شنبه 1 دی 1403
[Archive]
دوره 15، شماره 7 - ( 5-1396 )
جلد 15 شماره 7 صفحات 412-403 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Torabi F, Malekzadeh Shafaroudi M, Rezaei N. Combined protective effect of zinc oxide nanoparticles and melatonin on cyclophosphamide-induced toxicity in testicular histology and sperm parameters in adult Wistar rats. IJRM 2017; 15 (7) :403-412
URL: http://ijrm.ir/article-1-842-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-842-fa.html
ترابی فرشته، ملک زاده شفارودی مجید، رضائی نوراله. بررسی اثر محافظتی توأم ملاتونین و نانواکسید روی بر سمیت ناشی از سیکلوفسفامید
درهیستولوژی بیضه و پارمترهای اسپرم در رت‌های بالغ نژاد ویستار
. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1396; 15 (7) :403-412
فرشته ترابی1 
، مجید ملک زاده شفارودی2 ، نوراله رضائی* 3
، مجید ملک زاده شفارودی2 ، نوراله رضائی* 3
1- مرکز تحقیقات ایمونوژنتیک، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مازندران، ساری، ایران
2- گروه علوم تشریح و بیولوژی سلولی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مازندران، ساری، ایران
3- مرکز تحقیقات ایمونوژنتیک، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مازندران، ساری، ایران ،nourrezaei@gmail.com
2- گروه علوم تشریح و بیولوژی سلولی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مازندران، ساری، ایران
3- مرکز تحقیقات ایمونوژنتیک، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مازندران، ساری، ایران ،
چکیده: (4315 مشاهده)
مقدمه: سیکلوفسفامید به عنوان یک داروی ضد سرطان شناخته شده است که عوارض جانبی متعددی روی ارگانهای مختلف نظیر دستگاه تولیدمثلی دارد که میتواند سبب نازایی شود.
هدف: هدف از این مطالعه بررسی اثر محافظتی توأم نانواکسید روی و ملاتونین بر سمیت ناشی از سیکلوفسفامید روی تغییرات هیستوپاتولوژی بیضه و پارامترهای اسپرم میباشد.
موارد و روشها: در این مطالعه تجربی 42 سر موش صحرایی نر بالغ نژاد ویستار در شش گروه مورد بررسی قرار گرفتند: گروه 1 به عنوان گروه کنترل سرم فیزیولوژی بصورت داخل صفاقی دریافت کردند.گروه 2: به ازای هر کیلوگرم وزن بدن 60 میلی گرم سیکلوفسفامید یک دوز در هفته دریافت کردند. گروههای 3 و 4 دو ساعت قبل از سیکلوفسفامید به ترتیب 10 میلیگرم ملاتونین و 5 میلیگرم نانواکسید روی به ازای هر کیلوگرم وزن بدن در هفته دریافت کردند. گروه 5 دو ساعت قبل از سیکلوفسفامید همزمان 10 میلیگرم ملاتونین و 5 میلیگرم نانواکسید روی به ازای هر کیلوگرم وزن بدن در هفته دریافت کردند. گروه 6 همزمان 10 میلیگرم ملاتونین و 5 میلیگرم نانواکسید روی به ازای هر کیلوگرم وزن بدن در هفته دریافت کردند. بعد از 8 هفته درمان رتها کشته شدند و بیضه ها و اپیدیدیم مورد بررسی و آنالیز قرار گرفتند.
نتایج: در گروههایی که سیکلو دریافت کردند در مقایسه با گروه کنترل، وزن بدن و وزن بیضه و اپیدیدیم و نیز پارمتر های اسپرم (شامل شمارش اسپرم، زنده بودن و تحرک) بطور معنیداری کاهش یافته و نیز مرفولوژی غیرطبیعی اسپرم افزایش یافته است (001/0˂p). همچنین تغییرات هیستولوژی متعدد نظیر کاهش معنیدار قطر لولههای منیساز و معیار بیضهای جانسون (با دژنراسیون، ریزش سلولها و تشکیل سلولهای ژانت چند هستهای) در مقایسه با گروه کنترل مشاهده شد. درمان توام (نانواکسید روی و ملاتونین) در مقایسه با درمان تنهایی ملاتونین یا نانواکسید روی تاثیر محافظتی بیشتری بر سمیت ناشی از سیکلو بر دستگاه تولیدمثلی دارد (001/0˂p).
نتیجه گیری: نتایج نشان داد که تجویز همزمان ملاتونین و نانواکسید روی بهتر از تجویز تنهای ملاتونین یا نانواکسید روی، اثر محافظتی بیشتری در آسیب دستگاه تولیدمثلی ناشی از سیکلو دارد که ممکن است این اثر سینرژیست، استرس اکسیداتیو را کاهش دهد.
هدف: هدف از این مطالعه بررسی اثر محافظتی توأم نانواکسید روی و ملاتونین بر سمیت ناشی از سیکلوفسفامید روی تغییرات هیستوپاتولوژی بیضه و پارامترهای اسپرم میباشد.
موارد و روشها: در این مطالعه تجربی 42 سر موش صحرایی نر بالغ نژاد ویستار در شش گروه مورد بررسی قرار گرفتند: گروه 1 به عنوان گروه کنترل سرم فیزیولوژی بصورت داخل صفاقی دریافت کردند.گروه 2: به ازای هر کیلوگرم وزن بدن 60 میلی گرم سیکلوفسفامید یک دوز در هفته دریافت کردند. گروههای 3 و 4 دو ساعت قبل از سیکلوفسفامید به ترتیب 10 میلیگرم ملاتونین و 5 میلیگرم نانواکسید روی به ازای هر کیلوگرم وزن بدن در هفته دریافت کردند. گروه 5 دو ساعت قبل از سیکلوفسفامید همزمان 10 میلیگرم ملاتونین و 5 میلیگرم نانواکسید روی به ازای هر کیلوگرم وزن بدن در هفته دریافت کردند. گروه 6 همزمان 10 میلیگرم ملاتونین و 5 میلیگرم نانواکسید روی به ازای هر کیلوگرم وزن بدن در هفته دریافت کردند. بعد از 8 هفته درمان رتها کشته شدند و بیضه ها و اپیدیدیم مورد بررسی و آنالیز قرار گرفتند.
نتایج: در گروههایی که سیکلو دریافت کردند در مقایسه با گروه کنترل، وزن بدن و وزن بیضه و اپیدیدیم و نیز پارمتر های اسپرم (شامل شمارش اسپرم، زنده بودن و تحرک) بطور معنیداری کاهش یافته و نیز مرفولوژی غیرطبیعی اسپرم افزایش یافته است (001/0˂p). همچنین تغییرات هیستولوژی متعدد نظیر کاهش معنیدار قطر لولههای منیساز و معیار بیضهای جانسون (با دژنراسیون، ریزش سلولها و تشکیل سلولهای ژانت چند هستهای) در مقایسه با گروه کنترل مشاهده شد. درمان توام (نانواکسید روی و ملاتونین) در مقایسه با درمان تنهایی ملاتونین یا نانواکسید روی تاثیر محافظتی بیشتری بر سمیت ناشی از سیکلو بر دستگاه تولیدمثلی دارد (001/0˂p).
نتیجه گیری: نتایج نشان داد که تجویز همزمان ملاتونین و نانواکسید روی بهتر از تجویز تنهای ملاتونین یا نانواکسید روی، اثر محافظتی بیشتری در آسیب دستگاه تولیدمثلی ناشی از سیکلو دارد که ممکن است این اثر سینرژیست، استرس اکسیداتیو را کاهش دهد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Caneguim BH, Serpeloni JM, Maciel MAM, de Syllos Cólus IM, de Fatima Paccola Mesquita S. Reduction of DNA-damage by croton cajucara methanolic extract but not the testicular alterations induced by doxorubicin. J Med Plants Res 2011; 5: 3277-3285.
2. Avenda-o C, Menendez JC. Medicinal chemistry of anticancer drugs: Elsevier; 2015.
3. Nayak G, Vadinkar A, Nair S, Kalthur SG, D'Souza AS, Shetty P, et al. Sperm abnormalities induced by pre‐pubertal exposure to cyclophosphamide are effectively mitigated by Moringa oleifera leaf extract. Andrologia 2016; 48: 125-136. [DOI:10.1111/and.12422]
4. Das UB, Mallick M, Debnath JM, Ghosh D. Protective effect of ascorbic acid on cyclophosphamide-induced testicular gametogenic and androgenic disorders in male rats. Asian J Androl 2002; 4: 201-208.
5. Badkoobeh P, Parivar K, Kalantar SM, Hosseini SD, Salabat A. Effect of nano-zinc oxide on doxorubicin-induced oxidative stress and sperm disorders in adult male Wistar rats. Iran J Reprod Med 2013; 11: 355.
6. Yuan D, Wang H, He H, Jia L, He Y, Wang T, et al. Protective Effects of Total Flavonoids from Epimedium on the Male Mouse Reproductive System Against Cyclophosphamide‐Induced Oxidative Injury by Up‐Regulating the Expressions of SOD3 and GPX1. Phytother Res 2014; 28: 88-97. [DOI:10.1002/ptr.4956]
7. Kim S-H, Lee I-C, Baek H-S, Moon C, Kim S-H, Kim J-C. Protective effect of diallyl disulfide on cyclophosphamide-induced testicular toxicity in rats. Lab Anim Res 2013; 29: 204-211. [DOI:10.5625/lar.2013.29.4.204]
8. Çeribaşi AO, Türk G, Sönmez M, Sakin F, Ateşşahin A. Toxic Effect of Cyclophosphamide on Sperm Morphology, Testicular Histology and Blood Oxidant‐Antioxidant Balance, and Protective Roles of Lycopene and Ellagic Acid. Basic Clin Pharmacol Toxicol 2010; 107: 730-736. [DOI:10.1111/j.1742-7843.2010.00571.x]
9. Sakr SA, Abdel-Samie HA. Effect of Ginkgo biloba extract on cyclophosphamide-induced reproductive toxicity and oxidative stress in male albino mice. World J Pharm Sci 2014; 3: 16-25.
10. Ghobadi E, Moloudizargari M, Asghari MH, Abdollahi M. The mechanisms of cyclophosphamide-induced testicular toxicity and the protective agents. Exp Opin Drug Metab Toxicol 2017; 13: 525-536. [DOI:10.1080/17425255.2017.1277205]
11. Hegazy RM, Faruk EM, Elgendy FS, Mehlab EM. Melatonin versus amege-3 fatty acid as possible antioxidants against cyclophosphamide-induced pulmonary toxicity in adult albino rats. Int J Pharm Bio Sci 2015; 6: 440-452.
12. Othman AI, Edrees GM, El-Missiry MA, Ali DA, Aboel-Nour M, Dabdoub BR. Melatonin controlled apoptosis and protected the testes and sperm quality against bisphenol A-induced oxidative toxicity. Toxicol Indust Health 2016; 32: 1537-1549. [DOI:10.1177/0748233714561286]
13. 1Lu W-P, Mei X-T, Wang Y, Zheng Y-P, Xue Y-F, Xu D-H. Zn (II)–curcumin protects against oxidative stress, deleterious changes in sperm parameters and histological alterations in a male mouse model of cyclophosphamide-induced reproductive damage. Environment Toxicol Pharmacol 2015; 39: 515-524. [DOI:10.1016/j.etap.2014.12.014]
14. Dani V, Dhawan D. Radioprotective role of zinc following single dose radioiodine (^1^3^1I) exposure to red blood cells of rats. Ind J Med Res 2005; 122: 338.
15. Tuncer I, Sunar F, Toy H, Baltaci A, Mogulkoc R. Histological effects of zinc and melatonin on rat testes. Bratislavske lekarske listy 2010; 112: 425-427.
16. Talebi AR, Khorsandi L, Moridian M. The effect of zinc oxide nanoparticles on mouse spermatogenesis. J Assist Reprod Genet 2013; 30: 1203-1209. [DOI:10.1007/s10815-013-0078-y]
17. Suri SS, Fenniri H, Singh B. Nanotechnology-based drug delivery systems. J Occup Med Toxicol 2007; 2: 1. [DOI:10.1186/1745-6673-2-16]
18. Baltaci A, Mogulkoc R. Pinealectomy and melatonin administration in rats: their effects on plasma leptin levels and relationship with zinc. Acta Biol Hungarica 2007; 58: 335-343. [DOI:10.1556/ABiol.58.2007.4.1]
19. Jalali AS, Hasanzadeh S, Malekinejad H. Achillea millefolium inflorescence aqueous extract ameliorates cyclophosphamide-induced toxicity in rat testis: stereological evidences. Chin J Nat Med 2012; 10: 247-254. [DOI:10.3724/SP.J.1009.2012.00247]
20. Rezaei N, Chian R-C. Effects of essential and non-essential amino acids on in-vitro maturation, fertilization and development of immature bovine oocytes. Int J Reprod BioMed 2005; 3: 36-41.
21. World Health Organization. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen.5th Ed. Switzerland; 2010.
22. Johnsen S. Testicular biopsy score count-a method for registration of spermatogenesis in human testes: normal values and results in 335 hypogonadal males. Hormone Res Paediatr 1970; 1: 2-25. [DOI:10.1159/000178170]
23. Ilbey YO, Ozbek E, Simsek A, Otunctemur A, Cekmen M, Somay A. Potential chemoprotective effect of melatonin in cyclophosphamide-and cisplatin-induced testicular damage in rats. Fertil Steril 2009; 92: 1124-1132. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.07.1758]
24. Quita SM. Evaluation of lemon fruit extract as an antioxidant agent against histopathological changes induced by cyclophosphamide in the testes of albino mice. Electronic Physician 2016; 8: 1824. [DOI:10.19082/1824]
25. Selvakumar E, Prahalathan C, Mythili Y, Varalakshmi P. Protective effect of dl-α-lipoic acid in cyclophosphamide induced oxidative injury in rat testis. Reprod Toxicol 2004; 19: 163-167. [DOI:10.1016/j.reprotox.2004.06.015]
26. Manson JM, Kang Y. Test methods for assessing female reproductive and developmental toxicology. Principles Methods Toxicol 1994; 27: 989-1034.
27. Rezvanfar M, Sadrkhanlou R, Ahmadi A, Shojaei-Sadee H, Mohammadirad A, Salehnia A, et al. Protection of cyclophosphamide-induced toxicity in reproductive tract histology, sperm characteristics, and DNA damage by an herbal source; evidence for role of free-radical toxic stress. Hum Exp Toxicol 2008; 27: 901-910. [DOI:10.1177/0960327108102046]
28. Ateşşahin A, Şahna E, Türk G, Çeribaşi AO, Yılmaz S, Yüce A, et al. Chemoprotective effect of melatonin against cisplatin‐induced testicular toxicity in rats. J Pineal Res 2006; 41: 21-27. [DOI:10.1111/j.1600-079X.2006.00327.x]
29. Elangovan N, Chiou T-J, Tzeng W-F, Chu S-T. Cyclophosphamide treatment causes impairment of sperm and its fertilizing ability in mice. Toxicology 2006; 222: 60-70. [DOI:10.1016/j.tox.2006.01.027]
30. Tripathi D, Jena G. Astaxanthin inhibits cytotoxic and genotoxic effects of cyclophosphamide in mice germ cells. Toxicology 2008; 248: 96-103. [DOI:10.1016/j.tox.2008.03.015]
31. Zhang K, Lv Z, Jia X, Huang D. Melatonin prevents testicular damage in hyperlipidaemic mice. Andrologia 2012; 44: 230-236. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2012.01272.x]
32. Ebisch I, Thomas C, Peters W, Braat D, Steegers-Theunissen R. The importance of folate, zinc and antioxidants in the pathogenesis and prevention of subfertility. Hum Reprod Update 2007; 13: 163-174. [DOI:10.1093/humupd/dml054]
33. Mozaffari Z, Parivar K, Roodbari NH, Irani S. Histopathological evaluation of the toxic effects of zinc oxide (ZnO) nanoparticles on testicular tissue of NMRI adult mice. Adv Stud Biol 2015; 7: 275- 291. [DOI:10.12988/asb.2015.5425]
34. Abbasalipourkabir R, Moradi H, Zarei S, Asadi S, Salehzadeh A, Ghafourikhosroshahi A, et al. Toxicity of zinc oxide nanoparticles on adult male Wistar rats. Food Chem Toxicol 2015; 84: 154-160. [DOI:10.1016/j.fct.2015.08.019]
35. Bhattacharjee A, Basu A, Biswas J, Sen T, Bhattacharya S. Chemoprotective and chemosensitizing properties of selenium nanoparticle (Nano-Se) during adjuvant therapy with cyclophosphamide in tumor-bearing mice. Mol Cell Biochem 2017; 424: 13-33. [DOI:10.1007/s11010-016-2839-2]
36. Matsui H, Mitsumori K, Yasuhara K, Onodera H, Shimo T, Takahashi M. Morphological evaluation of cyclophosphamide testicular toxicity in rats using quantitative morphometry of spermatogenic cycle stages. J Toxicol Sci 1995; 20: 407-414. [DOI:10.2131/jts.20.4_407]
37. Kamarzaman S, Sha'ban M, Rahman SA, Rahman SA. Effects on mouse spermatogenesis and DNA fragmentation following exposure to cyclophosphamide and thymoquinone. Eur Int J Sci Technol 2013; 2: 119-136.
38. Abd-El hameed Edrees Z, Embaby AS. The effect of melatonin on the testes of rats treated with cyclophosphamide: histological and immunohistochemical study. Egypt J Histol 2012; 35: 822-832. [DOI:10.1097/01.EHX.0000419785.84206.d2]
39. Al-Malki AL. Synergestic effect of lycopene and Melatonin against the genesis of oxidative stress induced by cyclophosphamide in rats. Toxicol Indust Health 2014; 30: 570-575. [DOI:10.1177/0748233712459916]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
