چهارشنبه 5 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 12، شماره 10 - ( 8-1393 )
جلد 12 شماره 10 صفحات 0-687 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Peyghambari F, Fayazi M, Amanpour S, Haddadi M, Muhammadnejad S, Muhammadnejad A, et al . Assessment of α4, αv, β1 and β3 integrins expression throughout the implantation window phase in endometrium of a mouse model of polycystic ovarian syndromes. IJRM 2014; 12 (10) :687-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-485-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-485-fa.html
پیغمبری فاطمه، فیاضی مهری، امانپور سعید، حدادی مهناز، محمد نژاد صمد، محمد نژاد احد، و همکاران.. بررسی بیان اینتگرین های β3، β1، αv و α4 در طی پنجره لانه گزینی در اندومتر رحمی موش مدل سندرم تخمدان پلی کیستیک. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1393; 12 (10) :687-0
فاطمه پیغمبری1 
، مهری فیاضی2 ، سعید امانپور3 ، مهناز حدادی3 ، صمد محمد نژاد4 ، احد محمد نژاد4 ، سمیرا عبدالله پور4 ، مژگان انکساری4 ، زهره مظاهری* 5
، مهری فیاضی2 ، سعید امانپور3 ، مهناز حدادی3 ، صمد محمد نژاد4 ، احد محمد نژاد4 ، سمیرا عبدالله پور4 ، مژگان انکساری4 ، زهره مظاهری* 5
1- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه آزاد؛ واحد یزد، یزد، ایران
2- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
3- مرکز تحقیقات بهداشت باروری ولی عصر (عج)، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
4- مرکز تحقیقات تومورهای تجربی، مرکز تحقیقات سرطان، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
5- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران ، z_mazaheri@modares.ac.ir
2- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
3- مرکز تحقیقات بهداشت باروری ولی عصر (عج)، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
4- مرکز تحقیقات تومورهای تجربی، مرکز تحقیقات سرطان، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
5- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران ، z_mazaheri@modares.ac.ir
چکیده: (2574 مشاهده)
مقدمه: این فرضیه وجود دارد که تغییر بیان اینتگرین سطح اندومتر رحم میتواند منجر به سقط خودبخودی در مبتلایان به سندرم تخمدان پلیکیستیک گردد.
هدف: در این مطالعه الگوی بیان ژنی و پروتئینی اینتگرین های سطوح اپیتلیالی و استرومایی اندومتر رحم موش مدل تخمدان پلیکیستیک مورد بررسی قرار گرفته شده است.
مواد و روشها: در این مطالعه 30 سر موش ماده نژاد NMRI به طور تصادفی به سه گروه کنترل، ازمایش (مدل تخمدان پلی کیستیک تیمار شده با 40 میلی گرم بر کیلوگرم استرادیول والریت) و شم (تیمار شده با 100 میکرولیتر روغن زیتون به عنوان حلال دارو) گروه بندی شدند. بعد از هشت هفته از مطالعه، هر گروه با استفاده از هورمون PMSG به میزان 7 واحد و سپس 48 ساعت بعد با استفاده از هورمون HCG به میزان 7 واحد تحریک تخمک گذاری شدند. موشهای تحریک شده کنار موش نر قرار گرفته و پلاک واژنی صبح روز بعد بررسی شد. سپس در روز 5 پس از چک پلاک، موشها کشته و پس از جمع آوری سرم خونی برای اندازه گیری سطح استروژن و پروژسترون، بخشی از رحم جمع آوری گردید. بافتهای جمع آوری شده به منظور بررسی اینتگرینهای α4, αv, β1 و β3 با روش Real time PCR و ایمونوهیستوشیمی مورد ارزیابی قرار گرفتند.
نتایج: تغییرات وزن پس از هشت هفته از تزریق استرادیول، تغییر معنی داری را نشان نداد. سطح سرمی پروژسترون به صورت معنی داری در گروه PCOS کاهش یافته بود. میزان بیان اینتگرینهای α4, αv, β1 و β3 نشان داد که یک اختلاف زیادی در بیان ژنی اینتگرینهای αv و β3 در گروه PCOS در مقایسه با سایر گروهها وجود دارد. بیان پروتئینهای اینتگرین در اپیتلیوم اندومتر همه گروهها بیان شدند. در گروه کنترل، بیان پروتئینهای α4, αv, β1 و β3 هم در استروما و هم در سطح اپیتلیال رحمی مشاهده شد. ولی در گروه PCOS این بیان در ناحیه استروما مشاهده نشد.
نتیجهگیری: به نظر میرسد که الگوی بیان اینتگرینهای αv و β3 تأثیر مهمی در زمان پنجره لانه گزینی دارد. شاید آن نتایج بتواند علت شکست لانهگزینی در بیماران مبتلا به PCOS را شرح دهد. بنابراین توجه زیادی در خصوص درمان بیماران PCOS از این جنبه مورد نیاز میباشد.
هدف: در این مطالعه الگوی بیان ژنی و پروتئینی اینتگرین های سطوح اپیتلیالی و استرومایی اندومتر رحم موش مدل تخمدان پلیکیستیک مورد بررسی قرار گرفته شده است.
مواد و روشها: در این مطالعه 30 سر موش ماده نژاد NMRI به طور تصادفی به سه گروه کنترل، ازمایش (مدل تخمدان پلی کیستیک تیمار شده با 40 میلی گرم بر کیلوگرم استرادیول والریت) و شم (تیمار شده با 100 میکرولیتر روغن زیتون به عنوان حلال دارو) گروه بندی شدند. بعد از هشت هفته از مطالعه، هر گروه با استفاده از هورمون PMSG به میزان 7 واحد و سپس 48 ساعت بعد با استفاده از هورمون HCG به میزان 7 واحد تحریک تخمک گذاری شدند. موشهای تحریک شده کنار موش نر قرار گرفته و پلاک واژنی صبح روز بعد بررسی شد. سپس در روز 5 پس از چک پلاک، موشها کشته و پس از جمع آوری سرم خونی برای اندازه گیری سطح استروژن و پروژسترون، بخشی از رحم جمع آوری گردید. بافتهای جمع آوری شده به منظور بررسی اینتگرینهای α4, αv, β1 و β3 با روش Real time PCR و ایمونوهیستوشیمی مورد ارزیابی قرار گرفتند.
نتایج: تغییرات وزن پس از هشت هفته از تزریق استرادیول، تغییر معنی داری را نشان نداد. سطح سرمی پروژسترون به صورت معنی داری در گروه PCOS کاهش یافته بود. میزان بیان اینتگرینهای α4, αv, β1 و β3 نشان داد که یک اختلاف زیادی در بیان ژنی اینتگرینهای αv و β3 در گروه PCOS در مقایسه با سایر گروهها وجود دارد. بیان پروتئینهای اینتگرین در اپیتلیوم اندومتر همه گروهها بیان شدند. در گروه کنترل، بیان پروتئینهای α4, αv, β1 و β3 هم در استروما و هم در سطح اپیتلیال رحمی مشاهده شد. ولی در گروه PCOS این بیان در ناحیه استروما مشاهده نشد.
نتیجهگیری: به نظر میرسد که الگوی بیان اینتگرینهای αv و β3 تأثیر مهمی در زمان پنجره لانه گزینی دارد. شاید آن نتایج بتواند علت شکست لانهگزینی در بیماران مبتلا به PCOS را شرح دهد. بنابراین توجه زیادی در خصوص درمان بیماران PCOS از این جنبه مورد نیاز میباشد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Speroff L, Fritz MA. Cronic anovulation and the polycystic ovary syndrome. In: Clinical gynecoligic endocrinology and infertility. Philadelphia; 2011: 495-531.
2. Qiao J, Wang L, Li R, Zhang X. Microarray evaluation of endometrial receptivity in chinese women with polycystic ovary syndrome. Reprod Biomed Online 2008; 17: 425-435. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60228-3]
3. Cakmak H, Taylor HS. Human implantation failure: molecular mechanisms and clinical treatment. Hum Reprod Update 2011; 17: 242-253. [DOI:10.1093/humupd/dmq037]
4. Donaghay M, Lessey BA. Uterine receptivity: alterations associated with benign gynecological disease. Semin Reprod Med 2007; 25: 461- 475. [DOI:10.1055/s-2007-991044]
5. Lopes IM, Baracat MC, Simões Mde J, Simões RS, Baracat EC, Soares Jr JM. Endometrium in women with polycystic ovary syndrome during the window of implantation. Rev Assoc Med Bras 2011; 57: 702-709.
6. Bergeron C, Ferenczy A, Shyamala G. Distribution of estrogen receptors in various cell types of normal, hyperplastic, and neoplastic human endometrial tissues. Lab Invest 1988; 58: 338-345.
7. Apparao KB, Lovely LP, Gui Y, Lininger RA, Lessey BA. Elevated endometrial androgen receptor expression in women with polycystic ovarian syndrome. Biol Reprod 2002; 66: 297-304. [DOI:10.1095/biolreprod66.2.297]
8. Cermik D, Selam B, Taylor HS. Regulation of H0XA-10 expression by testosterone in vitro and in the endometrium of patients with polycystic ovary syndrome. J Clin Endocrinol Metab 2003; 88: 238-243. [DOI:10.1210/jc.2002-021072]
9. Daftary GS, Kayisli U, Seli E, Bukulmez O, Arici A, Taylor HS. Salpingectomy increases peri-implantation endometrial HOXA10 expression in women with hydrosalpinx. Fertil Steril 2007; 87: 367-372. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2006.06.041]
10. Zhao Y, Garcia J, Kolp L, Cheadle C, Rodriguez A, Vlahos NF. The impact of luteal phase support on gene expression of extracellular matrix protein and adhesion molecules in the human endometrium during the window of implantation following controlled ovarian stimulation with a GnRH antagonist protocol. Fertil Steril 2010; 94: 2264-2271. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2010.01.068]
11. Lessey BA. Two pathways of progesterone action in the human endometrium: implications for implantation and contraception. Steroids 2003; 68: 809-815. [DOI:10.1016/j.steroids.2003.09.004]
12. Wang J, Armant DR. Integrin-mediated adhesion and signalling during blastocyst implantation. Cells Tissues Organs 2002; 172: 190-201. [DOI:10.1159/000066970]
13. Achace H, Revel A. Endometrial receptivity markers, the journal to successful embryo implantation. Hum Reprod Update 2006; 12: 731-746. [DOI:10.1093/humupd/dml004]
14. Andersen AN, Gianaroli L, Felberbaum R, de Mouzon J, Nygren KG. Assisted reproductive technology in Europe, 2001. Results generated from European registers by ESHRE. Hum Reprod 2005; 20: 1158-1176.
15. Donaghay M, Lessey BA. Uterine receptivity: alterations associated with benign gynecological disease. Semin Reprod Med 2007; 25: 461-475. [DOI:10.1055/s-2007-991044]
16. Dikmen A, Ergenoglu AM, Yeniel AO, Dilsiz OY, Ercan G, Yilmaz H. Evaluation of glycemic and oxidative/antioxidative status in the estradiol valerate-induced PCOS model of rats. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2012; 160: 55-59. [DOI:10.1016/j.ejogrb.2011.09.042]
17. Mahood RAH. Effects of Pimpinella anisum oil Extract on Some Biochemical Parameters in Mice experimentally induced for human Polycystic Ovary Syndrome. J Biotec Research Cent 2012; 6: 67-73.
18. Guyer M. Animal microbiology. 5th Ed. The University of Chicago press, Chicago; 1993.
19. Pfaffl MW. A new mathematical model for relative quantification in real-time RT-PCR. Nucleic Acids Res 2001; 29: e45.
20. Stener-Victorin E, Kobayashi R, Watanabe O, Lundeberg T, Kurosawa M. Effect of electro-acupuncture stimulation of different frequencies and intensities on ovarian blood flow in anaesthetized rats with steroid-induced polycystic ovaries. Reprod Biol Endocrinol 2004; 2: 16. [DOI:10.1186/1477-7827-2-16]
21. Schulster A, Farookhi R, BrawerJ R. Polycystic ovarian condition in Estradiol Valerate-treated rats: spontaneous changes in characteristic endocrine features. Biol Reprod 1984; 31: 587-593. [DOI:10.1095/biolreprod31.3.587]
22. Shirwalker H, Deepak N M, Anurupa M. Exposure of adult rats to estradiol valerate induces ovarian cyst with early senescence of follicles. Mol Cell Endocrinol 2007; 272: 22-37. [DOI:10.1016/j.mce.2007.04.003]
23. Schulster A, Farookhi R, BrawerJ R. Polycystic ovarian condition in Estradiol Valerate-treated rats: spontaneous changes in characteristic endocrine features. Biol Reprod 1984; 31: 587-593. [DOI:10.1095/biolreprod31.3.587]
24. Brawer JR, Naftolin F, Martin J, Sonnenschein C. Effects of a single injection of estradiol valerate on the hypothalamic arcuate nucleus and on reproductive function in the female rat. Endocrinology 1978; 103: 501-512. [DOI:10.1210/endo-103-2-501]
25. Peyghambari F, Salehnia M, Forouzandeh Moghadam M, Rezazadeh Valujerdi M, Hajizadeh E. The correlation between the endometrial integrins and osteopontin expression with pinopodes development in ovariectomized mice in response to exogenous steroids hormones. Iran Biomed J 2010; 14: 109-119.
26. Lessey BA, Damjanovich L, Coutifaris C, Castelbaum A, Albelda SM, Buck CA. Integrin adhesion molecules in the human endometrium. Correlation with the normal and abnormal menstrual cycle. J Clin Invest 1992; 90: 188-195. [DOI:10.1172/JCI115835]
27. Widra EA, Weeraratna A, Stepp MA, Stillman RJ, Patierno SR. Modulation of implantation-associated integrin expression but not uteroglobin by steroid hormones in an endometrial cell line. Mol Hum Reprod 1997; 3: 563-568. [DOI:10.1093/molehr/3.7.563]
28. Basak S, Dhar R, Das C. Steroids modulate the expression of alpha4 integrin in mouse blastocysts and uterus during implantation. Biol Reprod 2002; 66: 1784-1789. [DOI:10.1095/biolreprod66.6.1784]
29. Kimmins S, MacLaren LA. Cyclic Modulation of integrin expression in bovine endometrium. Biol Reprod 1999; 61: 1267-1274. [DOI:10.1095/biolreprod61.5.1267]
30. Lessey BA, Arnold JT. Paracrine signaling in the endometrium: integrins and the establishment of uterine receptivity. J Reprod Immunol 1998; 39: 105-116. [DOI:10.1016/S0165-0378(98)00016-3]
31. Apparao KB, Murray MJ, Fritz MA, Meyer WR, Chambers AF, Truong PR, Lessey BA. Osteopontin and its receptor alphavbeta (3) integrin are coexpressed in the human endometrium during the menstrual cycle but regulated differentially. J Clin Endocrinol Metab 2001; 86: 4991-5000.
32. Bowen JA, Bazer FW, Burghardt RC. Spatial and temporal analyses of integrin and Muc-1 expression in porcine uterine epithelium and trophectoderm in vivo. Biol Reprod 1996; 55: 1098-1110. [DOI:10.1095/biolreprod55.5.1098]
33. Lin H, Wang X, Liu G, Fu J, Wang A. Expression of alphaV and beta3 integrin subunits during implantation in pig. Mol Reprod Dev 2007; 74: 1379-1385. [DOI:10.1002/mrd.20732]
34. Lim KJ. Molecular factors in human implantation: adhesion molecules, proteases and cytokines. Malays J Pathol 2003; 25: 1-13.
35. Reddy KV, Mangale SS. Integrin receptors: the dynamic modulators of endometrial function. Tissue Cell 2003; 35: 260-273. [DOI:10.1016/S0040-8166(03)00039-9]
36. Gonzalez RR, Palomino A, Boric A, Vega M, Devoto L. A quantitative evaluation of alpha1, alpha4, alphaV and beta3 endometrial integrins of fertile and unexplained infertile women during the menstrual cycle. A flow cytometric appraisal. Hum Reprod 1999; 14: 2485-2492. [DOI:10.1093/humrep/14.10.2485]
37. Lessey BA, Castelbaum AJ, Sawin SW, Sun J. Integrins as markers of uterine receptivity in women with primary unexplained infertility. Fertil Steril 1995; 63: 535-542. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)57422-6]
38. Lim JJ, Lee DR, Song HS, Kim KS, Yoon TK, Gye MC, Kim MK. Heparin-binding epidermal growth factor (HB-EGF) may improve embryonic development and implantation by increasing vitronectin receptor (integrin alphanubeta3) expression in peri-implantation mouse embryos. J Assist Reprod Genet 2006; 23: 111-119. [DOI:10.1007/s10815-006-9021-9]
39. Singh H, Aplin JD. Adhesion molecules in endometrial epithelium: tissue integrity and embryo implantation. J Anat 2009; 215: 3-13. [DOI:10.1111/j.1469-7580.2008.01034.x]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
