یکشنبه 24 فروردین 1404
[Archive]
دوره 12، شماره 5 - ( 3-1393 )
جلد 12 شماره 5 صفحات 0-307 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Rahimipour M, Talebi A R, Anvari M, Abbasi Sarcheshmeh A, Omidi M. Saccharin consumption increases sperm DNA fragmentation and apoptosis in mice. IJRM 2014; 12 (5) :307-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-543-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-543-fa.html
رحیمی پور مرضیه، طالبی علیرضا، انوری مرتضی، عباسی سرچشمه ابوالقاسم، امیدی مرجان. مصرف ساخارین میزان قطعه قطعه شدن DNA و آپوپتوز را در اسپرم موش افزایش می دهد. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1393; 12 (5) :307-0
مرضیه رحیمی پور1 
، علیرضا طالبی* 2، مرتضی انوری1 ، ابوالقاسم عباسی سرچشمه1 ، مرجان امیدی1
، علیرضا طالبی* 2، مرتضی انوری1 ، ابوالقاسم عباسی سرچشمه1 ، مرجان امیدی1
1- گروه بیولوژی و علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
2- گروه بیولوژی و علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران ،prof_talebi@ssu.ac.ir
2- گروه بیولوژی و علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران ،
چکیده: (2872 مشاهده)
مقدمه: ساخارین یک شیرینکننده مصنوعی و فاقد کالری است که برای شیرین کردن محصولاتی همچون نوشیدنیها، شیرینیجات، بیسکوئیتها، داروها و خمیردندان استفاده میشود. این در حالی است که بدن ما قادر به متابولیزه کردن آن نیست. سدیم ساخارین به عنوان یک فاکتور مهم در پیشبرد تومور و تحریک تومورهای مثانه در رتهای مذکر اما نه در انسان تلقی میگردد. به هر حال بنابر دانش ما، دادههایی مبنا بر تأثیرات ساخارین بر عملکردهای تولیدمثلی به ویژه پتانسیل باروری اسپرم وجود ندارد.
هدف: از آنجایی که اسپرم دارای یک نقش حیاتی در عملکرد تولیدمثلی است، هدف از این مطالعه بررسی تأثیر مصرف ساخارین بر پارامترهای اسپرم و آپوپتوز در موشهای بالغ است.
مواد و روشها: مجموعا 14 موش نر بالغ به 2 گروه تقسیم شدند. گروه 1 به عنوان کنترل، غذای روتین موش و گروه 2 یا حیوانات آزمایشی، آب حاوی ساخارین (W/V 0/2) را به مدت 35 روز دریافت نمودند. بعد از این مدت، از هر حیوان دم اپیدیدیم مربوط به سمت چپ جدا و در محیط Ham’s F10 قرار داده شد. اسپرمهای خارج شده برای ارزیابی تعداد، حرکت مورفولوژی (رنگ آمیزی پاپانیکولا) و حیات (رنگ آمیزی ائوزین) مورد استفاده قرار گرفتند. یکپارچگی DNA اسپرم به عنوان اندیکاتور آپوپتوز با تستهای SCD و TUNEL مورد ارزیابی قرار گرفت.
نتایج: در پی مصرف ساخارین، تعداد و حرکت اسپرمها کاهش و میزان ناهنجاریهای مورفولوژیکی افزایش یافت. همچنین میزان آسیب DNA و آپوپتوز در گروه آزمایشی در مقایسه با گروه کنترل از لحاظ آماری به طور معنیداری افزایش یافت.
نتیجهگیری: بنابر دادههای ما، مصرف ساخارین ممکن است دارای تأثیرات منفی بر روی پارامترهای اسپرم باشد و منجر به افزایش میزان قطعه قطعه شدن DNA و آپوپتوز در اسپرم موش گردد.
هدف: از آنجایی که اسپرم دارای یک نقش حیاتی در عملکرد تولیدمثلی است، هدف از این مطالعه بررسی تأثیر مصرف ساخارین بر پارامترهای اسپرم و آپوپتوز در موشهای بالغ است.
مواد و روشها: مجموعا 14 موش نر بالغ به 2 گروه تقسیم شدند. گروه 1 به عنوان کنترل، غذای روتین موش و گروه 2 یا حیوانات آزمایشی، آب حاوی ساخارین (W/V 0/2) را به مدت 35 روز دریافت نمودند. بعد از این مدت، از هر حیوان دم اپیدیدیم مربوط به سمت چپ جدا و در محیط Ham’s F10 قرار داده شد. اسپرمهای خارج شده برای ارزیابی تعداد، حرکت مورفولوژی (رنگ آمیزی پاپانیکولا) و حیات (رنگ آمیزی ائوزین) مورد استفاده قرار گرفتند. یکپارچگی DNA اسپرم به عنوان اندیکاتور آپوپتوز با تستهای SCD و TUNEL مورد ارزیابی قرار گرفت.
نتایج: در پی مصرف ساخارین، تعداد و حرکت اسپرمها کاهش و میزان ناهنجاریهای مورفولوژیکی افزایش یافت. همچنین میزان آسیب DNA و آپوپتوز در گروه آزمایشی در مقایسه با گروه کنترل از لحاظ آماری به طور معنیداری افزایش یافت.
نتیجهگیری: بنابر دادههای ما، مصرف ساخارین ممکن است دارای تأثیرات منفی بر روی پارامترهای اسپرم باشد و منجر به افزایش میزان قطعه قطعه شدن DNA و آپوپتوز در اسپرم موش گردد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Mitchell H. Sweeteners and sugar alternatives in food technology. 1th Ed. Blackwell; 2006. [DOI:10.1002/9780470996003]
2. Schardt D. Sweet nothings. Nutr Act 2004; 9: 8-11.
3. No DCR. Saccharin and its salts. 2th Ed. 1987.
4. Zurlo J, Squire RA. Is saccharin safe? Animal testing revisited. J Natl Cancer Inst 1998; 90: 2-3. [DOI:10.1093/jnci/90.1.2]
5. Turner SD, Tinwell H, Piegorsch W, Schmezer P, Ashby J. The male rat carcinogens limonene and sodium saccharin are not mutagenic to male Big BlueTM rats. Mutagenesis 2001; 16: 329-332. [DOI:10.1093/mutage/16.4.329]
6. Wolff S, Rodin B. Saccharin-induced sister chromatid exchanges in Chinese hamster and human cells. Science 1978; 200: 543-545. [DOI:10.1126/science.644315]
7. Hikim AS, Swerdloff RS. Hormonal and genetic control of germ cell apoptosis in the testis. Rev Reprod 1999; 4: 38-47. [DOI:10.1530/ror.0.0040038]
8. Porcelli F, Meggiolaro D, Carnevali A, Ferrandi B. Fas ligand in bull ejaculated spermatozoa: a quantitative immunocytochemical study. Acta Histochem 2006; 108: 287-292. [DOI:10.1016/j.acthis.2006.05.006]
9. Nagata S. Fas ligand-induced apoptosis. Annu Rev Genet 1999; 33: 29-55. [DOI:10.1146/annurev.genet.33.1.29]
10. Ozmen B, Koutlaki N, Youssry M, Diedrich K, Al-Hasani S. DNA damage of human spermatozoa in assisted reproduction: origins, diagnosis, impacts and safety. Reprod Biomed Online 2007; 14: 384-395. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60883-8]
11. Liu W, Staecker H, Stupak H, Malgrange B, Lefebvre P, Van De Water TR. Caspase inhibitors prevent cisplatin-induced apoptosis of auditory sensory cells. Neuroreport 1998; 9: 2609-2614. [DOI:10.1097/00001756-199808030-00034]
12. Wyllie AH, Kerr JF, Currie AR. Cell death: the significance of apoptosis. Int Rev Cytol 1980; 68: 251. [DOI:10.1016/S0074-7696(08)62312-8]
13. Talebi AR. Sperm Nuclear Maturation: a basic and clinical approach. 1th Ed. New York, Nova Science Publishers; 2011.
14. Schulte RT, Ohl DA, Sigman M, Smith GD. Sperm DNA damage in male infertility: etiologies, assays, and outcomes. J Assist Reprod Genet 2010; 27: 3-12. [DOI:10.1007/s10815-009-9359-x]
15. Zini A, Bielecki R, Phang D, Zenzes MT. Correlations between two markers of sperm DNA integrity, DNA denaturation and DNA fragmentation, in fertile and infertile men. Fertil Steril 2001; 75: 674. [DOI:10.1016/S0015-0282(00)01796-9]
16. Makler A. The improved ten-micrometer chamber for rapid sperm count and motility evaluation. Fertil Steril 1980; 33: 337. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)44606-6]
17. Kermani-Alghoraishi M, Anvari M, Talebi AR, Amini-Rad O, Ghahramani R, Miresmaili SM. The effects of acrylamide on sperm parameters and membrane integrity of epididymal spermatozoa in mice. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2010; 153: 52-55. [DOI:10.1016/j.ejogrb.2010.07.008]
18. Kruger TF, Menkveld R, Stander F, Lombard C, Van der Merwe J, Van Zyl J, et al. Sperm morphologic features as a prognostic factor in in vitro fertilization. Fertil Steril 1986; 46: 1118. [DOI:10.1016/S0015-0282(16)49891-2]
19. Fernández JL, Muriel L, Rivero MT, Goyanes V, Vazquez R, Alvarez JG. The sperm chromatin dispersion test: a simple method for the determination of sperm DNA fragmentation. J Androl 2003; 24: 59-66.
20. Gandini L, Lombardo F, Paoli D, Caponecchia L, Familiari G, Verlengia C, et al. Study of apoptotic DNA fragmentation in human spermatozoa. Hum Reprod 2000; 15: 830-839. [DOI:10.1093/humrep/15.4.830]
21. Ellwein LB, Cohen SM. The health risks of saccharin revisited. Crit Rev Toxicol 1990; 20: 311-326. [DOI:10.3109/10408449009089867]
22. Dybing E. Development and implementation of the IPCS conceptual framework for evaluating mode of action of chemical carcinogens. Toxicology 2002; 181: 121-125. [DOI:10.1016/S0300-483X(02)00266-4]
23. Sarıözkan S, Bucak MN, Canturk F, Özdamar S, Yay A, Tuncer PB, et al. The effects of different sugars on motility, morphology and DNA damage during the liquid storage of rat epididymal sperm at 4°C. Cryobiology 2012; 65: 93-97. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2012.05.007]
24. Corcuera B, Marigorta P, Sagüés A, Saiz-Cidoncha F, Pérez-Gutiérrez J. Effect of lactose and glycerol on the motility, normal apical ridge, chromatin condensation and chromatin stability of frozen boar spermatozoa. Theriogenology 2007; 67: 1150-1157. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2007.01.002]
25. Sánchez R, Risopatrón J, Schulz M, Villegas J, Isachenko V, Kreinberg R, et al. Canine sperm vitrification with sucrose: effect on sperm function. Andrologia 2011; 43: 233-241. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2010.01054.x]
26. Dasgupta J, Elliott RA, Doshani A, Tincello DG. Enhancement of rat bladder contraction by artificial sweeteners via increased extracellular Ca< sup> 2+ influx. Toxicol Appl Pharmacol 2006; 217: 216-224. [DOI:10.1016/j.taap.2006.09.004]
27. Andreatta M, Mu-oz S, Lantieri M, Eynard A, Navarro A. Artificial sweetener consumption and urinary tract tumors in Cordoba, Argentina. Prev Med 2008; 47: 136-139. [DOI:10.1016/j.ypmed.2008.03.015]
28. Tavalaee M, Nasr-Esfahani MH, Deemeh MR. Etiology and evaluation of sperm chromatin anomalies. Int J Fertil Steril 2008; 2: 1-8.
29. Kensler TW, Trush MA. Role of oxygen radicals in tumor promotion. Environ Mutagen 1984; 6: 593-616. [DOI:10.1002/em.2860060412]
30. Al-Saleh AM. Effect of Artificial Sweeteners on Insulin Secretion, ROS, and Oxygen Consumption in Pancreatic [Beta]-cells. Boston University, Boston, 2010.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
