دوشنبه 3 دی 1403
[Archive]
دوره 11، شماره 5 - ( 4-1392 )
جلد 11 شماره 5 صفحات 0-355 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Badkoobeh P, Parivar K, Kalantar S M, Hosseini S D, Salabat A. Effect of nano-zinc oxide on doxorubicin- induced oxidative stress and sperm disorders in adult male Wistar rats. IJRM 2013; 11 (5) :355-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-424-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-424-fa.html
بادکوبه پوران، پریور کاظم، کلانتر سید مهدی، حسینی سید داوود، صلابت علیرضا. بررسی اثر نانواکسید روی بر استرس اکسیداتیو و اختلالات اسپرمی القا شده توسط داکسوروبیسین در رت های نر بالغ ویستار. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1392; 11 (5) :355-0
پوران بادکوبه1 
، کاظم پریور* 2، سید مهدی کلانتر3 ، سید داوود حسینی4 ، علیرضا صلابت5
، کاظم پریور* 2، سید مهدی کلانتر3 ، سید داوود حسینی4 ، علیرضا صلابت5
1- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران ،k_parivar@yahoo.com
3- مرکز تحقیقاتی و درمانی ناباروی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
4- موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، شعبه منطقه مرکزی، اراک، ایران
5- گروه شیمی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه اراک، ایران
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران ،
3- مرکز تحقیقاتی و درمانی ناباروی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
4- موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، شعبه منطقه مرکزی، اراک، ایران
5- گروه شیمی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه اراک، ایران
چکیده: (3583 مشاهده)
مقدمه: داکسوروبیسین یک آنتی بیوتیک آنتراسایکلین و یک داروی ضد سرطان است که کاربرد کلینیکی گسترده آن به دلیل عوارض جانبی از جمله آسیب غدد جنسی محدود میشود.
هدف: هدف از این مطالعه، بررسی اثر حفاظتی نانواکسیدروی، بهعنوان یک آنتی اکسیدان شناخته شده، بر اختلالات اسپرمی القاشده توسط داکسوروبیسین میباشد.
مواد و روشها: در این مطالعه تجربی رت های نر بالغ ویستار به چهار گروه تصادفی شامل یک گروه کنترل و سه گروه تجربی تقسیم شدند. گروه کنترل تحت تزریق درون صفاقی سالین قرار گرفت. سه گروه تجربی با تزریق درون صفاقی، به ترتیب داکسوروبیسین (mg/kg body weight 6)، نانواکسید روی (mg/kg body weight 5)، و داکسوروبیسین همراه با نانواکسید روی دریافت نمودند. بعد از 28 روز اندازهگیری ظرفیت آنتی اکسیدانی، پراکسیداسیون لیپیدی، هورمونهای جنسی در پلاسما و بررسی تغییرات اسپرمی انجام گرفت. تجزیه و تحلیل آماری با کمک نرم افزار SPSS-14 و آزمون ANOVA یک طرفه انجام شد.
نتایج: در رتهای تیمار شده با داکسوروبیسین ظرفیت آنتی اکسیدانی تام پلاسما (TAP) (425/50±32/33) و میزان تستوسترون (69/0±38/3) کاهش معنیدار نشان داد. پراکسیداسیون لیپیدی (LPO) (3/70±0/44) و آسیب (DNA(11/51±3/45 افزایش معنیدار نشان داد، درحالیکه تعداد اسپرم (157/98±6/29) کاهش یافت. همچنین میزان LH نیز کاهش معنیدار (0/26±0/05) نشان داد.
نتیجه گیری: استفاده از نانواکسید روی سبب بهبود معنیدار تغییرات ناشی از داکسوروبیسین در مورد ظرفیت آنتی اکسیدانی تام پلاسما، پراکسیداسیون لیپیدی، میزان تستوسترون، LH، و فاکتورهای اسپرمی شد. یافتههای این مطالعه نقش حفاظتی نانواکسید روی را در ممانعت از سمیت القا شده توسط داکسوروبیسین در سیستم تولیدمثلی نر نشان میدهد.
هدف: هدف از این مطالعه، بررسی اثر حفاظتی نانواکسیدروی، بهعنوان یک آنتی اکسیدان شناخته شده، بر اختلالات اسپرمی القاشده توسط داکسوروبیسین میباشد.
مواد و روشها: در این مطالعه تجربی رت های نر بالغ ویستار به چهار گروه تصادفی شامل یک گروه کنترل و سه گروه تجربی تقسیم شدند. گروه کنترل تحت تزریق درون صفاقی سالین قرار گرفت. سه گروه تجربی با تزریق درون صفاقی، به ترتیب داکسوروبیسین (mg/kg body weight 6)، نانواکسید روی (mg/kg body weight 5)، و داکسوروبیسین همراه با نانواکسید روی دریافت نمودند. بعد از 28 روز اندازهگیری ظرفیت آنتی اکسیدانی، پراکسیداسیون لیپیدی، هورمونهای جنسی در پلاسما و بررسی تغییرات اسپرمی انجام گرفت. تجزیه و تحلیل آماری با کمک نرم افزار SPSS-14 و آزمون ANOVA یک طرفه انجام شد.
نتایج: در رتهای تیمار شده با داکسوروبیسین ظرفیت آنتی اکسیدانی تام پلاسما (TAP) (425/50±32/33) و میزان تستوسترون (69/0±38/3) کاهش معنیدار نشان داد. پراکسیداسیون لیپیدی (LPO) (3/70±0/44) و آسیب (DNA(11/51±3/45 افزایش معنیدار نشان داد، درحالیکه تعداد اسپرم (157/98±6/29) کاهش یافت. همچنین میزان LH نیز کاهش معنیدار (0/26±0/05) نشان داد.
نتیجه گیری: استفاده از نانواکسید روی سبب بهبود معنیدار تغییرات ناشی از داکسوروبیسین در مورد ظرفیت آنتی اکسیدانی تام پلاسما، پراکسیداسیون لیپیدی، میزان تستوسترون، LH، و فاکتورهای اسپرمی شد. یافتههای این مطالعه نقش حفاظتی نانواکسید روی را در ممانعت از سمیت القا شده توسط داکسوروبیسین در سیستم تولیدمثلی نر نشان میدهد.
واژه‌های کلیدی: داکسوروبیسین، نانواکسید روی، ظرفیت آنتی اکسیدانی تام، پراکسیداسیون لیپیدی، تستوسترون، LH.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Zanetti SR, Maldonado EN, Avelda-o MI. Doxorubicin Affects Testicular Lipids with Long-Chain (C18-C22) and Very Long-Chain (C24-C32) Polyunsaturated Fatty Acids. Cancer Res 2007; 67: 6973-6980. [DOI:10.1158/0008-5472.CAN-07-0376]
2. Sridevi T. Effect of doxorubicin on the biochemical activities of the male reproductive system of white mice, Mus musculus. Indian J Sci Technol 2011; 4: 1715-1720.
3. Sridevi T, Nisha PV, Appavu Arulnathan G. Effect of Doxorubicin on the morphology, histology and karyology of male reproductive system of white mice, Mus musculus. Indian J Sci Technol 2012; 5: 2614-2618.
4. Gamal Hozayen W. Effect Of Hesperidin and Rutin On Doxorubicin Induced Testicular Toxicity in Male Rats. Int J Food Nutr Sci 2012; 1: 31-42.
5. Abdella EM, Ahmed R. Suppression of Doxorubicin Apoptotic, Histopathologic, Mutagenic and Oxidative Stress Effects in Male Mice Bone Marrow and Testis Tissues by Aqueous Rosemary Leaves Extract. Iran J Cancer Prev 2009; 2: 35-49.
6. Baumgartner A, Echmid TE, Cemeli E, Anderson D. Parallel evaluation of doxorubicin-induced genetic damage in human lymphocytes and sperm using the comet assay and spectral karyotyping. Mutagenesis 2004; 19: 313-318. [DOI:10.1093/mutage/geh032]
7. Hou MI, Chrysis D, Nurmio M, Parvinen M, Eksborg S, Soder O, et al. Doxorubicin Induces Apoptosis in Germ Line Stem Cells in the Immature Rat Testis and Amifostine Cannot Protect against This Cytotoxicity. Cancer Res 2005; 65: 9999-10005. [DOI:10.1158/0008-5472.CAN-05-2004]
8. Saalu LC, Osinubi AA, Olagunju JA. Early and Delayed Effects of Doxorubicin on Testicular Oxidative Status and Spermatogenesis in Rats. Int J Cancer Res 2010; 6: 1-9. [DOI:10.3923/ijcr.2010.1.9]
9. Brilhante O, Okada FK, Sasso-Cerri E, Stumpp T, Miraglia SM. Late morfofunctional alterations of the Sertoli cell caused by doxorubicin administered to prepubertal rats. Reprod Biol Endocrin 2012; 10:79-86. [DOI:10.1186/1477-7827-10-79]
10. Said G, Guilbert M, Morjani H, Garnotel R, Jeannesson P, El Btaouri H. Extracellular matrix proteins modulate antimigratory and apoptotic effects of Doxorubicin. Chemother Res Pract 2012; 2012: 268681. [DOI:10.1155/2012/268681]
11. Patil L, Balaraman R. Effect of Melatonin on Doxorubicin Induced Testicular Damage in Rats. Int J Pharm Tech Res 2009; 1: 879-884.
12. Malekirad AA, Hosseini N, Bayrami M, Hashemi T, Rahzani K, Abdollahi M. Benefit of Lemon Verbena in healthy subjects; targeting diseases associated with oxidative stress. Asian J Anim Vet Adv 2011; 6: 953-957. [DOI:10.3923/ajava.2011.953.957]
13. Abdel-Wahab MH, El-Mahdy MA, Abd-Ellah MF, Helal GK, Khalifa F, Hamadaa FMA. Influence of p-coumaric acid on doxorubicin-induced oxidative stress in rat's heart. Pharmacol Res 2003; 48: 461-465. [DOI:10.1016/S1043-6618(03)00214-7]
14. Powell SR. Zinc and Health: Current Status and Future Directions, the Antioxidant Properties of Zinc. Nutr 2000; 130: 1447S-1454S. [DOI:10.1093/jn/130.5.1447S]
15. Dani V, Dhawan DK. Radioprotective role of zinc following single dose radioiodine exposure to red blood cells of rats. Indian J Med Res 2005; 122: 338-342.
16. Malekirad AA, Oryan Sh, Babapor V, Hashemi M, Fani A, Baeeri M, et al. Study on clinical and biochemical toxicity biomarkers in a zinc-lead mine workers. Toxicol Ind Health 2010; 26: 331-337. [DOI:10.1177/0748233710365697]
17. Ebisch IMW, Thomas CMG, Peters WHM, Braat DDM, Steegers-Theunissen RPM. The importance of folate, zinc and antioxidants in the pathogenesis and prevention of subfertility. Hum Reprod Update 2007; 13: 163-174. [DOI:10.1093/humupd/dml054]
18. Dawei AI, Zhisheng W, Angu Z. Protective Effects of Nano-ZnO on the Primary Culture Mice Intestinal Epithelial Cells in in vitro Against Oxidative Injury. Int J Nanotechnol App 2009; 3: 1-6.
19. Medina C, Santos-Martinez MJ, Radomski A, Corrigan OI, Radomski MW. Nanoparticles: pharmacological and toxicological significance. Br J Pharmacol 2007; 150: 552-558. [DOI:10.1038/sj.bjp.0707130]
20. Singh Suri S, Fenniri H, Singh B. Nanotechnology-based drug delivery systems. J Occup Med Toxicol 2007; 2: 16. [DOI:10.1186/1745-6673-2-16]
21. Wang B, Feng W, Wang M, Wang TC, Gu Y, Zhu Motao, et al. Acute toxicological impact of nano- and submicro-scaled zinc oxide powder on healthy adult mice. J Nanopart Res 2008; 10: 263-276. [DOI:10.1007/s11051-007-9245-3]
22. Chang HJ, Choi SW, Ko S, Chun HS. Effect of Particle Size of Zinc Oxides on Cytotoxicity and Cell Permeability in Caco-2 Cells. J Food Sci Nutr 2011; 16: 174-178. [DOI:10.3746/jfn.2011.16.2.174]
23. Wang B, Feng W, Wang TC, Jia G, Wang M, Shi JW. Acute toxicity of nano- and micro-scale zinc powder in healthy adult mice. Toxicol Lett 2006; 161: 115-123. [DOI:10.1016/j.toxlet.2005.08.007]
24. Esterabeur H, Cheeseman K. Determination of alde-hyids lipid peroxidation products: malondealdhyde and 4-hydroxyl nonenal. Methods Enzymol 1990; 186: 407-421. [DOI:10.1016/0076-6879(90)86134-H]
25. Benzi IF, Strain S. Ferric reducing antioxidant assay. Methods Enzymol 1999; 292: 15-27.
26. Rezvanfar MA, Sadrkhanlou RA, Ahmadi A, Shojaei-Sadee H, Rezvanfar MA, Mohammadirad A, et al. Protection of cyclophosphamide-induced toxicity in reproductive tract histology, sperm characteristics, and DNA damage by an herbal source; evidence for role of free-radical toxic stress. Hum Exper Tox 2008; 27: 901-910. [DOI:10.1177/0960327108102046]
27. Wyrobek AJ, Gordon LA, Burkhart JG, Francis MW, Kapp Jr, Letz G, et al. An evaluation of the mouse sperm morphology test and other sperm tests in nonhuman mammals. A report of the U.S. Environmental Protection Agency Gene-Tox Program. Mutat Res 1983; 115: 1-72. [DOI:10.1016/0165-1110(83)90014-3]
28. Erenpreiss J, Bars J, Lipatnikova V, Erenpreisa J, Zalkalns J. Comprative study of cytochemical tests for sperm chromatin integrity. J Androl 2001; 22: 45-53.
29. Sohrabi D, Alipour M, Awsat Mellati A. Effect of Metronidazole on Spermatogenesis, Plasma Gonadotrophins and Testosterone in Male Rats. Iran J Pharm Res 2007; 6: 279-283.
30. Brilhante O, Stumpp T, Miraglia SM. Long-term testicular toxicity caused by doxorubicin treatment during pre-pubertal phase. Int J Med Sci 2011; 3: 52-60.
31. Ait Hamadouche N, Slimani M, Merad-Boudia B, Zaoui C. Reproductive Toxicity of Lead Acetate in Adult Male Rats. Am J Sci Res 2009; 3: 38-50.
32. Kovacs M, Schally AV, Nagy A, Koppan M, Groot K. Recovery of pituitary function after treatment with a targeted cytotoxic analog of luteinizing hormone- releasing hormone. Proc Natl Acad Sci 1997; 94: 1420-1425. [DOI:10.1073/pnas.94.4.1420]
33. Atessahin A, Turk G, Karahan I, Yolmaz S, Ceribasi AO, Bulmus O. Lycopene prevents adriamycin-induced testicular toxicity in rats. Fertil Steril 2006; 85:1216-1222. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2005.11.035]
34. Yeh YC, Liu TJ, Wang LC, Lee HW, Ting CT. A standardized extract of Ginkgo Biloba suppresses doxorubicin-induced oxidative stress and p53-mediated mitochondrial apoptosis in rat testes. Br J Pharmacol 2009; 156: 48-61. [DOI:10.1111/j.1476-5381.2008.00042.x]
35. Asmis R, Qiao M, Rossi RR, Cholewa J, Xu L, Asmis LM. Adriamycin promotes macrophage dysfunction in mice. Free Rad Biol Med 2006; 41: 165-174. [DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2006.03.027]
36. Howell SJ, Shalet SM. Testicular function following chemotherapy. Hum Reprod 2001; 7: 363-369. [DOI:10.1093/humupd/7.4.363]
37. Hrdina R, Gersl V, Klimtova I, SimunekT, Mach J, Adamcova M. Anthracycline-induced cardiotoxicity. Acta Medica 2000; 43: 75-82.
38. Ichihara S, Yamada Y, Kawai Y, Osawa T, Furuhashi K, Duan Z, et al. Roles of oxidative stress and Akt signaling in doxorubicin cardiotoxicity. Biochem Biophys Res Com 2007; 359: 27-33. [DOI:10.1016/j.bbrc.2007.05.027]
39. Kalender Y, Yel M, Kalender S. Doxorubicin hepatotoxicity and hepatic free radical metabolism in rats. The effects of vitamin E and catechin. Toxicology 2005; 209: 39-45. [DOI:10.1016/j.tox.2004.12.003]
40. Saalu LC, Osinubi AA, Oguntola JA, Adeneye IO, Benebo AS. The Delayed Testicular Morphologic Effects of Doxorubicin and the Rejuvinating Role of Grapefruit Seed Extract. Int J Pharm 2010; 6: 192-199. [DOI:10.3923/ijp.2010.192.199]
41. Favier AE. The role of zinc in reproduction, Hormonal mechanisms. Biol Trace Elem Res 1992; 32: 363-382. [DOI:10.1007/BF02784623]
42. Freedman LP. Anatomy of the steroid receptor zinc finger region. Endocr Rev 1992; 13: 129-145. [DOI:10.1210/edrv-13-2-129]
43. Fuse H, Kazama T, Ohta S, Fujiuchi Y. Relationship between Zinc Concentrations in Seminal Plasma and Various Sperm Parameters. Int Urol Nephrol 1999; 3: 401-408. [DOI:10.1023/A:1007190506587]
44. Bray TM, Bettger WJ. The physiological role of zinc as an antioxidant. Free Radic Biol Med 1990; 8: 281-291. [DOI:10.1016/0891-5849(90)90076-U]
45. Zago MP, Oteiza PI. The antioxidant properties of zinc: interactions with iron and antioxidants. Free Radic Biol Med 2001; 31: 266-274. [DOI:10.1016/S0891-5849(01)00583-4]
46. Bagchi D, Vuchetich PJ, Bagchi M, Tran MX, Krohn RL, Ray SD, et al. Protective effects of zinc salts on TPA-induced hepatic and brain lipid peroxidation, glutathione depletion, DNA damage and peritoneal macrophage activation in mice. Gen Pharmacol 1998; 30: 43-50. [DOI:10.1016/S0306-3623(97)00072-4]
47. Sunderman FW. The influence of zinc on apoptosis. Ann Clin Lab Sci 1995; 25: 134-142.
48. Chimienti F, Aouffen M, Favier A, Seve M. Zinc homeostasis-regulating proteins: new drug targets for triggering cell fate. Curr Drug Targets 2003; 4: 323-338. [DOI:10.2174/1389450033491082]
49. Lina T, Fenghua Z, Huiying R, Jianyang J, Wenli L. Effects of Nano-zinc Oxide on Antioxidant Function in Broilers. Chin J Anim Nutr 2009; 21: 534-539.
50. Sharma V, Singh P, Pandey AK, Dhawan A. Induction of oxidative stress, DNA damage and apoptosis in mouse liver after sub-acute oral exposure to zinc oxide nanoparticles. Mutat Res 2012; 745: 84-91. [DOI:10.1016/j.mrgentox.2011.12.009]
51. Rasheed NA, Abdel Baky NA, Shebly W, Ahmed AM, Faddah LM. Effect of vitamin E and α-lipoic acid on nano zinc oxide induced renal cytotoxicity in Rats. Afr J Pharm Pharmacol 2012; 6: 2211-2223.
52. Yin Y, Lin Q, Sun H, Chen D, Wu Q, Chen X, et al. Cytotoxic effects of ZnO hierarchical architectures on RSC96 Schwann cells. Nanoscale Res Lett 2012; 7: 439-446. [DOI:10.1186/1556-276X-7-439]
53. Kim YH, Fazlollahi F, Kennedy IM, Yacobi N, Hamm-Alvarez SF. Alveolar Epithelial Cell Injury Due to Zinc Oxide Nanoparticle Exposure. Am J Respir Crit Care Med 2010; 182: 1398-1409. [DOI:10.1164/rccm.201002-0185OC]
54. Says CM, Reed KL, Warheit DB. Assessing Toxicity of Fine and Nanoparticles: Comparing In Vitro Measurements to In Vivo Pulmonary Toxicity Profiles. Toxicol Sci 2007; 97: 163-180. [DOI:10.1093/toxsci/kfm018]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
