دوره 13، شماره 1 - ( 10-1393 )                   جلد 13 شماره 1 صفحات 48-41 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Khoradmehr A, Danafar A, Halvaei I, Golzadeh J, Hosseini M, Mirjalili T et al . Effect of prenatal methamphetamine administration during gestational days on mice. IJRM 2015; 13 (1) :41-48
URL: http://ijrm.ir/article-1-584-fa.html
خرادمهر آرزو، دانافر امیرحسین، حلوایی ایمان، گلزاده جلال، حسینی مهیا، میرجلیلی طاهره و همکاران.. تأثیر مصرف پیش از تولد مت  آمفتامین در طی بارداری بر موش سوری. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1393; 13 (1) :41-48

URL: http://ijrm.ir/article-1-584-fa.html


1- مرکز تحقیقاتی و درمانی ناباروری یزد، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
2- دانشکده زیست شناسی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
3- مرکز تحقیقاتی و درمانی ناباروری یزد، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران ، moanvari@yahoo.com
چکیده:   (3275 مشاهده)
مقدمه: مت­آمفتامین یکی از داروهای معمول غیرقانونی که نزدیک به نیمی از مصرف­کنندگان آن زنان می­باشند. تحقیقات نشان داده­اند که مت­آمفتامین می­تواند از جفت عبور کند و دوران حاملگی و تکوین جنین را تحت تأثیر قرار دهد.
هدف: هدف از این مطالعه ارزیابی تأثیر تزریق مت­آمفتامین روی طول تاج-کفل، محیط سر و جفت جنین، وزن جفت و جنین، تغییرات بافتی و مرگ سلولی در طول دوره حاملگی بوده است.
مواد و روش­ها: 24 موش سوری باردار به پنج گروه تقسیم شدند. تزریق درون صفاقی 10 میلی­گرم بر کیلوگرم مت­آمفتامین به گروه اول، دوم و سوم، به ترتیب از روز اول تا هفتم، هفتم تا چهاردهم و اول تا چهاردهم انجام گرفت. به گروه چهارم نیز به عنوان گروه شم از روز اول تا چهاردهم بارداری نرمال سالین تزریق شد و به گروه کنترل هیچ ماده ای تزریق نشد. روز پانزدهم موش­های باردار با روش جابجایی مهره گردنی کشته شدند؛ جنین و جفت توزین شده و طول تاج-کفل به وسیله کولیس اندازه­گیری شد. نهایتا رنگ­آمیزی هماتوکسیلین-ائوزین و تانل به ترتیب برای بررسی تغییرات بافتی و مرگ سلولی انجام شد.
نتایج: وزن جنین و طول تاج-کفل در گروه 3 در مقایسه با گروه 1 و 2 افزایش معنی داری نشان داد (001/0˂p). محیط سر گروه­ 3 تفاوت معنی داری در مقایسه با گروه کنترل و شم نشان داد به ترتیب ( (6/0-5/0) 5/0، (8/0-5/0) 0.6 و (5/0-4/0) 4/0) (001/0˂p). همچنین جنین­هایی که با مت­آمفتامین تیمار شدند محیط جفت کمتری در مقایسه با گروه کنترل و شم داشتند. تغییرات بافتی مانند اگزنسفالی، خونریزی و جنین نارس در گروه­های 2 و 3 مشاهده شد. اگر چه تعداد سلول­هایی که دچار مرگ سلولی شده بودند در گروه 2 و 3 بیشتر از گروه کنترل بود اما این اختلاف تفاوت معنی­دار نبود.
نتیجه­گیری: بنظر می­رسد سوء مصرف مت­آمفتامین در طی دوره بارداری می­تواند باعث تغییرات مورفولوژیکی و بافتی در جنین موش شود، ولی مکانیسم دقیق آن هنوز نامشخص است.
نوع مطالعه: Original Article |

فهرست منابع
1. Anderson M, Choonara I. Drug misuse during pregnancy and fetal toxicity. Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed 2007; 92: 332-333. [DOI:10.1136/adc.2006.115303]
2. Narkowicz S, Polkowska Z, Namiesnik J. Analysis of markers of exposure to constituents of environmental tobacco smoke (ETS): Critical Reviews. Anal Chem 2012; 42: 16-37. [DOI:10.1080/10408347.2012.629948]
3. Vega WA, Kolody B, Hwang J, Noble A. Prevalence and magnitude of perinatal substance exposures in California (see comments). New Eng J Med 1993; 329: 850-854. [DOI:10.1056/NEJM199309163291207]
4. Moore DG,Turner JJD, Goodwin JE, Fulton SE, Singer LT, Parrott AC. In-utero exposure to the popular 'recreational' drugs MDMA (Ecstasy) and Methamphetamine (Ice, Crystal): preliminary findings. In: Alcohol, Drugs and Medication in Pregnancy: The Outcome for the Child. John Wiley & Sons 2011.
5. Ma J, Wan J, Meng J, Banerjee S, Ramakrishnan S, Roy S. Methamphetamine induces autophagy as a pro-survival response against apoptotic endothelial cell death through the Kappa opioid receptor. Cell Death Dis 2014; 5: e1099. [DOI:10.1038/cddis.2014.64]
6. Bennett C, Hyde C, Pecora J, Clodfelter J. Differing neurotoxic potencies of methamphetamine, mazinol, and cocaine in mesencephalic cultures. J Neurochem 1993; 60: 1444-1452. [DOI:10.1111/j.1471-4159.1993.tb03307.x]
7. McKetin R, McLaren J, Lubman D I, Hides L. The prevalence of psychotic symptoms among methamphetamine users. Addiction 2006; 101: 1473-1478. [DOI:10.1111/j.1360-0443.2006.01496.x]
8. Wells PG, McCallum GP, Chen CS, Henderson JT, Lee CJJ, Perstin J, et al. Oxidative stress in developmental origins of disease: teratogenesis, neurodevelopmental deficits and cancer: Review. Toxicol Sci 2009; 108: 4-18. [DOI:10.1093/toxsci/kfn263]
9. Leino O, Kiviranta H, Karjalainen AK, Kronberg-Kippila C, Sinkko H, Larsen EH, et al. Pollutant concentrations in placenta. Food Chem Toxicol 2011; 54: 59-69. [DOI:10.1016/j.fct.2011.10.058]
10. Plotka J, Narkowicz S, Polkowska Z, Biziuk M, Namiesnik J. Effects of addictive substances during pregnancy and infancy and their analysis in biological materials: Reviews. Rev Environ Contam Toxicol 2014: 227.
11. Thompson BL, Levitt P, Stanwood GD. Prenatal exposure to drugs: effects on brain development and implications for policy and education. Nature Rev Neurosci 2009; 10: 303-312. [DOI:10.1038/nrn2598]
12. Plessinger MA. Prenatal exposure to amphetamines. Risks and adverse outcomes in pregnancy. Obstet Gynecol Clin North Am 1998; 25: 119-138. [DOI:10.1016/S0889-8545(05)70361-2]
13. Freedman RR, Johnson CE, Tancer ME. Thermoregulatory effects of 3,4-methylenedioxymethamphetamine (MDMA) in humans. Psychopharmacology 2005; 183: 248-256. [DOI:10.1007/s00213-005-0149-6]
14. Kaye S, McKetin R, Duflou J, Darke S. Methamphetamine and cardiovascular pathology: a review of the evidence. Addiction 2007; 102: 1204-1211. [DOI:10.1111/j.1360-0443.2007.01874.x]
15. Wouldes T, LaGasse L, Sheridan J, Lester B. Maternal methamphetamine use during pregnancy and child outcome: what do we know? J N Z Med Assoc 2004; 117: 1206.
16. Jeng, W, Wong AW, Ting-A-Kee R, Wells PG. Methamphetamine enhanced embryonic oxidative DNA damage and neurodevelopmental deficits. Free Rad Biol Med 2005; 39: 317-326. [DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2005.03.015]
17. Kiernan JA. Histological and Histochemical Methods: Theory and Practice. 4th Ed. Bloxham, UK, Scion; 2008: 20-25.
18. Brecht M-L, Herbeck DM. Pregnancy and Fetal Loss Reported by Methamphetamine-Using Women. Subst Abuse 2014; 8: 25-33. [DOI:10.4137/SART.S14125]
19. Nguyen D, Smith LM, LaGasse LL, Derauf C, Grant P, Shah R. Intrauterine growth of infants exposed to prenatal methamphetamine: results from the infant development, environment, and lifestyle study. J Pediatr 2010; 157: 337-339. [DOI:10.1016/j.jpeds.2010.04.024]
20. Kwiatkowski MA, Roos A, Stein DJ, Thomas KGF, Donald K. Effects of prenatal methamphetamine exposure: a review of cognitive and neuroimaging studies. Metab Brain Dis 2014; 29: 245-254. [DOI:10.1007/s11011-013-9470-7]
21. Vicentic A, Jones DC. Cocaine and amphetamine regulated transcript system in appetite and drug addiction. J Pharmacol Exp Ther 2007; 320: 499-506. [DOI:10.1124/jpet.105.091512]
22. Kobeissy FH, Jeung JA, Warren MW, Geier JE, Gold MS. Changes in leptin, ghrelin, growth hormone and neuropeptide-Y after an acute model of MDMA and methamphetamine exposure in rats. Addiction Biol 2008; 13: 15-25. [DOI:10.1111/j.1369-1600.2007.00083.x]
23. Saito M, Terada M, Saito T, Takahashi K. [Effects of the long-term administration of methamphetamine on body weight, food intake, blood biochemistry and estrous cycle in rats. Exp Anim 1995; 43: 747-754. (In Japanese) [DOI:10.1538/expanim1978.43.5_747]
24. Cappon GD, Vorhees CV. Plasma and brain methamphetamine concentrations in neonatal rats. Neurotoxicol Teratol 2001; 23: 81-88. [DOI:10.1016/S0892-0362(00)00118-5]
25. Cui C, Sakata‐Haga H, Ohta Ki, Nishida M, Yashiki M, Sawada K, et al. Histological brain alterations following prenatal methamphetamine exposure in rats. Congenit Anom (Kyoto) 2006; 46: 180- 187. [DOI:10.1111/j.1741-4520.2006.00126.x]
26. Mirjalili T, Kalantar SM, Lahijani MS, Sheikhha MH, Talebi A. Congenital abnormality effect of methamphetamine on histological, cellular and chromosomal defects in fetal mice. Iran J Reprod Med 2013; 11: 39-46.
27. Moriya F, Hashimoto Y. A case of fatal hemorrhage in the cerebral ventricles following intravenous use of methamphetamine. Forensic Sci Int 2002; 129: 104-109. [DOI:10.1016/S0379-0738(02)00233-5]
28. Inamasu J, Nakamura Y, Saito R, Kuroshima Y, Mayanagi K, Ohba S. Subcortical hemorrhage caused by methamphetamine abuse: efficacy of the triage system in the differential diagnosis case report. Neurol Med Chir (Tokyo) 2003; 43: 82-84. [DOI:10.2176/nmc.43.82]
29. Quinton MS, Yamamoto BK. Causes and consequences of methamphetamine and MDMA toxicity. AAPS J 2006; 8: 337. [DOI:10.1007/BF02854904]
30. Wells PG, Bhuller Y, Chen CS, Jeng W, Kasapinovic S, Kennedy JC. Molecular and biochemical mechanisms in teratogenesis involving reactive oxygen species. Toxicol Appl Pharmacol 2005; 207: 354-366. [DOI:10.1016/j.taap.2005.01.061]
31. Dixon SD, Bejar R. Echoencephalographic findings in neonates assciiated with maternal cocaine and methamphetamine use: Incidence and clinical correlates. J Pediatr 1989; 115: 770-778. [DOI:10.1016/S0022-3476(89)80661-4]

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به International Journal of Reproductive BioMedicine می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2024 CC BY-NC 4.0 | International Journal of Reproductive BioMedicine

Designed & Developed by : Yektaweb