دوشنبه 24 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 12، شماره 10 - ( 8-1393 )
جلد 12 شماره 10 صفحات 0-681 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Abhari A, Zarghami N, Farzadi L, Nouri M, Shahnazi V. Altered of microRNA expression level in oligospermic patients. IJRM 2014; 12 (10) :681-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-484-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-484-fa.html
ابهری علیرضا، ضرغامی نصرت اله، فرزدی لعیا، نوری محمد، شهنازی وحیده. تغییر میزان بیان microRNA در بیماران الیگواسپرمیک. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1393; 12 (10) :681-0
علیرضا ابهری1 
، نصرت اله ضرغامی1 ، لعیا فرزدی2 ، محمد نوری2 ، وحیده شهنازی* 3
، نصرت اله ضرغامی1 ، لعیا فرزدی2 ، محمد نوری2 ، وحیده شهنازی* 3
1- گروه بیوشیمی و آزمایشگاه‌های بالینی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، تبریز، ایران
2- مرکز تحقیقاتی سلامت تولید مثل زنان، بیمارستان الزهرا، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، تبریز، ایران
3- مرکز تحقیقاتی سلامت تولید مثل زنان، بیمارستان الزهرا، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، تبریز، ایران ، shahmv@yahoo.com
2- مرکز تحقیقاتی سلامت تولید مثل زنان، بیمارستان الزهرا، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، تبریز، ایران
3- مرکز تحقیقاتی سلامت تولید مثل زنان، بیمارستان الزهرا، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، تبریز، ایران ، shahmv@yahoo.com
چکیده: (2380 مشاهده)
مقدمه: microRNA (miRNA) رشته RNA تک زنجیرهای کوچک با منشا داخلی است که از طریق مکانیسمهای مختلف بیان ژن را در مرحله پس از ترجمه تنظیم میکند، از این طریق اعمال اصلی سلولی از جمله تمایز، تکثیر، تکامل و آپوپتوز را در سلولهای جنسی تحت تأثیر قرار میدهد. هر گونه جهش و یا انحراف در بیان آنها میتواند منجر به اختلالات متعدد از جمله ناباروری گردد.
هدف: هدف از این تحقیق بررسی سطح بیان hsa-mir-21،has-mir-22 و گیرنده استروژن بتا (ERβ) در بیماران نابارور الیگو اسپرمیک و مردان بارور کنترل همچنین ارتباط آنها با همدیگر میباشد.
مواد و روشها: در این تحقیق تغییر در سطح بیان mir-22، mir-21 و ژن هدف مشترک آنها یعنی ERβ در مردان نابارور الیگواسپرمیک (43 نفر) در مقایسه با گروه کنترل سالم بارور با استفاده از روش Real-Time PCR مورد ارزیابی قرار گرفت.
نتایج: آنالیز بیان mir-21،mir-22 با استفاده از متد qRT-PCR نشان داد که سطح بیان آنها به طور معنادار در افراد نابارور نسبت به گروه کنترل بالاتر بود (0/0001>p) و نیز سطح بیان ERβ در مقایسه با گروه کنترل پائین تر بود (0/0001>p).
نتیجهگیری: نتایج ما نشان داد که mir-21، mir-22 میتوانند به طور غیر مستقیم از طریق تنظیم بیان گیرنده استروژن در روند اسپرماتوژنز دخیل باشند و ممکن است دارای ارزش تشخیصی و پیش آگهی در ناباروری داشته باشند.
هدف: هدف از این تحقیق بررسی سطح بیان hsa-mir-21،has-mir-22 و گیرنده استروژن بتا (ERβ) در بیماران نابارور الیگو اسپرمیک و مردان بارور کنترل همچنین ارتباط آنها با همدیگر میباشد.
مواد و روشها: در این تحقیق تغییر در سطح بیان mir-22، mir-21 و ژن هدف مشترک آنها یعنی ERβ در مردان نابارور الیگواسپرمیک (43 نفر) در مقایسه با گروه کنترل سالم بارور با استفاده از روش Real-Time PCR مورد ارزیابی قرار گرفت.
نتایج: آنالیز بیان mir-21،mir-22 با استفاده از متد qRT-PCR نشان داد که سطح بیان آنها به طور معنادار در افراد نابارور نسبت به گروه کنترل بالاتر بود (0/0001>p) و نیز سطح بیان ERβ در مقایسه با گروه کنترل پائین تر بود (0/0001>p).
نتیجهگیری: نتایج ما نشان داد که mir-21، mir-22 میتوانند به طور غیر مستقیم از طریق تنظیم بیان گیرنده استروژن در روند اسپرماتوژنز دخیل باشند و ممکن است دارای ارزش تشخیصی و پیش آگهی در ناباروری داشته باشند.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Idler RK, Yan W. Control of messenger RNA fate by RNA-binding proteins: an emphasis on mammalian spermatogenesis. J Androl 2012; 33: 309-337. [DOI:10.2164/jandrol.111.014167]
2. Rajender S, Meador C, Agarwal A. Small RNA in spermatogenesis and male infertility. Frontiers Bioscie 2012; 4: 1266-1274.
3. Ostermeier GC, Goodrich RJ, Moldenhauer JS, Diamond MP, Krawetz SA. A suite of novel human spermatozoal RNAs. J Androl 2005; 26: 70-74.
4. Swan SH, Elkin EP, Fenster L. The question of declining sperm density revisited: an analysis of 101 studies published 1934-1996. Environ Health Perspect 2000; 108: 961-966. [DOI:10.1289/ehp.00108961]
5. Schoysman R. Oligospermia associated with normal testicular function and epididymal lesions or malpositions. Acta Eur Fertil 1992; 23: 117-121.
6. Lalancette C, Platts AE, Johnson GD, Emery BR, Carrell DT, Krawetz SA. Identification of human sperm transcripts as candidate markers of male fertility. J Mol Med 2009; 87: 735-748. [DOI:10.1007/s00109-009-0485-9]
7. Hamatani T. Spermatozoal RNA profiling towards a clinical evaluation of sperm quality. Reprod Biomed Online 2011; 22: 103-105. [DOI:10.1016/j.rbmo.2010.12.001]
8. Carreau S, Silandre D, Bois C, Bouraima H, Galeraud-Denis I, Delalande C. Estrogens: a new player in spermatogenesis. Folia Histochem Cytobiol 2007; 45: 5-10.
9. Ellmann S, Sticht H, Thiel F, Beckmann MW, Strick R, Strissel PL. Estrogen and progesterone receptors: from molecular structures to clinical targets. Cell Mol Life Sci 2009; 66: 2405-2426. [DOI:10.1007/s00018-009-0017-3]
10. Eddy EM, Washburn TF, Bunch DO, Goulding EH, Gladen BC, Lubahn DB, et al. Targeted disruption of the estrogen receptor gene in male mice causes alteration of spermatogenesis and infertility. Endocrinology 1996; 137: 4796-4805. [DOI:10.1210/endo.137.11.8895349]
11. Bhat-Nakshatri P, Wang G, Collins NR, Thomson MJ, Geistlinger TR, Carroll JS, et al. Estradiol-regulated microRNAs control estradiol response in breast cancer cells. Nucleic Acids Res 2009; 37: 4850-4861. [DOI:10.1093/nar/gkp500]
12. Delic D, Grosser C, Dkhil M, Al-Quraishy S, Wunderlich F. Testosterone-induced upregulation of miRNAs in the female mouse liver. Steroids 2010; 75: 998-1004. [DOI:10.1016/j.steroids.2010.06.010]
13. Menkveld R. Clinical significance of the low normal sperm morphology value as proposed in the fifth edition of the WHO Laboratory Manual for the Examination and Processing of Human Semen. Asian J Androl 2010; 12: 47-58. [DOI:10.1038/aja.2009.14]
14. Goodrich R, Johnson G, Krawetz SA. The preparation of human spermatozoal RNA for clinical analysis. Arch Androl 2007; 53: 161-167. [DOI:10.1080/01485010701216526]
15. Check JH, Adelson HG, Schubert BR, Bollendorf A. Evaluation of sperm morphology using Kruger's strict criteria. Arch Androl 1992; 28:15-17. [DOI:10.3109/01485019208987674]
16. Singh S, Sharma S, Jain M, Chauhan R. Importance of papanicolaou staining for sperm morphologic analysis: comparison with an automated sperm quality analyzer. Am J Clin Pathol 2011; 136: 247-251. [DOI:10.1309/AJCPCLCSPP24QPHR]
17. Pfaffl MW. A new mathematical model for relative quantification in real-time RT-PCR. Nucleic Acids Res 2001; 29: e45.
18. Amanai M, Brahmajosyula M, Perry AC. A restricted role for sperm-borne microRNAs in mammalian fertilization. Biol Reprod 2006; 75: 877-884. [DOI:10.1095/biolreprod.106.056499]
19. Lian J, Zhang X, Tian H, Liang N, Wang Y, Liang C, et al. Altered microRNA expression in patients with non-obstructive azoospermia. Reprod Biol Endocrinol 2009; 7: 13. [DOI:10.1186/1477-7827-7-13]
20. Gunawan A, Cinar MU, Uddin MJ, Kaewmala K, et al. Investigation on association and expression of ESR2 as a candidate gene for boar sperm quality and fertility. Reprod Domest Anim 2012; 47: 782-790. [DOI:10.1111/j.1439-0531.2011.01968.x]
21. Lucas TF, Siu ER, Esteves CA, Monteiro HP, Oliveira CA, Porto CS, et al. 17beta-estradiol induces the translocation of the estrogen receptors ESR1 and ESR2 to the cell membrane, MAPK3/1 phosphorylation and proliferation of cultured immature rat Sertoli cells. Biol Reprod 2008; 78: 101-114. [DOI:10.1095/biolreprod.107.063909]
22. Griswold MD. The central role of Sertoli cells in spermatogenesis. Semin Cell Dev Biol 1998; 9: 411-416. [DOI:10.1006/scdb.1998.0203]
23. Nicholls PK, Harrison CA, Rainczuk KE, et al. Retinoic acid promotes Sertoli cell differentiation and antagonises activin-induced proliferation. Mol Cell Endocrinol 2013; 377: 33-43. [DOI:10.1016/j.mce.2013.06.034]
24. Inui M, Martello G, Piccolo S. MicroRNA control of signal transduction. Nature Rev Mol Cell Biol 2010; 11: 252-263. [DOI:10.1038/nrm2868]
25. Xiong B, Cheng Y, Ma L, Zhang C. MiR-21 regulates biological behavior through the PTEN/PI-3 K/Akt signaling pathway in human colorectal cancer cells. Int J Oncol 2013; 42: 219-228. [DOI:10.3892/ijo.2012.1707]
26. Volinia S, Calin GA, Liu CG, Ambs S, Cimmino A, Petrocca F, et al. A microRNA expression signature of human solid tumors defines cancer gene targets. Proc Nat Acad Sci U S A 2006; 103: 2257-2261. [DOI:10.1073/pnas.0510565103]
27. Liu L, Jiang Y, Zhang H, Greenlee AR, Yu R, Yang Q. miR-22 functions as a micro-oncogene in transformed human bronchial epithelial cells induced by anti-benzo [a] pyrene-7,8-diol-9,10-epoxide. Toxicol InVitro 2010; 24:1168-1175. [DOI:10.1016/j.tiv.2010.02.016]
28. Li J, Zhang Y, Zhao J, Kong F, Chen Y. Overexpression of miR-22 reverses paclitaxel-induced chemoresistance through activation of PTEN signaling in p53-mutated colon cancer cells. Mol Cell Biochem 2011; 357: 31-38. [DOI:10.1007/s11010-011-0872-8]
29. Poplinski A, Tuttelmann F, Kanber D, Horsthemke B, Gromoll J. Idiopathic male infertility is strongly associated with aberrant methylation of MEST and IGF2/H19 ICR1. Int J Androl 2010; 33: 642-649.
30. Kerjean A, Dupont JM, Vasseur C, Le Tessier D, Cuisset L, Paldi A, et al. Establishment of the paternal methylation imprint of the human H19 and MEST/PEG1 genes during spermatogenesis. Hum Mol Genet 2000;9: 2183-2187. [DOI:10.1093/hmg/9.14.2183]
31. Stabile V, Russo M, Chieffi P. 17beta-estradiol induces Akt-1 through estrogen receptor-beta in the frog (Rana esculenta) male germ cells. Reproduction 2006; 132: 477-484. [DOI:10.1530/rep.1.01107]
32. Kim ST, Omurtag K, Moley KH. Decreased spermatogenesis, fertility, and altered Slc2A expression in Akt1-/- and Akt2-/- testes and sperm. Reprod Sci 2012; 19: 31-42. [DOI:10.1177/1933719111424449]
33. McIver SC, Stanger SJ, Santarelli DM, Roman SD, Nixon B, McLaughlin EA. A unique combination of male germ cell miRNAs coordinates gonocyte differentiation. PloS One 2012; 7: e35553.
34. Hensen K, Braem C, Declercq J, Van Dyck F, Dewerchin M, Fiette L, et al. Targeted disruption of the murine Plag1 proto-oncogene causes growth retardation and reduced fertility. Dev Growth Differ 2004; 46: 459-470. [DOI:10.1111/j.1440-169x.2004.00762.x]
35. Fortes MR, Kemper K, Sasazaki S, Reverter A, Pryce JE, Barendse W, et al. Evidence for pleiotropism and recent selection in the PLAG1 region in Australian Beef cattle. Anim Genet 2013; 44: 636-647. [DOI:10.1111/age.12075]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
