چهارشنبه 16 مهر 1404
[Archive]
دوره 23، شماره 5 - ( 2-1404 )
جلد 23 شماره 5 صفحات 408-397 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Ethics code: IR.KHU.REC.1401.034
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Sohani Y, Azarnia M, Zeinali H, Khaledi S, Mehdinezhad Roshan M. Effect of estradiol on in vitro maturation of immature oocytes in cyclophosphamide-induced premature ovarian failure in NMRI mice: An experimental study. IJRM 2025; 23 (5) :397-408
URL: http://ijrm.ir/article-1-3450-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-3450-fa.html
اثر استرادیول بر بلوغ آزمایشگاهی تخمکهای نابالغ در نارسایی زودرس تخمدان ناشی از سیکلوفسفامید در موش NMRI: یک مطالعه تجربی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1404; 23 (5) :397-408
چکیده: (344 مشاهده)
مقدمه: نارسایی زودرس تخمدان (POF) وضعیتی است که با از دست دادن عملکرد تخمدان مشخص و منجر به ناباروری میشود.
هدف: هدف از این مطالعه بررسی چگونگی تأثیر مکمل استرادیول بر بلوغ آزمایشگاهی تخمکهای نابالغ در موش‌های ماده NMRI بود که POF ناشی از سیکلوفسفامید را نشان می‌دهند.
مواد و روش ها: در این مطالعه تجربی، 15 موش ماده NMRI (8-10 هفته، 5 ± 30 گرم) به 3 گروه ،کنترل، شم و مدل تقسیم شدند که گروه مدل به مدت 21 روز برای القای POF تزریق سیکلوفسفامید دریافت کرد و سپس با دوزهای مختلف استرادیول تیمار شد و به سه گروه تیمار تقسیم گردید: گروه تیمار 1 که به محیط کشت پایه μg/ml 5/0 استرادیول اضافه شد و گروه تیمار 2 و 3 که به ترتیب به محیط کشت آنها مقدار 1و 5/1 μg/ml استرادیول اضافه شد. گروه شم نیز تمام مداخلات لازم به جز درمان با استرادیول را دریافت کردند. پس از القا، مطالعات بافتشناسی بر روی تخمدان همه گروهها انجام شد. همچنین پس از تحریک و جداسازی تخمکها از تخمدان، آنها در شرایط آزمایشگاهی کشت داده شدند.
نتایج: تجزیه و تحلیل مراحل بلوغ تخمک ویژگی‌های متمایزی را نشان داد. کمترین درصد تخمکهای GV در گروه شاهد (13/3%) و بیشترین درصد در تخمکهای گروه شم (25/76%) (0001/0 p <) بود. دوز استرادیول به طور معکوس بر بلوغ تخمک نابالغ تأثیر می‌گذارد که کمترین آن در گروه تیمار 3 بود. درصد تخمک GVBD با دوز استرادیول افزایش یافت. بالاترین بلوغ تخمکهای MII در گروه شاهد (00/64%) و کمترین آن در شم (00/5%) (0001/0 p <) بود. گروههای تیمار نرخهای متفاوتی را نشان دادند. درصد تخمک دژنره شده در گروه شاهد کمترین (80/1%) و بالاترین در شم (27/10%) (0001/0 p <) بود.
نتیجه گیری: مطالعه ما نشان داد که استفاده از دوز μg/ml 5/1 استرادیول در شرایط آزمایشگاهی منجر به بالاترین بلوغ تخمک در شرایط POF میشود و به دانش موجود در مورد POF کمک می‌کند و بینش‌هایی را در مورد مداخلات درمانی بالقوه با هدف بهبود نتایج باروری در افراد مبتلا به POF ارائه می‌کند.
هدف: هدف از این مطالعه بررسی چگونگی تأثیر مکمل استرادیول بر بلوغ آزمایشگاهی تخمکهای نابالغ در موش‌های ماده NMRI بود که POF ناشی از سیکلوفسفامید را نشان می‌دهند.
مواد و روش ها: در این مطالعه تجربی، 15 موش ماده NMRI (8-10 هفته، 5 ± 30 گرم) به 3 گروه ،کنترل، شم و مدل تقسیم شدند که گروه مدل به مدت 21 روز برای القای POF تزریق سیکلوفسفامید دریافت کرد و سپس با دوزهای مختلف استرادیول تیمار شد و به سه گروه تیمار تقسیم گردید: گروه تیمار 1 که به محیط کشت پایه μg/ml 5/0 استرادیول اضافه شد و گروه تیمار 2 و 3 که به ترتیب به محیط کشت آنها مقدار 1و 5/1 μg/ml استرادیول اضافه شد. گروه شم نیز تمام مداخلات لازم به جز درمان با استرادیول را دریافت کردند. پس از القا، مطالعات بافتشناسی بر روی تخمدان همه گروهها انجام شد. همچنین پس از تحریک و جداسازی تخمکها از تخمدان، آنها در شرایط آزمایشگاهی کشت داده شدند.
نتایج: تجزیه و تحلیل مراحل بلوغ تخمک ویژگی‌های متمایزی را نشان داد. کمترین درصد تخمکهای GV در گروه شاهد (13/3%) و بیشترین درصد در تخمکهای گروه شم (25/76%) (0001/0 p <) بود. دوز استرادیول به طور معکوس بر بلوغ تخمک نابالغ تأثیر می‌گذارد که کمترین آن در گروه تیمار 3 بود. درصد تخمک GVBD با دوز استرادیول افزایش یافت. بالاترین بلوغ تخمکهای MII در گروه شاهد (00/64%) و کمترین آن در شم (00/5%) (0001/0 p <) بود. گروههای تیمار نرخهای متفاوتی را نشان دادند. درصد تخمک دژنره شده در گروه شاهد کمترین (80/1%) و بالاترین در شم (27/10%) (0001/0 p <) بود.
نتیجه گیری: مطالعه ما نشان داد که استفاده از دوز μg/ml 5/1 استرادیول در شرایط آزمایشگاهی منجر به بالاترین بلوغ تخمک در شرایط POF میشود و به دانش موجود در مورد POF کمک می‌کند و بینش‌هایی را در مورد مداخلات درمانی بالقوه با هدف بهبود نتایج باروری در افراد مبتلا به POF ارائه می‌کند.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Federici S, Rossetti R, Moleri S, Munari EV, Frixou M, Bonomi M, et al. Primary ovarian insufficiency: Update on clinical and genetic findings. Front Endocrinol (Lausanne) 2024; 15: 1464803. [DOI:10.3389/fendo.2024.1464803] [PMID] [PMCID]
2. Bhardwaj JK, Bikal P, Sachdeva SN. Chemotherapeutic drugs induced female reproductive toxicity and treatment strategies. J Biochem Mol Toxicol 2023; 37: e23371. [DOI:10.1002/jbt.23371] [PMID]
3. Chen H, Nie P, Li J, Wu Y, Yao B, Yang Y, et al. Cyclophosphamide induces ovarian granulosa cell ferroptosis via a mechanism associated with HO-1 and ROS-mediated mitochondrial dysfunction. J Ovarian Res 2024; 17: 107. [DOI:10.1186/s13048-024-01434-z] [PMID] [PMCID]
4. Marci R, Mallozzi M, Di Benedetto L, Schimberni M, Mossa S, Soave I, et al. Radiations and female fertility. Reprod Biol Endocrinol 2018; 16: 112. [DOI:10.1186/s12958-018-0432-0] [PMID] [PMCID]
5. Ben-Aharon I, Bar-Joseph H, Tzarfaty G, Kuchinsky L, Rizel S, Stemmer SM, et al. Doxorubicin-induced ovarian toxicity. Reprod Biol Endocrinol 2010; 8: 20. [DOI:10.1186/1477-7827-8-20] [PMID] [PMCID]
6. Kim S, Kim S-W, Han S-J, Lee S, Park H-T, Song J-Y, et al. Molecular mechanism and prevention strategy of chemotherapy -and radiotherapy-induced ovarian damage. Int J Mol Sci 2021; 22: 7484. [DOI:10.3390/ijms22147484] [PMID] [PMCID]
7. Fatemi Abhari SM, Khanbabaei R, Hayati Roodbari N, Parivar K, Yaghmaei P. Curcumin-loaded super-paramagnetic iron oxide nanoparticle affects on apoptotic factors expression and histological changes in a prepubertal mouse model of polycystic ovary syndrome-induced by dehydroepiandrosterone: A molecular and stereological study. Life Sci 2020; 249: 117515. [DOI:10.1016/j.lfs.2020.117515] [PMID]
8. Xu S, Ma Y, Zhang Y, Ying H, Tong X, Yang W, et al. Intrinsic differences in mTOR activity mediates lineage-specific responses to cyclophosphamide in mouse and human granulosa cells. J Ovarian Res 2025; 18: 49. [DOI:10.1186/s13048-025-01627-0] [PMID] [PMCID]
9. Noh S, Go A, Kim DB, Park M, Jeon HW, Kim B. Role of antioxidant natural products in management of infertility: A review of their medicinal potential. Antioxidants (Basel) 2020; 9: 957. [DOI:10.3390/antiox9100957] [PMID] [PMCID]
10. Sifakis S, Androutsopoulos VP, Tsatsakis AM, Spandidos DA. Human exposure to endocrine disrupting chemicals: Effects on the male and female reproductive systems. Environ Toxicol Pharmacol 2017; 51: 56-70. [DOI:10.1016/j.etap.2017.02.024] [PMID]
11. Fabbri R, Vicenti R, Magnani V, Paradisi R, Lima M, De Meis L, et al. Ovarian tissue cryopreservation and transplantation: 20 years experience in Bologna University. Front Endocrinol (Lausanne) 2022; 13: 1035109.
https://doi.org/10.3389/fendo.2022.1095627 [DOI:10.3389/fendo.2022.1035109] [PMCID]
12. Pouladvand N, Azarnia M, Zeinali H, Fathi R, Tavana S. An overview of different methods to establish a murine premature ovarian failure model. Animal Model Exp Med 2024; 7: 835-852. [DOI:10.1002/ame2.12477] [PMID] [PMCID]
13. Ailia MJ, Jin Y-K, Kim H-K, Jang G. Development of in-vitro maturation protocol for rat oocytes; under simple culture vs co-culture with cumulus cell monolayer and its developmental potential via parthenogenetic/artificial activation. BMC Vet Res 2021; 17: 44. [DOI:10.1186/s12917-020-02714-8] [PMID] [PMCID]
14. Dianová L, Tirpák F, Halo M, Slanina T, Massányi M, Stawarz R, et al. Effects of selected metal nanoparticles (Ag, ZnO, TiO(2)) on the structure and function of reproductive organs. Toxics 2022; 10: 459. [DOI:10.3390/toxics10080459] [PMID] [PMCID]
15. Zarif-Yeganeh M, Rastegarpanah M. Clinical role of silymarin in oxidative stress and infertility: A short review for pharmacy practitioners. J Res Pharm Pract 2019; 8: 181-188. [DOI:10.4103/jrpp.JRPP_18_100] [PMID] [PMCID]
16. Jeruss JS, Woodruff TK. Preservation of fertility in patients with cancer. N Engl J Med 2009; 360: 902-911. [DOI:10.1056/NEJMra0801454] [PMID] [PMCID]
17. Sallam N, Hemida R. Female fertility preservation: Current & future strategies. Mansoura Med J 2022; 51: 124-138. [DOI:10.21608/mjmu.2022.128323.1068]
18. Su HI, Lacchetti C, Letourneau J, Partridge AH, Qamar R, Quinn GP, et al. Fertility preservation in people with cancer: ASCO guideline update. J Clin Oncol 2025; 43: 1488-1515. [DOI:10.1200/JCO-24-02782] [PMID]
19. Nishi K, Gunasekaran VP, Arunachalam J, Ganeshan M. Doxorubicin-induced female reproductive toxicity: An assessment of ovarian follicular apoptosis, cyclicity and reproductive tissue histology in Wistar rats. Drug Chem Toxicol 2018; 41: 72-81. [DOI:10.1080/01480545.2017.1307851] [PMID]
20. Pierre A, Mayeur A, Marie C, Cluzet V, Chauvin J, Frydman N, et al. Estradiol regulates mRNA levels of estrogen receptor beta 4 and beta 5 isoforms and modulates human granulosa cell apoptosis. Int J Mol Sci 2021; 22: 5049. [DOI:10.3390/ijms22095046] [PMID] [PMCID]
21. Kulus J, Kranc W, Kulus M, Dzięgiel P, Bukowska D, Mozdziak P, et al. Expression of genes regulating cell division in porcine follicular granulosa cells. Cell Div 2023; 18: 12. [DOI:10.1186/s13008-023-00094-7] [PMID] [PMCID]
22. Sargazi S, Ahmadi Z, Barani M, Rahdar A, Amani S, Desimone MF, et al. Can nanomaterials support the diagnosis and treatment of human infertility? A preliminary review. Life Sci 2022; 299: 120539. [DOI:10.1016/j.lfs.2022.120539] [PMID]
23. Bhartiya D, Singh J. FSH-FSHR3-stem cells in ovary surface epithelium: Basis for adult ovarian biology, failure, aging, and cancer. Reproduction 2015; 149: R35-48. [DOI:10.1530/REP-14-0220] [PMID]
24. Melo P, Navarro C, Jones C, Coward K, Coleman L. The use of autologous platelet-rich plasma (PRP) versus no intervention in women with low ovarian reserve undergoing fertility treatment: A non-randomized interventional study. J Assist Reprod Genet 2020; 37: 855-863. [DOI:10.1007/s10815-020-01710-z] [PMID] [PMCID]
25. Qamar AY, Hussain T, Rafique MK, Bang S, Tanga BM, Seong G, et al. The role of stem cells and their derived extracellular vesicles in restoring female and male fertility. Cells 2021; 10: 2460. [DOI:10.3390/cells10092460] [PMID] [PMCID]
26. El-Sayyad HIH, El-Shershaby EMF, El-Mansi AA, El-Ashry NE. Anti-hypercholesterolemic impacts of barley and date palm fruits on the ovary of Wistar albino rats and their offspring. Reprod Biol 2018; 18: 236-251. [DOI:10.1016/j.repbio.2018.07.003] [PMID]
27. Mirzaeian L, Eivazkhani F, Saber M, Moini A, Esfandiari F, Valojerdi MR, et al. In-vivo oogenesis of oogonial and mesenchymal stem cells seeded in transplanted ovarian extracellular matrix. J Ovarian Res 2023; 16: 56. [DOI:10.1186/s13048-023-01131-3] [PMID] [PMCID]
28. Liu Q, Li J, Li Y, Cheng M, Zhang H, Ma B. Estrogen regulates Ca2+ to promote mitochondrial function through G-protein-coupled estrogen receptors during oocyte maturation. Biomolecules 2024; 14: 1430. [DOI:10.3390/biom14111430] [PMID] [PMCID]
29. Bukovsky A, Caudle MR. Mammalian neo-oogenesis from ovarian stem cells in vivo and in vitro. In: Schatten H. Cell and molecular biology and imaging of stem cells. USA: Wiley-Blackwell Publishing (Holdings) Ltd; 2014: 67-136. [DOI:10.1002/9781118285602.ch4]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
