 2005; 62: 344-354. [DOI:10.1007/s00018-004-4394-y]
33. Vilfan ID, Conwell C, Hud NV. Formation of native-like mammaliansperm cell chromatin with folded bull protamine. Biol Chem 2004; 279: 20088-20095. [DOI:10.1074/jbc.M312777200]
34. Hammadeh ME, Al-Hasani S, Doerr S, Stieber M, Rosenbaum P, Schmidt W, et al. Comparison between chromatin condensation and morphology from testis biopsy extracted and ejaculated spermatozoa and their relationship to ICSI outcome. Hum Reprod 1999; 14: 363-367. [DOI:10.1093/humrep/14.2.363]
35. Kodama H, Yamaguchi R, Fukuda J, Kasai H, Tanaka T. Increased oxidative deoxyribonucleic acid damage in the spermatozoa of infertile male patients. Fertil Steril 1997; 68: 519-524. [DOI:10.1016/S0015-0282(97)00236-7]
36. Menezo YJ, Hazout A, Panteix G, Robert F, Rollet J, Cohen-Bacrie P, et al. Antioxidants to reduce sperm DNA fragmentation: an unexpected adverse effect. Reprod Biomed Online 2007; 14: 418-421. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60887-5]
37. Shamsi MB, Kumar R, Dada R. Evaluation of nuclear DNA damage in human spermatozoa in men opting for assisted reproduction. Ind J Med Res 2008; 127: 115-123.
38. Jeulin CM, Lewin L. Role of free L-carnitine and acetyl-L-carnitine in post-gonadal maturation of mammalian spermatozoa. Hum Reprod 1996; 2: 87-102.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
