یکشنبه 26 بهمن 1404
[Archive]
دوره 23، شماره 12 - ( 10-1404 )
جلد 23 شماره 12 صفحات 1042-1031 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Ethics code: IR.SSU.MEDICINE.REC.1401.021
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Fakherbaheri M, Shafienia H, Kalantar S M, Montazeri F. Expression of TGFB1 and ERK in cumulus cells: Implications for oocyte maturation in women with polycystic ovary syndrome: A cross-sectional study. IJRM 2025; 23 (12) :1031-1042
URL: http://ijrm.ir/article-1-3605-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-3605-fa.html
بررسی تغییرات بیان ژنهای TGFB1 و ERK در سلولهای کومولوس: ارزیابی وضعیت بلوغ تخمک در زنان مبتلا به سندرم تخمدان پلیکیستیک: یک مطالعه مقطعی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1404; 23 (12) :1031-1042
چکیده: (30 مشاهده)
مقدمه: سندرم تخمدان پلیکیستیک (PCOS) یکی از شایعترین اختلالات غدد درونریز است که بهطور منفی بر صلاحیت تکاملی تخمک تأثیر میگذارد. بلوغ آزمایشگاهی (IVM) رویکردی است که میتواند عوارض مختلف درمان ناباروری مرتبط با PCOS را کاهش دهد. به منظور افزایش کارایی IVM، ژنهایی که بلوغ تخمک را تنظیم میکنند باید برای ارزیابی کیفیت تخمک مورد بررسی قرار گیرند.
هدف: هدف از این مطالعه، بررسی ارتباط میان سطح بیان ژنهای TGFB1 و ERK در سلولهای کومولوس با بلوغ تخمک در زنان مبتلا به PCOS میباشد.
مواد و روش ها: در این مطالعه مقطعی، ۴۰ تخمک در مرحله وزیکول زایشی و ۴۰ تخمک در مرحله متافاز II از ۳۰ زن مبتلا به PCOS جمعآوری شد. تخمکهای GV در محیط مخصوص IVM کشت داده شدند و نمونهها به دو گروه بالغ و نابالغ تقسیم شدند. پس از انجام میکرواِینجکشن (ICSI)، کیفیت جنینها ارزیابی گردید. برای ارزیابی سطح بیان ژنهای TGFB1 و ERK در سلولهای کومولوس هر گروه، از روش qRT-PCR استفاده شد.
نتایج: نتایج نشان داد که سطح بیان ژنهای TGFB1 و ERK در سلولهای کومولوس تخمکهای GV بهطور معنیداری کمتر از تخمکهای MII بود. نتایج مشابهی در مقایسه سلولهای کومولوس گروه نابالغ با گروه بالغ مشاهده شد. بیان ژن ERK در تخمکهای بارور شده نسبت به تخمکهای بارور نشده بهطور معنیداری بیشتر بود، اما تفاوت معنیداری در بیان ژن TGFB میان این دو گروه مشاهده نشد. همچنین سطح بیان هر دو ژن در جنینهای با کیفیت بالا در مقایسه با جنینهای با کیفیت پایین بیشتر بود.
نتیجه گیری: ارتباط مشاهدهشده بین بیان TGFB1 و ERK در سلولهای کومولوس و پیامدهای تولیدمثلی، پتانسیل آنها را به عنوان نشانگرهای زیستی برای انتخاب تخمکهای مناسب و پیشبینی زندهمانی جنین برجسته میکند.
هدف: هدف از این مطالعه، بررسی ارتباط میان سطح بیان ژنهای TGFB1 و ERK در سلولهای کومولوس با بلوغ تخمک در زنان مبتلا به PCOS میباشد.
مواد و روش ها: در این مطالعه مقطعی، ۴۰ تخمک در مرحله وزیکول زایشی و ۴۰ تخمک در مرحله متافاز II از ۳۰ زن مبتلا به PCOS جمعآوری شد. تخمکهای GV در محیط مخصوص IVM کشت داده شدند و نمونهها به دو گروه بالغ و نابالغ تقسیم شدند. پس از انجام میکرواِینجکشن (ICSI)، کیفیت جنینها ارزیابی گردید. برای ارزیابی سطح بیان ژنهای TGFB1 و ERK در سلولهای کومولوس هر گروه، از روش qRT-PCR استفاده شد.
نتایج: نتایج نشان داد که سطح بیان ژنهای TGFB1 و ERK در سلولهای کومولوس تخمکهای GV بهطور معنیداری کمتر از تخمکهای MII بود. نتایج مشابهی در مقایسه سلولهای کومولوس گروه نابالغ با گروه بالغ مشاهده شد. بیان ژن ERK در تخمکهای بارور شده نسبت به تخمکهای بارور نشده بهطور معنیداری بیشتر بود، اما تفاوت معنیداری در بیان ژن TGFB میان این دو گروه مشاهده نشد. همچنین سطح بیان هر دو ژن در جنینهای با کیفیت بالا در مقایسه با جنینهای با کیفیت پایین بیشتر بود.
نتیجه گیری: ارتباط مشاهدهشده بین بیان TGFB1 و ERK در سلولهای کومولوس و پیامدهای تولیدمثلی، پتانسیل آنها را به عنوان نشانگرهای زیستی برای انتخاب تخمکهای مناسب و پیشبینی زندهمانی جنین برجسته میکند.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Hoeger KM, Dokras A, Piltonen T. Update on PCOS: Consequences, challenges, and guiding treatment. J Clin Endocrinol Metab 2021; 106: e1071-e1083. [DOI:10.1210/clinem/dgaa839] [PMID]
2. Naqvi SMAS, Bhattarai JB, Li H, Wang XW. Polycystic ovarian syndrome and female infertility. Yangtze Med 2019; 4: 11-27. [DOI:10.4236/ym.2020.41002]
3. De Vos M, Grynberg M, Ho TM, Yuan Y, Albertini DF, Gilchrist RB. Perspectives on the development and future of oocyte IVM in clinical practice. J Assist Reprod Genet 2021; 38: 1265-1280. [DOI:10.1007/s10815-021-02263-5] [PMID]
4. Wyse BA, Weizman NF, Kadish S, Balakier H, Sangaralingam M, Librach CL. Transcriptomics of cumulus cells-a window into oocyte maturation in humans. J Ovarian Res 2020; 13: 93. [DOI:10.1186/s13048-020-00696-7] [PMID] [PMCID]
5. Tan TCY, Dunning KR. Non-invasive assessment of oocyte developmental competence. Reprod Fertil Dev 2022; 35: 39-50. [DOI:10.1071/RD22217] [PMID]
6. Sayutti N, Abu MA, Ahmad MF. PCOS and role of cumulus gene expression in assessing oocytes quality. Fron Endocrinol 2022; 13: 843867. [DOI:10.3389/fendo.2022.843867] [PMID]
7. Li J, Chen H, Gou M, Tian C, Wang H, Song X, et al. Molecular features of polycystic ovary syndrome revealed by transcriptome analysis of oocytes and cumulus cells. Front Cell Dev Biol 2021; 9: 735684. [DOI:10.3389/fcell.2021.735684] [PMID] [PMCID]
8. Sikiru AB, Isa NM, Abass KS, Adeniran MA, Egena SSA, Akinola K. Transcriptomic profiling of cumulus cells reveals dysregulated genes and pathways in PCOS-related infertility. Middle East Fertil Soc J 2025; 30: 28. [DOI:10.1186/s43043-025-00241-w]
9. Gov E, Kori M, Arga KY. RNA-based ovarian cancer research from 'a gene to systems biomedicine' perspective. Syst Biol Reprod Med 2017; 63: 219-238. [DOI:10.1080/19396368.2017.1330368] [PMID]
10. Patton BK, Madadi S, Pangas SA. Control of ovarian follicle development by TGF-β family signaling. Curr Opin Endocr Metab Res 2021; 18: 102-110. [DOI:10.1016/j.coemr.2021.03.001] [PMCID]
11. Zhang M, Wang M-M, Zhang F-L, He N, Luo M-J, Gong S, et al. Expression profiling and function analysis identified new cumulus cells-expressed genes and miRNAs predictive of oocyte developmental potential. Cells 2025; 14: 791. [DOI:10.3390/cells14110791] [PMID] [PMCID]
12. Azziz R, Carmina E, Chen Z, Dunaif A, Laven JSE, Legro RS, et al. Polycystic ovary syndrome. Nat Rev Dis Primers 2016; 2: 16058.
https://doi.org/10.1038/nrdp.2016.57 [DOI:10.1038/nrdp.2016.58] [PMID] [PMCID]
13. Kandil H, Agarwal A, Saleh R, Boitrelle F, Arafa M, Vogiatzi P, et al. Editorial commentary on draft of World Health Organization sixth edition laboratory manual for the examination and processing of human semen. World J Men's Health 2021; 39: 577-580. [DOI:10.5534/wjmh.210074] [PMID] [PMCID]
14. Choe S-A, Kim MJ, Lee HJ, Kim J, Chang EM, Kim JW, et al. Increased proportion of mature oocytes with sustained-release growth hormone treatment in poor responders: A prospective randomized controlled study. Arch Gynecol Obstet 2018; 297: 791-796. [DOI:10.1007/s00404-017-4613-4] [PMID]
15. Akbari H, Mohammadi M. Effect of ovarian growth factors on ultra-structural maturation in frozen human immature oocytes after in vitro maturation: A comparative study. Reprod Health 2022; 19: 215. [DOI:10.1186/s12978-022-01521-8] [PMID] [PMCID]
16. Teixeira FG, Carvalho MM, Sousa N, Salgado AJ. Mesenchymal stem cells secretome: A new paradigm for central nervous system regeneration? Cell Mol Life Sci 2013; 70: 3871-3882. [DOI:10.1007/s00018-013-1290-8]
17. Khalili MA, Halvaei I, Ghazali Sh, Razi MH. Performing ICSI with commercial microinjection pipettes enhanced pregnancy rates. Turk J Med Sci 2017; 47: 801-805. [DOI:10.3906/sag-1512-69] [PMID]
18. Munné S, Alikani M, Tomkin G, Grifo J, Cohen J. Reprint of: Embryo morphology, developmental rates, and maternal age are correlated with chromosome abnormalities. Fertil Steril 2019; 112 (Suppl.): e71-e80. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2019.08.076] [PMID]
19. Seger R, Hanoch T, Rosenberg R, Dantes A, Merz WE, Strauss III JF, et al. The ERK signaling cascade inhibits gonadotropin-stimulated steroidogenesis. J Biotechnol Biomed 2023; 6: 1-12. [DOI:10.26502/jbb.2642-91280066] [PMCID]
20. Asghari R, Shokri-Asl V, Rezaei H, Tavallaie M, Khafaei M, Abdolmaleki A, et al. Alteration of TGFB1, GDF9, and BMPR2 gene expression in preantral follicles of an estradiol valerate-induced polycystic ovary mouse model can lead to anovulation, polycystic morphology, obesity, and absence of hyperandrogenism. Clin Exp Reprod Med 2021; 48: 245-254. [DOI:10.5653/cerm.2020.04112] [PMID] [PMCID]
21. Dehghan Z, Mohammadi-Yeganeh S, Sameni M, Mirmotalebisohi SA, Zali H, Salehi M. Repurposing new drug candidates and identifying crucial molecules underlying PCOS pathogenesis based on bioinformatics analysis. DARU J Pharm Sci 2021; 29: 353-366. [DOI:10.1007/s40199-021-00413-9] [PMCID]
22. Li T, Mo H, Chen W, Li L, Xiao Y, Zhang J, et al. Role of the PI3K-Akt signaling pathway in the pathogenesis of polycystic ovary syndrome. Reprod Sci 2017; 24: 646-655. [DOI:10.1177/1933719116667606] [PMID]
23. Hajam YA, Rather HA, Kumar R, Basheer M, Reshi MS. A review on critical appraisal and pathogenesis of polycystic ovarian syndrome. Endocrine and Metabolic Science 2024; 14: 100162. [DOI:10.1016/j.endmts.2024.100162]
24. Tsai Y-R, Liao Y-N, Kang H-Y. Current advances in cellular approaches for pathophysiology and treatment of polycystic ovary syndrome. Cells 2023; 12: 2189. [DOI:10.3390/cells12172189] [PMID] [PMCID]
25. Shafienia H, Hoseini SM, Khalili MA, Heydari L, Sheikhha MH, Montazeri F. The possible regulatory role of miR-514 and miR-642b in cumulus cells on the oocyte maturation in patients with polycystic ovary syndrome. Reprod Biol 2024; 24: 100863. [DOI:10.1016/j.repbio.2024.100863]
26. Montazeri F, Kalantar SM, Fesahat F, Sheikhha MH, Omidi M, Shafienia H, et al. Association between cumulus cells-mRNA levels of AMHR2 and FSHR with oocyte maturity. Middle East Fertil Soc J 2022; 27: 26. [DOI:10.1186/s43043-022-00116-4]
27. Fan H-Y, Liu Z, Shimada M, Sterneck E, Johnson PF, Hedrick SM, et al. MAPK3/1 (ERK1/2) in ovarian granulosa cells are essential for female fertility. Science 2009; 324: 938-941. [DOI:10.1126/science.1171396] [PMID] [PMCID]
28. Wang D, Zhang M, Wang W-S, Chu W, Zhai J, Sun Y, et al. Decreased neurotensin induces ovulatory dysfunction via the NTSR1/ERK/EGR1 axis in polycystic ovary syndrome. Front Med 2025; 19: 149-169. [DOI:10.1007/s11684-024-1089-z] [PMID]
29. Dompe C, Kulus M, Stefańska K, Kranc W, Chermuła B, Bryl R, et al. Human granulosa cells-stemness properties, molecular cross-talk and follicular angiogenesis. Cells 2021; 10: 1396. [DOI:10.3390/cells10061396] [PMID] [PMCID]
30. Guo X, Cao Y, He Q, Chen L, Wang Q, Zhang J, et al. Modulation of the RAC1/MAPK/ERK signalling pathway by farnesyl diphosphate synthase regulates granulosa cells proliferation in polycystic ovary syndrome. Hum Cell 2024; 37: 689-703. [DOI:10.1007/s13577-024-01050-5]
31. Barrera AD, García EV, Miceli DC. Effect of exogenous transforming growth factor β1 (TGF-β1) on early bovine embryo development. Zygote 2018; 26: 232-241. [DOI:10.1017/S096719941800014X] [PMID]
32. Das D, Arur S. Regulation of oocyte maturation: Role of conserved ERK signaling. Mol Reprod Dev 2022; 89: 353-374. [DOI:10.1002/mrd.23637] [PMID]
33. Faizal AM, Elias MH, Jin NM, Abu MA, Syafruddin SE, Zainuddin AA, et al. Unravelling the role of HAS2, GREM1, and PTGS2 gene expression in cumulus cells: Implications for human oocyte development competency-a systematic review and integrated bioinformatic analysis. Front Endocrinol 2024; 15: 1274376. [DOI:10.3389/fendo.2024.1274376] [PMCID]
34. Massoud G, Spann M, Vaught KC, Das S, Dow M, Cochran R, et al. Biomarkers assessing the role of cumulus cells on IVF outcomes: A systematic review. J Assist Reprod Genet 2024; 41: 253-275. [DOI:10.1007/s10815-023-02984-9]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
