چهارشنبه 5 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 12، شماره 3 - ( 1-1393 )
جلد 12 شماره 3 صفحات 216-209 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Amirshahi T, Najafi G, Nejati V. Protective effect of royal jelly on fertility and biochemical parameters in bleomycin-induced male rats. IJRM 2014; 12 (3) :209-216
URL: http://ijrm.ir/article-1-514-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-514-fa.html
امیرشاهی طیبه، نجفی غلامرضا، نجاتی وحید. بررسی اثر محافظتی ژل رویال بر شاخصه های باروری و پارامترهای بیوشیمیایی در رت های نر بالغ تحت درمان با داروی بلئومایسین . International Journal of Reproductive BioMedicine. 1393; 12 (3) :209-216
طیبه امیرشاهی* 
1، غلامرضا نجفی2 ، وحید نجاتی3
1، غلامرضا نجفی2 ، وحید نجاتی3
1- بخش بافت شناسی و جنین شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران ، t.amirshahi@yahoo.com
2- بخش آناتومی و جنین‌شناسی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
3- بخش بافت شناسی و جنین شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
2- بخش آناتومی و جنین‌شناسی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
3- بخش بافت شناسی و جنین شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
چکیده: (3043 مشاهده)
مقدمه: بلئومایسین آنتیبیوتیکی گلیکوپپتیدی است که در درمان سرطانهای انسانی از جمله سرطان بیضه کاربرد دارد. ژل رویال (RJ)، از غدد هیپوفارنکس فک پایین زنبور کارگر ترشح میگردد و غنی از مواد معدنی، هورمونهای طبیعی، ویتامین B و اسید مولیک است که برای بازسازی و رشد بافت حائز اهمیت میباشد.
هدف: هدف از مطالعه حاضر بررسی اثر محافظتی ژل رویال بر شاخصههای باروری و پارامترهای بیوشیمیایی در رتهای نر بالغ تحت درمان با داروی بلئومایسین میباشد.
مواد و روشها: 40 رت نر نژاد ویستار (gr 220±20) به طور تصادفی به 4 گروه تقسیم شدند (10=n). گروه کنترل: این گروه دو بار در هفته نرمال سالین (10 میلی لیتر/کیلوگرم) را به صورت درون صفاقی دریافت نمودند. گروه ژل رویال: روزانه ژل رویال ( 100 میلی گرم/کیلوگرم) را به صورت خوراکی و به مدت 48 روز دریافت نمودند. گروه بلئومایسین : بلئومایسین (10میلی گرم /کیلوگرم) از طریق درون صفاقی دریافت نمودند و گروه بلئومایسین + ژل رویال :که بلئومایسین (10 میلی گرم /کیلوگرم به صورت درون صفاقی و دو بار در هفته) و ژل رویال (100 میلی گرم/کیلوگرم به صورت خوراکی) را به مدت 48 روز دریافت نمودند. پس از پایان دوره تیمار، فاکتورهای بیوشیمیایی بافت بیضه و همچنین غلظت تستوسترون سرمی، تعداد و تحرک اسپرمها، قابلیت زنده ماندن اسپرم، بلوغ و آسیب DNA اسپرم، مورد ارزیابی قرار گرفت. دادهها با استفاده از آنووای یک طرفه مورد ارزیابی قرار گرفتند. تغییراتP کوچکتر از 0/05 معنی دار در نظر گرفته شد.
نتایج: بلئومایسین سبب کاهش معنیدار (0/05>p) غلظت تستوسترون سرمی، تعداد، تحرک و قابلیت زنده ماندن اسپرمها گردید. علاوه بر این میزان پراکسیداسیون لیپیدی، اسپرمهای نابالغ و همچنین، اسپرم با DNA آسیب دیده در گروه دریافتکننده داروی بلئومایسین افزایش یافت. این در حالی است که مصرف توأم ژل رویال همراه با داروی بلئومایسین در گروه ترکیبی باعث بهبودی نسبی در تمامی پارامترهای مذکور گردید.
نتیجهگیری: نتایج تحقیق حاضر نشان میدهد که داروی بلئومایسین تأثیر منفی بر پارامترهای بیوشیمیایی و شاخصههای باروری داشته در صورتی که ژل رویال با خواص آنتی اکسیدانی خود اثرات مثبتی بر آسیبهای ناشی از مصرف این دارو اعمال کرده است.
هدف: هدف از مطالعه حاضر بررسی اثر محافظتی ژل رویال بر شاخصههای باروری و پارامترهای بیوشیمیایی در رتهای نر بالغ تحت درمان با داروی بلئومایسین میباشد.
مواد و روشها: 40 رت نر نژاد ویستار (gr 220±20) به طور تصادفی به 4 گروه تقسیم شدند (10=n). گروه کنترل: این گروه دو بار در هفته نرمال سالین (10 میلی لیتر/کیلوگرم) را به صورت درون صفاقی دریافت نمودند. گروه ژل رویال: روزانه ژل رویال ( 100 میلی گرم/کیلوگرم) را به صورت خوراکی و به مدت 48 روز دریافت نمودند. گروه بلئومایسین : بلئومایسین (10میلی گرم /کیلوگرم) از طریق درون صفاقی دریافت نمودند و گروه بلئومایسین + ژل رویال :که بلئومایسین (10 میلی گرم /کیلوگرم به صورت درون صفاقی و دو بار در هفته) و ژل رویال (100 میلی گرم/کیلوگرم به صورت خوراکی) را به مدت 48 روز دریافت نمودند. پس از پایان دوره تیمار، فاکتورهای بیوشیمیایی بافت بیضه و همچنین غلظت تستوسترون سرمی، تعداد و تحرک اسپرمها، قابلیت زنده ماندن اسپرم، بلوغ و آسیب DNA اسپرم، مورد ارزیابی قرار گرفت. دادهها با استفاده از آنووای یک طرفه مورد ارزیابی قرار گرفتند. تغییراتP کوچکتر از 0/05 معنی دار در نظر گرفته شد.
نتایج: بلئومایسین سبب کاهش معنیدار (0/05>p) غلظت تستوسترون سرمی، تعداد، تحرک و قابلیت زنده ماندن اسپرمها گردید. علاوه بر این میزان پراکسیداسیون لیپیدی، اسپرمهای نابالغ و همچنین، اسپرم با DNA آسیب دیده در گروه دریافتکننده داروی بلئومایسین افزایش یافت. این در حالی است که مصرف توأم ژل رویال همراه با داروی بلئومایسین در گروه ترکیبی باعث بهبودی نسبی در تمامی پارامترهای مذکور گردید.
نتیجهگیری: نتایج تحقیق حاضر نشان میدهد که داروی بلئومایسین تأثیر منفی بر پارامترهای بیوشیمیایی و شاخصههای باروری داشته در صورتی که ژل رویال با خواص آنتی اکسیدانی خود اثرات مثبتی بر آسیبهای ناشی از مصرف این دارو اعمال کرده است.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Du L, Sánchez C, Chen M, Edwards DJ, Shen B. The biosynthetic gene cluster for the antitumor drug bleomycin from Streptomyces verticillus ATCC15003 supporting functional interactions between nonribosomal peptide synthetases and a polyketide synthase. Chem Biol 2000; 7: 623-642. [DOI:10.1016/S1074-5521(00)00011-9]
2. Bray F, Richiardi L, Ekbom A, Pukkala E, Cuninkova M, Moller H. Trends in testicular cancer incidence and mortality in 22 European countries: continuing increases in incidence and declines in mortality. Int J Cancer 2006; 118: 3099-3111. [DOI:10.1002/ijc.21747]
3. Robinson D, Moller H, Horwich A. Mortality and incidence of second cancers following treatment for testicular cancer. Br J Cancer 2007; 96: 529-533. [DOI:10.1038/sj.bjc.6603589]
4. Maselli J, Hales B, Chan P, Robaire B. Exposure to Bleomycin, Etoposide, and Cis-Platinum Alters Rat Sperm Chromatin Integrity and Sperm Head Protein Profile12,3,5,6. Biol Reprod 2012; 86: 166. [DOI:10.1095/biolreprod.111.098616]
5. Lewis TG; Nydorf ED. Intralesional Bleomycin for warts: a review. J Drugs Dermatol 2006; 5: 499-504.
6. Adam G, Avise John C. Male Pregnancy. Cur Biol 2003; 13: R791. [DOI:10.1016/j.cub.2003.09.045]
7. Sver L, Orsolic N, Tadic Z. Royal jelly as a new potential immunomodulator in rats and mice. Comp Immunol Microbiol Infect Dis 1996; 19: 31-38. [DOI:10.1016/0147-9571(95)00020-8]
8. Nagai T, Inoue R. Preparation and the functional properties of water extract and alkaline extract of royal jelly. Food Chem 2004; 84: 181-186. [DOI:10.1016/S0308-8146(03)00198-5]
9. Inoue S, Koya-Miyata S, Ushio S, Iwaki K, Ikeda M, Kurimoto M. Royal jelly prolongs the life span of C3H/HeJ mice: correlation with reduced DNA damage. Exp Gerontol 2003; 38: 965-969. [DOI:10.1016/S0531-5565(03)00165-7]
10. Hiroyuki M, Takahide I, Kazuo K, Kei F, Ichiro M, Hideyuki O, et al. Effect of royal jelly ingestion for six months on healthy volunteers. Nutr J 2012; 10: 1186-1475.
11. Arslan SO, Zerin M, Vural H. The effect of melatonin on bleomycin-induced pulmonary fibrosis in rats. Coskun AJ Pineal Res 2002; 32: 21-25. [DOI:10.1034/j.1600-079x.2002.10796.x]
12. Yildirim Z, Kotuk M, Iraz M, Kuku I, Ulu R, Armutcu F, et al. Attenuation of bleomycin-induced lung fibrosis by oral sulfhydryl containing antioxidants in rats: erdosteine and Nacetylcysteine. Pulm Pharmacol Ther 2005; 18: 367-373. [DOI:10.1016/j.pupt.2005.02.001]
13. WHO laboratory manual for the examination of human semen and sperm-cervical mucus interaction. 4th Ed. Cambridge, United Kingdom: Cambridge University Press; 1999.
14. Wyrobek AJ, Gordon LA, Burkhart JG, Francis MW, Kapp RW, Letz G, et al. An evaluation of mouse sperm morphology test and other sperm tests in non-human mammals. Mutat Res 1983; 115: 1-72. [DOI:10.1016/0165-1110(83)90014-3]
15. Varghese A, Fischer-Hammadeh C, Hammadeh M. Acridine Orange Test for Assessment of Human Sperm DNA Integrity. Kolkata, India, Springer; 2011: 189-199. [DOI:10.1007/978-1-4419-6857-9_13]
16. Rezvanfar MA, Sadrkhanlou RA, Ahmadi A, Shojaei-Sadee H, Rezvanfar MA, Mohammadirad A. Protection of cyclophosphamide-induced toxicity in reproductive tract histology, sperm characteristics, and DNA damage by an herbal source; evidence for role of free-radical toxic stress. Hum Exp Toxicol 2008; 27: 901-910. [DOI:10.1177/0960327108102046]
17. Hammadeh M, Zeginiadov T, Rosenbaum P. Predictive value of sperm chromatin condensation (aniline blue staining) in the assessment of male fertility. Arch Androl 2001; 46: 99-104. [DOI:10.1080/01485010117363]
18. Esterbauer H, Chesseman KH. Determination of aldehydic lipid peroxidation product: malonaldhyde and 4-hydroxynonenal. Methods Enzymol 1990; 4074: 21-186. [DOI:10.1016/0076-6879(90)86134-H]
19. Hosseinzade H, Sadeghnia RH. Safranal, aconstituent of corcus sativus (saffron), attenuated cerebral ischemia induced oxidative damage in rat hippocampus. J Pharm Pharm Sci 2005; 8: 394-399.
20. Kumar SG, Narayana K, Bairy KL, D'Souza UJ, Samuel VP, Gopalakrishna K. Dacarbazine induces genotoxic and cytotoxic germ cell damage with concomitant decrease in testosterone and increase in lactate dehydrogenase concentration in the testis. Mutat Res 2006; 607: 240-252. [DOI:10.1016/j.mrgentox.2006.04.019]
21. van der Spoel AC, Jeyakumar M, Butters TD, Charlton HM, Moore HD, Dwek RA. Reversible infertility in male mice after oral administration of alkylated imino sugars: A nonhormonal approach to male contraception. Proc Natl Acad Sci USA 2002; 99: 1717317178. [DOI:10.1073/pnas.262586099]
22. O'Flaherty C, Hales B, Chan P, Robaire B. Impact of chemotherapeutics and advanced testicular cancer or Hodgkin lymphoma on sperm deoxyribonucleic acid integrity. Fertil Steril 2010; 94: 1374-1379. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2009.05.068]
23. Goldstein RS, Mayor GH. Mini review the nephrotoxicity of Cisplatin. Life Sci 1983; 32: 685-690. [DOI:10.1016/0024-3205(83)90299-0]
24. Cayir K, Karadeniz A, Yildirimetal A.Protective effect of L-carnitine against cisplatin-induced liver and kidney oxidant injury in rats. Cent Eur J Med 2009; 4: 184-191. [DOI:10.2478/s11536-009-0021-x]
25. Lieber CS. Cytochrome P-4502E1: its physiological and pathological role. Physiol Rev 1997; 77: 517-544. [DOI:10.1152/physrev.1997.77.2.517]
26. Favareto AP, de Toledo FC, Kempinas Wde G. Paternal treatment with cisplatin impairs reproduction of adult male offspring in rats. Reprod Toxicol 2011; 32: 425-433. [DOI:10.1016/j.reprotox.2011.10.003]
27. Silici S, Ekmekcioglu O, Kanbur M, Deniz K. The protective effect of royal jelly against cisplatin-induced renal oxidative stress in rats. World J Urol 2010; 29: 127-132. [DOI:10.1007/s00345-010-0543-5]
28. Atessahin A, Yilmaz S, Karahan I, Ceribasi A, Karaoglu O. Effects of lycopene against cisplatin-induced nephrotoxicity and oxidative stress in rats. Toxicology 2005; 212: 116-123. [DOI:10.1016/j.tox.2005.04.016]
29. Yapar K, Çavuşoǧlu K, Oruç E, Yalçin E. Protective effect of royal jelly and green tea extracts effect against cisplatin-induced nephrotoxicity in mice: a comparative study. J Med Food 2009; 12: 1136-1142. [DOI:10.1089/jmf.2009.0036]
30. Iraz M, Ozerol E, Gulecetal M. Protective effect of caffeic acid phenethyl ester (CAPE) administration on cisplatin-induced oxidative damage to liver in rat. J Cell Biochem Func 2006; 24: 357-361. [DOI:10.1002/cbf.1232]
31. Tamura S, Kono T, Harada C, Yamaguchi K, Moriyama T. Estimation and characterisation of major royal jelly proteins obtained from the honeybee Apismerifera. Food Chem 2009; 114: 1491-1497. [DOI:10.1016/j.foodchem.2008.11.058]
32. Delbes G, Hales BF, Robaire B .Toxicants and human sperm chromatin integrity. Mol Hum Reprod 2010; 16: 14-22. [DOI:10.1093/molehr/gap087]
33. Braun RE. Packaging paternal chromosomes with protamine. Nat Genet 2001; 28: 10-12. [DOI:10.1038/ng0501-10]
34. Gatewood JM, Cook GR, Balhorn R, Bradbury EM, Schmid CW Sequence specific packaging of DNA in human sperm chromatin. Science 1987; 236: 962-964. [DOI:10.1126/science.3576213]
35. Balhorn R, Gledhill BL, Wyrobek AJ. Mouse sperm chromatin proteins: quantitative isolation and partial characterization. Biochemistry 1977; 16: 4074-4080. [DOI:10.1021/bi00637a021]
36. Carrell DT, Hammoud SS. The human sperm epigenome and its potential role in embryonic development. Mol Hum Reprod 2010; 16: 37-47. [DOI:10.1093/molehr/gap090]
37. Aoki VW, Liu L, Jones KP, Hatasaka HH, Gibson M, Peterson CM, et al. Sperm protamine 1/protamine 2 ratios are related to in vitro fertilization pregnancy rates and predictive of fertilization ability. Fertil Steril 2006; 86: 1408-1415. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2006.04.024]
38. Singleton S, Mudrak O, Morshedi M, Oehninger S, Zalenskaya I, Zalensky A Characterization of a human sperm cell subpopulation marked by the presence of the TSH2B histone. Reprod Fertil Dev 2007; 19: 392-397. [DOI:10.1071/RD06099]
39. Sergerie M, Laforest G, Bujan L, Bissonnette F, Bleau G. Sperm DNA fragmentation: threshold value in male fertility. Hum Reprod 2005; 20: 3446-3451. [DOI:10.1093/humrep/dei231]
40. Kamiguchi Y, Tateno H. Radiation- and chemical-induced structural chromosome aberrations in human spermatozoa. Mutat Res 2002; 504: 183-191. [DOI:10.1016/S0027-5107(02)00091-X]
41. Lambert B, Eriksson G. Effects of cancer chemotherapeutic agents on testicular DNA synthesis in the rat. Evaluation of a short-term test for studies of the genetic toxicity of chemicals and drugs in vivo. Mutat Res 1979; 68: 275-289. [DOI:10.1016/0165-1218(79)90159-9]
42. Brun HP, Leonard JF, Moronvalle V, Caillaud JM, Melcion C, Cordier A. Pig Leydig cell culture: A useful in vitro test for evaluating the testicular toxicity of compounds. Toxicol Appl Pharmacol 1991; 108: 307-320. [DOI:10.1016/0041-008X(91)90120-4]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
