سه شنبه 28 فروردین 1403
[Archive]
دوره 11، شماره 2 - ( 1-1392 )
جلد 11 شماره 2 صفحات 0-119 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Orazizadeh M, Khorsandi L, Saki G. Immunohistochemical assessment of galectin-3 during pre-implantation in mouse endometrium. IJRM 2013; 11 (2) :119-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-390-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-390-fa.html
اوراضی زاده محمود، خرسندی لعیاسادات، ساکی قاسم. بررسی ایمونوهیستوشیمیایی بیان گالکتین-3 در خلال مراحل پیش از جایگزینی در آندومتر موش . International Journal of Reproductive BioMedicine. 1392; 11 (2) :119-0
1- مرکز تحقیقات سلولی ملکولی، دانشگاه علوم پزشکی جندی شاپور، اهواز، ایران ، M_Orazizadeh@yahoo.com
2- مرکز تحقیقات سلولی ملکولی، دانشگاه علوم پزشکی جندی شاپور، اهواز، ایران
3- گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی دانشگاه علوم پزشکی جندی شاپور، اهواز، ایران
2- مرکز تحقیقات سلولی ملکولی، دانشگاه علوم پزشکی جندی شاپور، اهواز، ایران
3- گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی دانشگاه علوم پزشکی جندی شاپور، اهواز، ایران
چکیده: (3117 مشاهده)
مقدمه: گالکتین-3 یک لکتین متصل شونده به بتا-گالاکتوزید و ملکولی با چند عمل متفاوت است که در تعدادی از فرایندهای بیولوژیکی حساس مشارکت دارد.
هدف: هدف از مطالعه حاضر، تحقیق در خصوص الگوی بیان گالکتین-3 در آندومتر رحم موش در سیکل استروس و مراحل قبل از لانه گزینی می باشد.
مواد و روشها: در یک مطالعه تجربی و آزمایشگاهی تعداد 42 سر موش ماده نژاد NMRI به هفت گروه تقسیم شدند. اوولاسیون در موشهای ماده NMRI بوسیله hMG و hCGتحریک شد. برای فاز استروس دو گروه تحریک شده و تحریک نشده درنظر گرفته شد. بقیه گروه ها با موش های نر جفت گردیده و سپس روز تشکیل پلاک واژن بعنوان روز اول بارداری در نظر گرفته شد. موش های کلیه گروه ها در روزهای مختلف قبل از لانه گزینی قربانی شده و شاخ های رحمی آنها برای ارزیابی ایمونوهیستوشیمی به روش ABC در فرمالین تثبیت شدند.
نتایج: در گروه استروس واکنش ایمنی بیان گالکتین-3 در سلولهای اپیتلیال قوی در سلولهای استرومایی بسیار قوی در سلولهای غددی بسیار ضعیف و سلولهای آندوتلیال بسیار قوی بود. هیچ تفاوت قابل تشخیصی بین فاز استروس تحریک شده و تحریک نشده مشاهده نشد. در گروه های مورد آزمایش در روزهای اول و دوم بیان گالکتین-3 تفاوت معنیداری نشان ندادند. در روز سوم سلولهای اپیتلیال و استرومایی کاهش معنی داری را در مقایسه به فاز استروس و روز اول نشان دادند ( 0/001=p). در روز چهارم و پنجم سلولهای اپیتلیال و استرومایی کاهش معنی داری را در مقایسه به فاز استروس و روز اول تا سوم نشان دادند (0/0001=p).
نتیجهگیری: نتایج حاصل پیشنهاد می کند که یک جایگزینی موفق احتمالا در ارتباط مستقیم با کاهش بیان گالکتین-3 در آندومتر موش در مراحل اولیه بارداری است.
هدف: هدف از مطالعه حاضر، تحقیق در خصوص الگوی بیان گالکتین-3 در آندومتر رحم موش در سیکل استروس و مراحل قبل از لانه گزینی می باشد.
مواد و روشها: در یک مطالعه تجربی و آزمایشگاهی تعداد 42 سر موش ماده نژاد NMRI به هفت گروه تقسیم شدند. اوولاسیون در موشهای ماده NMRI بوسیله hMG و hCGتحریک شد. برای فاز استروس دو گروه تحریک شده و تحریک نشده درنظر گرفته شد. بقیه گروه ها با موش های نر جفت گردیده و سپس روز تشکیل پلاک واژن بعنوان روز اول بارداری در نظر گرفته شد. موش های کلیه گروه ها در روزهای مختلف قبل از لانه گزینی قربانی شده و شاخ های رحمی آنها برای ارزیابی ایمونوهیستوشیمی به روش ABC در فرمالین تثبیت شدند.
نتایج: در گروه استروس واکنش ایمنی بیان گالکتین-3 در سلولهای اپیتلیال قوی در سلولهای استرومایی بسیار قوی در سلولهای غددی بسیار ضعیف و سلولهای آندوتلیال بسیار قوی بود. هیچ تفاوت قابل تشخیصی بین فاز استروس تحریک شده و تحریک نشده مشاهده نشد. در گروه های مورد آزمایش در روزهای اول و دوم بیان گالکتین-3 تفاوت معنیداری نشان ندادند. در روز سوم سلولهای اپیتلیال و استرومایی کاهش معنی داری را در مقایسه به فاز استروس و روز اول نشان دادند ( 0/001=p). در روز چهارم و پنجم سلولهای اپیتلیال و استرومایی کاهش معنی داری را در مقایسه به فاز استروس و روز اول تا سوم نشان دادند (0/0001=p).
نتیجهگیری: نتایج حاصل پیشنهاد می کند که یک جایگزینی موفق احتمالا در ارتباط مستقیم با کاهش بیان گالکتین-3 در آندومتر موش در مراحل اولیه بارداری است.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Psychoyos A. Uterine receptivity for nidation. Ann NY Acad Sci 1986; 476: 36-42. [DOI:10.1111/j.1749-6632.1986.tb20920.x]
2. Smith SK. Regulation of angiogenesis in the endometrium. Trends Endocrinol Metab 2001; 12: 147-151. [DOI:10.1016/S1043-2760(01)00379-4]
3. Jabbour HN, Kelly RW, Fraser HM, Critchley HO. Endocrine regulation of menstruation. Endo Rev 2006; 27: 17-46. [DOI:10.1210/er.2004-0021]
4. Jerka D, Sanja D, Mirna F. Galectin-3: An open-ended story. Biochem Biophys Acta 2006; 1760: 616-653. [DOI:10.1016/j.bbagen.2005.12.020]
5. Leffler H, Carlsson S, Hedlund M, Qian Y, Poierier F. Introductions to Galectins. Glycoconj J 2004; 19: 433-440. [DOI:10.1023/B:GLYC.0000014072.34840.04]
6. Phillips B, Knisley K, Weitlauf KD, Dorsett J, Lee V, Weitlauf H. Differential expression of two beta-galactoside-binding lectins in the reproductive tracts of pregnant mice. Biol Reprod 1996; 55, 548-558.
7. Hughes RC. Galectins as modulators of cell adhesion. Biochimie 2001; 83: 667-676. [DOI:10.1016/S0300-9084(01)01289-5]
8. Barondes SH, Castronovo V, Cooper DNW, Cummings RD, Drickamer K, Feizi T, et al. Galectins: a family of animal galactoside-binding lectins. Cell 1994; 76: 597-598. [DOI:10.1016/0092-8674(94)90498-7]
9. von Wolf M, Wang X, Gabius HJ, Strowitzki T. Galectin fingerprinting in human endometrium and deciduas during the menstrual cycle and in early gestation. Mol Hum Reprod 2005; 11: 189-194. [DOI:10.1093/molehr/gah144]
10. Yang H, Lei C, Zhang W. Expression of Galectin-3 in mouse endometrium and its effect during embryo implantation. Reprod Biomed Online 2012; 24: 116-122. [DOI:10.1016/j.rbmo.2011.09.003]
11. Orazizadeh M, Salter DM. Differential expression pattern of Galectin-3 in normal and osteoarhtritic human articular cartilage. Iran J Immunol 2005; 2: 78-86.
12. Mahmoud H, Mahmoud O, Layasadat K, Naeim A. Dexamethasone effects on Bax expression in the mouse testicular germ cells. Folia Histochem Cytobiol 2009; 9: 237-241. [DOI:10.2478/v10042-009-0041-z]
13. Orazizadeh M, Rashidi I, Saremi J, Latifi M. Focal adhesion kinase (FAK) involves in human endometrial remodeling during the menstrual cycle. Iran Biomed J 2009; 13: 95-101.
14. van den Brule FA, Price J, Sobel ME, Lambotte R, Castronovo V. Inverse expression of two laminin binding proteins, 67LR and galectin-3, correlates with the invasive phenotype of trophoblastic tissue. Biochem Biophys Res Commun. 1994; 201: 388-393. [DOI:10.1006/bbrc.1994.1713]
15. Philips B, Knisely K, Weitlauf KD, Dorsett J, Lee VH, Weitlauf H. Differential expression of two beta-galactoside-binding lectins in the reproductive tracts of pregnant mice. Biol Reprod 1996; 55: 548-558. [DOI:10.1095/biolreprod55.3.548]
16. Lee VH, Lee AB, Phillips EB, Roberts JK, Weitlauf HM. Spatio-Temporal Pattern for Expression of Galectin-3 in the Murine Utero-Placental Complex: Evidence for Differential Regulation. Biol Reprod 1998; 58: 1277-1282. [DOI:10.1095/biolreprod58.5.1277]
17. Almkvist J, Karlsson A. Galectins as inflammatory mediators. Glycoconj J 2004; 19: 575-581. [DOI:10.1023/B:GLYC.0000014088.21242.e0]
18. Maquoi E, Van den Brule FA, Castronovo V, Foidart JM. Changes in the distribution pattern of galectin-1 and galectin-3 human placenta correlates with the differentiation pathways of trophoblast. Placenta 1997; 18: 433-439. [DOI:10.1016/S0143-4004(97)80044-6]
19. Vicovac L, Jankovic M, Uperlovic M. Galectin-1 and -3 in cells of the first trimester placental Bed. Hum Reprod 1998; 13: 730-735. [DOI:10.1093/humrep/13.3.730]
20. Khorsandi L, Orazizadeh M. Immunolocalization of Galectin-3 in mouse testicular tissue. Iran J basic sci 2011; 14: 349-353.
21. Chabot S, Kashio Y, Seki M, Shirato Y, Nakamura K, Nishi N, et al. Regulation of galectin-9 expression and release in Jurkat T cell line cells. Glycobiology 2002; 12: 111-118. [DOI:10.1093/glycob/12.2.111]
22. Wada I, Kanwar YS. Identification and characterization of galectin-9, a novel -galactoside-binding mammalian lectin. J Biol Chem. 1997; 272: 6078-6086. [DOI:10.1074/jbc.272.9.6078]
23. Noel JC, Capron C, Borghese B, Fayt I, Anaf V. Galectin-3 is overexpressed in various forms of endometriosis. Appl Immunohistochem Mol Morphol 2011; 19: 253-257.
24. Nikzad H, Kabir-salmani M, Shiokowa Sh, Akimoto, Y, Iwashita M. Co-expression of Galectin-3 and αvβ3 integrin at pinopodes of human endometrium. Iran J Reprod Med 2010; 8: 145-152.
25. Rintoul RC, Buttery RC, Mackinnon AC, Wong WS, Mosher D, Haslett C, et al. Cross-linking CD98 promotes integrin-like signaling and anchorage-126 Iranian Journal of Reproductive Medicine Vol. 11. No. 2. pp: 119-126, February 2013 independent growth. Mol Biol Cell 2002; 13: 2841- 2852. [DOI:10.1091/mbc.01-11-0530]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
