دوره 11، شماره 9 - ( 9-1392 )                   جلد 11 شماره 9 صفحات 0-693 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Dehghani F, Hassanpour A, Poost-pasand A, Noorafshan A, Karbalay-Doust S. Protective effects of L-carnitine and homogenized testis tissue on the testis and sperm parameters of busulfan-induced infertile male rats. IJRM 2013; 11 (9) :693-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-458-fa.html
دهقانی فرزانه، حسن پور اشرف، پوست پسند اقدس، نورافشان علی، کربلایی دوست سعید. اثرات محافظتی داروی ال-کارنیتین و بافت هموژنیزه بیضه بر پارامترهای بیضه و اسپرمِ موش‌های صحرایی نر بالغ نابارور شده توسط بوسولفان. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1392; 11 (9) :693-0

URL: http://ijrm.ir/article-1-458-fa.html


1- مرکز تحقیقات استریولوژی و هیستومورفومتری، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
2- گروه علوم تشریح، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران ، Ashraf.hassanpour@Yahoo.com
چکیده:   (4881 مشاهده)
مقدمه: بوسولفان یک داروی شیمیایی با کاربرد گسترده برای درمان سرطان می­باشد. تجویز بوسولفان به بیماران مرد مبتلا به سرطان بدخیم می­تواند منجر به ناباروری دائم یا موقت در آن­ها گردد. انجام این تحقیق در زمینه مواد یا داروهای مؤثر در کاهش عوارض جانبی بوسولفان بر سیستم تولیدمثلی، به نظر ضروریست.
هدف: در این مطالعه اثرات حفاظتی داروی L-carnitine و بافت هموژنیزه بیضه بر سیستم تولیدمثلی موش­های صحرایی بالغ به دنبال تجویز بوسولفان بررسی شده است.
مواد و روش­ها: در این مطالعه 20 رأس موش صحرایی نر بالغ نژاد Sprague-Dawly به چهار گروه 5 تایی تقسیم شدند. حیوانات گروه کنترل در روز اول آزمایش، حلال بوسولفان (DMSO) را به صورت داخل صفاقی (IP) و از روز دوم به مدت 48 روز آب مقطر(IP) به میزان cc1 دریافت نمودند. حیوانات در گروه‌های آزمایش اول، دوم و سوم در روز اول آزمایش، mg/kg 10 بوسولفان و سپس از روز دوم، به­ترتیب cc1 آب مقطر (IP)، بافت هموژنیزه بیضه (PO) و mg/kg 100 داروی ال-کارنتین (IP) را به مدت 48 روز دریافت نمودند. در انتهای دوره آزمایش، از تکنیک­های استریولوژی به منظور بررسی حجم بیضه،  لوله­های اسپرم ساز و بافت بینابینی، طول و قطر لوله­های اسپرم­ساز، ارتفاع اپیتلیوم زایا، طول تاژک اسپرم و تعداد کل بعضی از سلول­های رده اسپرماتوژنیک استفاده شد. همچنین تکنیک­های آنالیز اسپرم، برای بررسی پارامترهای اسپرم به­کار گرفته شد.
نتایج: بر اساس این تحقیق، طول تاژک اسپرم و تعداد اسپرم­ها، در حیوانات تحت درمان با L-carnitne و بافت هموژنیزه بیضه بعد از تجویز بوسولفان، به طور معنی­داری در مقایسه با گروه دریافت­کننده بوسولفان به تنهایی، افزایش یافته بود. بافت هموژنیزه بیضه منجر به افزایش حجم (5/6%) و وزن بیضه (6/8%)، حجم لوله­ها و بافت بینابینی (به ترتیب 9/6% و 7/11%)، قطر لوله­های اسپرم ساز (8/3%)، ارتفاع اپیتلیوم زایا (13%) و تعداد اسپرم­ها (5/7%) و کاهش تعداد اسپرم با مورفولوژی غیر طبیعی (1%) در مقایسه با گروه تحت درمان با L-carnitine گردید.
نتیجه­گیری: به نظر می­رسد، کاربرد L-carnitine و بافت هموژنیزه بیضه بعد از تجویز بوسولفان منجر به کاهش برخی از عوارض جانبی این دارو بر سیستم تولیدمثلی موش نر می­گردد. با وجود این، مطالعه ما نشان داد که بافت هموژنیزه بیضه در کاهش عوارض جانبی بوسولفان و بهبودی پارامترهای بیضه و اسپرم بعد از تجویز این دارو در مقایسه با داروی L-carnitine مؤثرتر می باشد.
نوع مطالعه: Original Article |

فهرست منابع
1. Bishop JB, Wassom JS. Toxicological review of busulfan (Myleran). Mutat Res 1986; 168: 15-45. [DOI:10.1016/0165-1110(86)90020-5]
2. Bucci LR, Meistrich ML. Effects of busulfan on murine spermatogenesis: cytotoxicity, sterility, sperm abnormalities, and dominant lethal mutations. Mutat Res 1987; 176: 259-268. [DOI:10.1016/0027-5107(87)90057-1]
3. Howell SJ, Shalet SM. Testicular function following chemotherapy. Hum Reprod Update 2001; 7: 363-369. [DOI:10.1093/humupd/7.4.363]
4. Howell SJ, Radford JA, Ryder WD, Shalet SM. Testicular function after cytotoxic chemotherapy: evidence of Leydig cell insufficiency. J Clin Oncol 1999; 17: 1493-1498. 5. Meistrich ML. Male gonadal toxicity. Pediatr Blood Cancer 2009; 53: 261-266. [DOI:10.1002/pbc.22004]
5. Meistrich ML. Male gonadal toxicity. Pediatr Blood Cancer 2009; 53: 261-266. [DOI:10.1002/pbc.22004]
6. Mohammadghasemi F, Faghani M, Falah Karkan M. The protective effect of melatonin on sperm parameters, epididymis and seminal vesicle morphology in adult mouse treated with busulfan. J Iran Anat Sci 2010; 8: 25-36.
7. Perez-Crespo M, Pericuesta E, Perez-Cerezales S, Arenas MI, Lobo MV, Diaz-Gil JJ, et al. Effect of liver growth factor on both testicular regeneration and recovery of spermatogenesis in busulfan-treated mice. Reprod Biol Endocrinol 2011; 9: 21. [DOI:10.1186/1477-7827-9-21]
8. Agarwal A, Said TM. Carnitines and male infertility. Reprod Biomed Online 2004; 8: 376-384. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60920-0]
9. Bremer J. Carnitine-metabolism and function. Physiol Res 1983; 63: 1420-1480. [DOI:10.1152/physrev.1983.63.4.1420]
10. Izgut-Uysal VN, Agac A, Derin N, Effect of L-carnitine on carrageenan-induced inflammation in aged rats. Gerontology 2003; 49: 287-292. [DOI:10.1159/000071709]
11. Ferrari R, Merli E, Cicchitelli G, Mele D, Fucili A, Ceconi C. Therapeutic effects of L-carnitine and ropionyl-L-carnitine on cardiovascular diseases: a review. Ann N Y Acad Sci 2004; 1033: 79-91. [DOI:10.1196/annals.1320.007]
12. Onem G, Aral E, Enli Y, Oguz EO, Coskun E, Aybek H, et al. Neuroprotective effects of L-carnitine and vitamin E alone or in combination against. J Surg Res 2006; 131: 124-130. [DOI:10.1016/j.jss.2005.12.017]
13. Boerrigter ME, Franceschi C, Arrigoni-Martelli E, Wei JY, Vijg J. The effect of L-carnitine and acetyl-L-carnitine on the disappearance of DNA single-strand breaks in human peripheral blood lymphocytes. Carsinogenesis 1993; 14: 2131-2136. [DOI:10.1093/carcin/14.10.2131]
14. Moretti S, Famularo G, Marcellini S, Boschini A, Santini G, Trinchieri V, et al. L-carnitine reduces lymhocyte apoptosis and oxidant stres in HIV-1-infected subjects treated with zidovudine and didanosine. Antioxid Redox Signal 2002; 4: 391-403. [DOI:10.1089/15230860260196191]
15. Khademi A, Safdarian L, Alleyassin A, Agha-Hosseini M, Akbari Hamed E, Saeidi Saeidabadi H, et al. The effect of L-carnitine on sperm parameters in patients candidated for Intracytoplasmic Sperm Injection. Iran J Reprod Med 2004; 2: 65-69.
16. Grollman A, Williams JR, Harrison TR. Effects of renal extract on hypertension. Bull N Y Acad Med 1942; 18: 190-199.
17. Tanzer RC. The Effect of Testicle Extract on the Growth of Transplantable Mouse Tumors. J Exp Med 1932; 55: 455-463. [DOI:10.1084/jem.55.3.455]
18. De Rooij DG, Van Dissel-Emiliani FM, Van Pelt AM. Regulation of spermatogonial proliferation. Ann N Y Acad Sci 1989; 564: 140-153. [DOI:10.1111/j.1749-6632.1989.tb25894.x]
19. Saki G, Rahim F, Alizadeh K. Effect of forced swimming stress on count, motility and fertilization capacity of the sperm in adult rats. J Hum Reprod Sci 2009; 2: 72-75. [DOI:10.4103/0974-1208.57226]
20. Elias H, Hyde DM. An elementary introduction to stereology (quantitative microscopy). Am J Anat 1980; 159: 412-446. [DOI:10.1002/aja.1001590407]
21. Seed J, Chapin RE, Clegg ED, Dostal LA, Foote RH, Hurtt ME, et al. Methods for assessing sperm motility, morphology, and counts in the rat, rabbit, and dog: a consensus report. ILSI Risk Science Institute Expert Working Group on Sperm Evaluation. Reprod Toxicol 1996; 10: 237-244. [DOI:10.1016/0890-6238(96)00028-7]
22. Anjamrooz SH, Movahedin M, Mowla SJ, Bairanvand SP. Assessment of morphological and functional changes in the mouse testis and epididymal sperms following busulfan treatment. Iran Biomed J 2007; 11: 15-22.
23. Zhengwei Y, McLachlan RI, Bremner WJ, Wreford NG. Quantitative (stereological) study of the normal spermatogenesis in the adult monkey (Macaca fascicularis). J Androl 1997; 18: 681-687.
24. Bar-Shira Maymon B, Yogev L, Marks A, Hauser R, Botchan A, Yavetz H. Sertoli cell inactivation by cytotoxic damage to the human testis after cancer chemotherapy. Fertil Steril 2004; 81: 1391-1394. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2003.09.078]
25. Vecino P, Uranga JA, Arechaga J. Suppression of spermatogenesis for cell transplantation in adult mice. Protoplasma 2001; 217: 191-198. [DOI:10.1007/BF01283400]
26. Udagawa K, Ogawa T, Watanabe T, Yumura Y, Takeda M, Hosaka M. GnRH analog, leuprorelin acetate, promotes regeneration of rat spermatogenesis after severe chemical damage. Int J Urol 2001; 8: 615-622. [DOI:10.1046/j.1442-2042.2001.00382.x]
27. Lenzi A, Sgro P, Salacone P, Paoli D, Gilio B, Lombardo F, et al. A placebo-controlled double-blind randomized trial of the use of combined l-carnitine and l-acetyl-carnitine treatment in men with asthenozoospermia. Fertil Steril 2004; 81:1578-1584. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2003.10.034]
28. Aliabadi E, Soleimani Mehranjani M, Borzoei Z, Talaei-Khozani T, Mirkhani H, Tabes H. Effects of L-carnitine and L-acetyl-carnitine on testicular sperm motility and chromatin quality. Iran J Reprod Med 2012; 10: 77-82.
29. Hochereau-de-Reviers MT, Viguier-Martinez MC, Perreau C. Effects of Supplementation with Impuberal or Adult Testicular Protein Extracts on Genital Tract and Testicular Histology as well as Hormonal Levels in Adult Busulfan Treated Rats. Andrologia 1982; 14: 297-305. [DOI:10.1111/j.1439-0272.1982.tb02264.x]
30. Irons MJ, Clermont Y. Spermatogonial chalone(s): effect on the phases of the cell cycle of type A spermatogonia in the rat. Cell Proliferation 1979; 12: 425-433. [DOI:10.1111/j.1365-2184.1979.tb00165.x]

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به International Journal of Reproductive BioMedicine می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2024 CC BY-NC 4.0 | International Journal of Reproductive BioMedicine

Designed & Developed by : Yektaweb