جمعه 7 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 11، شماره 9 - ( 9-1392 )
جلد 11 شماره 9 صفحات 0-747 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Hoseinzadeh-Sani S K, Barati F, Khaksary Mahabady M. The effects of ex vivo cold-storage on cryopreservation of the goat (Caprus hircus) epididymal sperm. IJRM 2013; 11 (9) :747-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-462-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-462-fa.html
حسین زاده ثانی سید کمال الدین، براتی فرید، خاکساری مهابادی محمود. اثر ذخیره سازی بیضه و اپیدیدم در سرما بر روی انجماد اسپرم اپیدیدیمی بز اهلی (Caprus hircus) . International Journal of Reproductive BioMedicine. 1392; 11 (9) :747-0
1- گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران، اهواز، ایران
2- گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران، اهواز، ایران ، fabrtir@yahoo.com
3- گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران، اهواز، ایران
2- گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران، اهواز، ایران ، fabrtir@yahoo.com
3- گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران، اهواز، ایران
چکیده: (2288 مشاهده)
مقدمه: مطالعات مختلفی روی ذخیرهسازی کوتاه مدت و بلندمدت اسپرم اپیدیدیمی گونههای مختلف تمرکز کردهاند. این رهیافتها ممکن است در محافظت از منابع ژنتیکی بالقوه حیات وحش در حال انقراض و یا درمان برخی ناباروریها در انسان کمککننده باشند. مطالعات اندکی روی ذخیرهسازی و انجماد اسپرم اپیدیدیم بز اهلی صورت پذیرفته است.
هدف: هدف از مطالعه حاضر ارزیابی اثرات سردسازی اپیدیدیم بر انجماد اسپرم اپیدیدیمی بز اهلی (Caprus hircus) میباشد.
مواد و روشها: در یک طرح آزمایشی خرد شده بیضه اپیدیمهای بز (40 زوج) به 4 گروه زمان ذخیره سازی (صفر، 24، 48 و 72 ساعت) در یخچال به صورت مساوی تقسیم شدند، سپس با استفاده از بیوکسل و رقیقسازی یک مرحلهای منجمد شده و پارامترهای اسپرم قبل و بعد از انجماد ارزیابی شدند.
نتایج: مدت زمان سردسازی همانند انجماد در هر زمانی از سردسازی میزان زنده مانی و تحرک پیشرونده اسپرم را کاهش و ناهنجاریهای اسپرم را افزایش داد (0/05>p). انجماد به طور معناداری درصد اسپرمهای حاوی قطره پروتوپلاسمیک را کاهش داد (0/05>p). در پی انجماد در همه زمانهای ذخیرهسازی، به جز زمان صفر، درصد سرهای کنده شده افزایش یافت (0/05>p).
نتیجهگیری: نتایج نشان داد ذخیرهسازی اپیدیدیم در یخچال به طور کامل از آسیبهای انجماد اسپرم محافظت نمیکند.
هدف: هدف از مطالعه حاضر ارزیابی اثرات سردسازی اپیدیدیم بر انجماد اسپرم اپیدیدیمی بز اهلی (Caprus hircus) میباشد.
مواد و روشها: در یک طرح آزمایشی خرد شده بیضه اپیدیمهای بز (40 زوج) به 4 گروه زمان ذخیره سازی (صفر، 24، 48 و 72 ساعت) در یخچال به صورت مساوی تقسیم شدند، سپس با استفاده از بیوکسل و رقیقسازی یک مرحلهای منجمد شده و پارامترهای اسپرم قبل و بعد از انجماد ارزیابی شدند.
نتایج: مدت زمان سردسازی همانند انجماد در هر زمانی از سردسازی میزان زنده مانی و تحرک پیشرونده اسپرم را کاهش و ناهنجاریهای اسپرم را افزایش داد (0/05>p). انجماد به طور معناداری درصد اسپرمهای حاوی قطره پروتوپلاسمیک را کاهش داد (0/05>p). در پی انجماد در همه زمانهای ذخیرهسازی، به جز زمان صفر، درصد سرهای کنده شده افزایش یافت (0/05>p).
نتیجهگیری: نتایج نشان داد ذخیرهسازی اپیدیدیم در یخچال به طور کامل از آسیبهای انجماد اسپرم محافظت نمیکند.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Fernández-Santos MR, Soler AJ, Ramón M, Ros-Santaella JL, Maroto-Morales A, García-Álvarez O, et al. Effect of post-mortem time on post-thaw characteristics of Spanish ibex (Capra pyrenaica) spermatozoa. Anim Reprod Sci 2011; 129: 56-66. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2011.09.011]
2. Azambuja R, Badalotti M, Teloken C, Michelon J, Petracco A. Successful birth after injection of frozen human oocytes with frozen epididymal spermatozoa. Reprod Biomed Online 2005; 11: 449-451. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)61138-8]
3. Talebi AR, Khalili MA, Nahangi H, Abbasi A, Anvari M. Evaluation of epididymal necrospermia following experimental chronic spinal cord injury in rat. Iran J Reprod Med 2007; 5: 171-176.
4. Dehghan MH, Martin T, Dehghanan R. Antifertility effect of Iranian neem seed alcoholic extract on epididymal sperm of mice. Iran J Reprod Med 2005; 2: 83-89.
5. Barati F, Papahn AA, Afrough M, Barati M. Effects of Tyrode's solution osmolarities and milk on bull sperm storage above zero temperatures. Iran J Reprod Med 2011; 9: 25-30.
6. Ganan N, Gomendio M, Roldan ER. Effect of storage of domestic cat (Felis catus) epididymides at 5 degrees C on sperm quality and cryopreservation. Theriogenology 2009; 72: 1268-1277. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2009.07.023]
7. Barati F, Khaksary mahabady M, Mohammadi GhA. Cryopreservation of in situ cool stored buffalo (Bubalus bubalis) epididymal sperm. Iran J Vet Res 2009; 10: 339-345.
8. Hallak J, Mahran A, Chae J, Agarwal A. Poor semen quality from patients with malignancies does not rule out sperm banking. Urol Res 2000; 28: 281-284. [DOI:10.1007/s002400000129]
9. Kaabi M, Paz P, Alvarez M, Anel E, Boixo JC, Rouissi H, et al. Effect of epididymis handling conditions on the quality of ram spermatozoa recovered post-mortem. Theriogenology 2003; 60: 1249-1259. [DOI:10.1016/S0093-691X(03)00139-0]
10. Ehling C, Rath D, Struckmann C, Frenzel A, Schindler L, Niemann H. Utilization of frozen-thawed epididymal ram semen to preserve genetic diversity in Scrapie susceptible sheep breeds. Theriogenology 2006; 66: 2160-2164. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2006.07.003]
11. Malo C, Gil L, Cano R, Martinez F, Gale I. Antioxidant effect of rosemary (Rosmarinus officinalis) on boar epididymal spermatozoa during cryopreservation. Theriogenology 2011; 75: 1735-1741. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2011.01.013]
12. Datta U, Chandra Sekar M, Hembram ML, Dasgupta R. Development of a new method to preserve caprine cauda epididymal spermatozoa in-situ at -10oC with electrolyte free medium. J Assist Reprod Genet 2009; 26: 467-473. [DOI:10.1007/s10815-009-9344-4]
13. Herold FC, Aurich JE, Gerber D. Epididymal sperm from the African buffalo (Syncerus caffer) can be frozen successfully with AndroMed® and with Triladyl™ but the addition of bovine seminal plasma is detrimental. Theriogenology 2004; 61: 715-724. [DOI:10.1016/S0093-691X(03)00256-5]
14. Axnér E, Hermansson U, Linde-Forsberg C. The effect of Equex STM paste and sperm morphology on post-thaw survival of cat epididymal spermatozoa. Anim Reprod Sci 2004; 84: 179-191. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2003.11.003]
15. Morton KM, Bathgate R, Evans G, Maxwell WM. Cryopreservation of epididymal alpaca (Vicugna pacos) sperm: a comparison of citrate-, Tris- and lactose-based diluents and pellets and straws. Reprod Fertil Dev 2007; 19: 792-796. [DOI:10.1071/RD07049]
16. Graham JK. Effect of seminal plasma on the motility of epididymal and ejaculated spermatozoa of the ram and bull during the cryopreservation process. Theriogenology 1994; 41: 1151-1162. [DOI:10.1016/S0093-691X(05)80037-8]
17. Herold FC, de Haas K, Colenbrander B, Gerber D. Comparison of equilibration times when freezing epididymal sperm from African buffalo (Syncerus caffer) using Triladyl™ or AndroMed®. Theriogenology 2006; 66: 1123-1130. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2006.03.007]
18. SAS Institute Inc. SAS/STAT 9.1 Usere's guide. Cary NC; SAS Institue Inc 2004: 1731-1907.
19. Saragusty J, Gacitua H, King R, Arav A. Post-mortem semen cryopreservation and characterization in two different endangered gazelle species (Gazella gazella and Gazella dorcas) and one subspecies (Gazella gazelle acaiae). Theriogenology 2006; 66: 775-784. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2006.01.055]
20. Hori T, Uehara Y, Kawakami E, Tsutsui T. Influence of the time between removal and cooling of the canine epididymis on post-thaw caudal epididymal sperm quality. J Vet Med Sci 2009; 71: 811-815. [DOI:10.1292/jvms.71.811]
21. Blash S, Melican D, Gavin W. Cryopreservation of epididymal sperm obtained at necropsy from goats. Theriogenology 2000; 54: 899-905. [DOI:10.1016/S0093-691X(00)00400-3]
22. Kundu CN, Chakrabarty J, Dutta P, Bhattacharyya D, Ghosh A, Majumder GC. Effect of dextrans on cryopreservation of goat cauda epididymal spermatozoa using a chemically defined medium. Reproduction 2002; 123: 907-913. [DOI:10.1530/rep.0.1230907]
23. Kundu CN, Chakraborty J, Dutta P, Bhattacharyya D, Ghosh A, Majumder GC. Development of a simple sperm cryopreservation model using a chemically defined medium and goat cauda epididymal spermatozoa. Cryobiology 2000; 40: 117-125. [DOI:10.1006/cryo.2000.2230]
24. Kundu CN, Das K, Majumder GC. Effect of amino acids on goat cauda epididymal sperm cryopreservation using a chemically defined model system. Cryobiology 2001; 42: 21-27. [DOI:10.1006/cryo.2001.2296]
25. Santiago-Moreno J, Toledano-Díaz A, Pulido-Pastor A, Dorado J, Gómez-Brunet A, López-Sebastián A. Effect of egg yolk concentration on cryopreserving Spanish ibex (Capra pyrenaica) epididymal spermatozoa. Theriogenology 2006; 66: 1219-1226. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2006.03.031]
26. Santiago-Moreno J, Toledano-Diaz A, Dorado J, Pulido-Pastor A, Coloma MA, Lopez-Sebastian A. Recovery and cryopreservation of Spanish ibex epididymal spermatozoa. Arch Androl 2007; 53: 309-316. [DOI:10.1080/01485010701730674]
27. Yu WJ, Lee BJ, Nam SY, Ahn B, Hong JT, Do JC, et al. Reproductive disorders in pubertal and adult phase of the male rats exposed to vinclozolin during puberty. J Vet Med Sci 2004; 66: 847-853. [DOI:10.1292/jvms.66.847]
28. Chandiran IS, Vrushabendra Swamy BM, Kumar BP, Narayanan V, Kumar SV, Muralidharan P, Studies on spermatotoxic effect of ethanolic extract of root of "Caesalpinia digyna (Rottler)". Pharmacol Online 2008; 2: 790-795.
29. Boockfor FR, Blake CA. Chronic administration of 4-tert-octylphenol to adult male rats causes shrinkage of the testes and male accessory sex organs, disrupts spermatogenesis, and increases the incidence of sperm deformities. Biol Reprod 1997; 57: 267-277. [DOI:10.1095/biolreprod57.2.267]
30. Baccetti B, Capitani S, Collodel G, Di Cairano G, Gambera L, Moretti E, et al. Genetic sperm defects and consanguinity. Hum Reprod 2001; 16: 1365-1371. [DOI:10.1093/humrep/16.7.1365]
31. Collodel G, Moretti E. Sperm morphology and aneuploidies: Defects of supposed genetic origin. Andrologia 2006; 38: 208-215. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2006.00742.x]
32. Pant HC, Mittal AK, Kasiraj R, Prabhakar JH, Misra AK. Abnormal detached heads: A characteristic morphological abnormality in spermatozoa of Holstein Friesian x Sahiwal crossbred bulls. Indian J Anim Sci 2002; 72: 316-318.
33. Barth AD. Sperm accumulation in the ampullae and cauda epididymides of bulls. Anim Reprod Sci 2007; 102: 238-246. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2006.11.005]
34. Young RJ. Cross-link formation at the head-tail junction of mammalian spermatozoa during aging is dependent on sperm motility. Arch Androl 1985; 14: 15-19. [DOI:10.3109/01485018508987273]
35. Nöthling JO, Volkmann DH. Case report Dilatation of the ampullae and an increased incidence of loose sperm heads after bilateral vesiculectomy in a bull. Reprod Domes Anim 1997; 32: 321-324. [DOI:10.1111/j.1439-0531.1997.tb01303.x]
36. Cooper TG. The epididymis, cytoplasmic droplets and male fertility. Asian J Androl 2011; 13: 130-138. [DOI:10.1038/aja.2010.97]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
