شنبه 1 دی 1403
[Archive]
دوره 12، شماره 1 - ( 11-1392 )
جلد 12 شماره 1 صفحات 64-57 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Hatami S, Zavareh S, Salehnia M, Lashkarbolouki T, Ghorbanian M T, Karimi I. The impact of alpha lipoic acid on developmental competence of mouse vitrified pre-antral follicles in comparison to those isolated from vitrified ovaries. IJRM 2014; 12 (1) :57-64
URL: http://ijrm.ir/article-1-474-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-474-fa.html
حاتمی سحر، زواره سعید، صالح نیا مژده، لشکربلوکی تقی، قربانیان محمدتقی، کریمی اسحاق. تأثیر آلفا لیپوئیک اسید بر توانائی تکوین فولیکول های پره آنترال منجمد شده موش در مقایسه با گروهی که از تخمدان منجمد جدا شده اند.. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1392; 12 (1) :57-64
سحر حاتمی1 
، سعید زواره* 1، مژده صالح نیا2 ، تقی لشکربلوکی1 ، محمدتقی قربانیان1 ، اسحاق کریمی3
، سعید زواره* 1، مژده صالح نیا2 ، تقی لشکربلوکی1 ، محمدتقی قربانیان1 ، اسحاق کریمی3
1- دانشکده زیست شناسی، دانشگاه دامغان، دامغان، ایران
2- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
3- آزمایشگاه زیست شناسی سلولی و مولکولی، گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
2- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
3- آزمایشگاه زیست شناسی سلولی و مولکولی، گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
چکیده: (3172 مشاهده)
مقدمه: انجماد بافت تخمدان و فولیکول پره آنترال، چشم اندازی امیدبخش برای حفظ باروری زنان است.
هدف: هدف از مطالعه حاضر، ارزیابی توانائی تکوین فولیکول پره آنترال منجمد شده موش در مقایسه با فولیکول های پره آنترال جدا شده از تخمدان منجمد شده در حضور آلفا لیپوئیک اسید بود.
مواد و روشها: فولیکولهای پره آنترال منجمد-ذوب شده و فولیکولهای پره آنترال مشتق شده از تخمدان تازه و تخمدان منجمد- ذوب شده به طور جداگانهای با و یا بدون آلفا لیپوئیک اسید کشت داده شدند و سپس با اضافه کردن hCG تخمکگذاری القاء شد. رشد فولیکول، بلوغ تخمک و تکوین جنین ارزیابی شد.
نتایج: اندازه و میزان تکوین فولیکول، بلوغ تخمک و تکوین جنین در گروههای در مان شده با آلفا لیپوئیک اسید در مقایسه با گروههای مرتبط درمان نشده به طور معنیداری بیشتر بود. پارامتر های مذبور به طور معنیداری در فولیکولهای منجمد-ذوب شده در مقایسه با فولیکولهای جدا شده از تخمدان منجمد-ذوب شده بیشتر بود.
نتیجهگیری: این یافتهها با توجه به افزایش نرخ پارامترهای تکوین از عملکرد برتر فولیکولهای پره آنترال منجمدشده در مقایسه با زمانی که از تخمدان منجمد شده جدا شوند، حمایت میکند. بعلاوه آلفا لیپوئیک اسید، بلوغ آزمایشگاهی فولیکولهای پره آنترال را در نمونههای انجمادی و غیر انجمادی بهبود بخشید.
هدف: هدف از مطالعه حاضر، ارزیابی توانائی تکوین فولیکول پره آنترال منجمد شده موش در مقایسه با فولیکول های پره آنترال جدا شده از تخمدان منجمد شده در حضور آلفا لیپوئیک اسید بود.
مواد و روشها: فولیکولهای پره آنترال منجمد-ذوب شده و فولیکولهای پره آنترال مشتق شده از تخمدان تازه و تخمدان منجمد- ذوب شده به طور جداگانهای با و یا بدون آلفا لیپوئیک اسید کشت داده شدند و سپس با اضافه کردن hCG تخمکگذاری القاء شد. رشد فولیکول، بلوغ تخمک و تکوین جنین ارزیابی شد.
نتایج: اندازه و میزان تکوین فولیکول، بلوغ تخمک و تکوین جنین در گروههای در مان شده با آلفا لیپوئیک اسید در مقایسه با گروههای مرتبط درمان نشده به طور معنیداری بیشتر بود. پارامتر های مذبور به طور معنیداری در فولیکولهای منجمد-ذوب شده در مقایسه با فولیکولهای جدا شده از تخمدان منجمد-ذوب شده بیشتر بود.
نتیجهگیری: این یافتهها با توجه به افزایش نرخ پارامترهای تکوین از عملکرد برتر فولیکولهای پره آنترال منجمدشده در مقایسه با زمانی که از تخمدان منجمد شده جدا شوند، حمایت میکند. بعلاوه آلفا لیپوئیک اسید، بلوغ آزمایشگاهی فولیکولهای پره آنترال را در نمونههای انجمادی و غیر انجمادی بهبود بخشید.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Amorim CA, Goncalves PB, Figueiredo JR. Cryopreservation of oocytes from pre-antral follicles. Hum Reprod Update 2003; 9: 119-129. [DOI:10.1093/humupd/dmg014]
2. Posillico S, Kader A, Falcone T, Agarwal A. Ovarian Tissue Vitrification: Modalities, Challenges and Potentials. Curr Women's Health Rev 2010; 6: 352-366. [DOI:10.2174/157340410793362104]
3. Huang L, Mo Y, Wang W, Li Y, Zhang Q, Yang D. Cryopreservation of human ovarian tissue by solid-surface vitrification. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2008; 139: 193-198. [DOI:10.1016/j.ejogrb.2008.03.002]
4. Isachenko V, Lapidus I, Isachenko E, Krivokharchenko A, Kreienberg R, Woriedh M, et al. Human ovarian tissue vitrification versus conventional freezing: morphological, endocrinological, and molecular biological evaluation. Reproduction 2009; 138: 319-327. [DOI:10.1530/REP-09-0039]
5. Liebermann J, Nawroth F, Isachenko V, Isachenko E, Rahimi G, Tucker MJ. Potential importance of vitrification in reproductive medicine. Biol Reprod 2002; 67: 1671-1680. [DOI:10.1095/biolreprod.102.006833]
6. Zavareh S, Salehnia M, Saberivand A. Comparison of Different Vitrification Procedures on Developmental Competence of Mouse Germinal Vesicle Oocytes in the Presence or Absence of Cumulus Cells. Int J Fertil Steril 2009; 3: 111-118.
7. Desai N, AbdelHafez F, Ali MY, Sayed EH, Abu-Alhassan AM, Falcone T, et al. Mouse ovarian follicle cryopreservation using vitrification or slow programmed cooling: assessment of in vitro development, maturation, ultra-structure and meiotic spindle organization. J Obstet Gynaecol Res 2011; 37: 1-12. [DOI:10.1111/j.1447-0756.2010.01215.x]
8. Amorim CA, Van Langendonckt A, David A, Dolmans MM, Donnez J. Survival of human pre-antral follicles after cryopreservation of ovarian tissue, follicular isolation and in vitro culture in a calcium alginate matrix. Hum Reprod 2009; 24: 92-99. [DOI:10.1093/humrep/den343]
9. Abedelahi A, Salehnia M, Allameh AA, Davoodi D. Sodium selenite improves the in vitro follicular development by reducing the reactive oxygen species level and increasing the total antioxidant capacity and glutathione peroxide activity. Hum Reprod 2010; 25: 977-985. [DOI:10.1093/humrep/deq002]
10. Oktem O, Oktay K. The role of extracellular matrix and activin-A in in vitro growth and survival of murine preantral follicles. Reprod Sci 2007; 14: 358-366. [DOI:10.1177/1933719107303397]
11. Liu HC, He Z, Rosenwaks Z. Mouse ovarian tissue cryopreservation has only a minor effect on in vitro follicular maturation and gene expression. J Assist Reprod Genet 2003; 20: 421-431. [DOI:10.1023/A:1026284609730]
12. Wang AW, Zhang H, Ikemoto I, Anderson DJ, Loughlin KR. Reactive oxygen species generation by seminal cells during cryopreservation. Urology 1997; 49: 921-925. [DOI:10.1016/S0090-4295(97)00070-8]
13. Rahimi G, Isachenko E, Sauer H, Isachenko V, Wartenberg M, Hescheler J, et al. Effect of different vitrification protocols for human ovarian tissue on reactive oxygen species and apoptosis. Reprod Fertil Dev 2003; 15: 343-349. [DOI:10.1071/RD02063]
14. Yeoman RR, Williams LE, Abee CR. Low oxygen inhibits but complex high-glucose mediumfacilitates in vitro maturation of squirrel monkey oocyte-granulos a cell complexes. J Assist Reprod Genet 1999; 16: 102-107. [DOI:10.1023/A:1022525108241]
15. Agarwal A, Said TM, Bedaiwy MA, Banerjee J, Alvarez JG. Oxidative stress in an assisted reproductive techniques setting. Fertil Steril 2006; 86: 503-512. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2006.02.088]
16. Agarwal A, Gupta S, Sharma R. Oxidative stress and its implications in female infertility- a clinician's perspective. Reprod Biomed Online 2005; 11: 641-650. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)61174-1]
17. Sajal Gupta, Lucky Sekhon, Kim Y, Ashok Agarwal. The Role of Oxidative Stress and Antioxidants in Assisted Reproduction. Women's Health Rev 2010; 6: 227-238. [DOI:10.2174/157340410792007046]
18. Bedaiwy MA, Falcone T, Mohamed MS, Aleem AA, Sharma RK, Worley SE, et al. Differential growth of human embryos in vitro: role of reactive oxygen species. Fertil Steril 2004; 82: 593-600. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2004.02.121]
19. Packer L, Witt EH, Tritschler HJ. Alpha-lipoic acid as a biological antioxidant. Free Radic Biol Med 1995; 19: 227-250. [DOI:10.1016/0891-5849(95)00017-R]
20. Packer L, Tritschler HJ, Wessel K. Neuroprotection by the metabolic antioxidant alpha-lipoic acid. Free Radic Biol Med 1997; 22: 359-378. [DOI:10.1016/S0891-5849(96)00269-9]
21. Talebi A, Zavareh S, Kashani MH, Lashgarbluki T, Karimi I. The effect of alpha lipoic acid on the developmental competence of mouse isolated preantral follicles. J Assist Reprod Genet 2012; 29: 175-183. [DOI:10.1007/s10815-011-9706-6]
22. Zhang H, Wu B, Liu H, Qiu M, Liu J, Zhang Y, et al. Improving development of cloned goat embryos by supplementing alpha-lipoic acid to oocyte in vitro maturation medium. Theriogenology 2013; 80: 228-233. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2013.03.027]
23. Kuwayama M, Vajta G, Kato O, Leibo SP. Highly efficient vitrification method for cryopreservation of human oocytes. Reprod Biomed Online 2005; 11: 300-308. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60837-1]
24. Chen SU, Chien CL, Wu MY, Chen TH, Lai SM, Lin CW, et al. Novel direct cover vitrification for cryopreservation of ovarian tissue increase follicle viability and pregnancy capability in mice. Hum Reprod Update 2006; 21: 2794-2800. [DOI:10.1093/humrep/del210]
25. Taghavi A. Comparison of apoptosis, viability and maturation in mouse preantral follicle after slow freezing and cryotop vitrification. Tehran, Tarbiat Modares; 2009.
26. Bagchi A, Woods EJ, Critser JK. Cryopreservation and vitrification: recent advances in fertility preservation technologies. Exp Rev Med Dev 2008; 5: 359-370. [DOI:10.1586/17434440.5.3.359]
27. Courbiere B, Caquant L, Mazoyer C, Franck M, Lornage J, Salle B. Difficulties improving ovarian functional recovery by microvascular transplantation and whole ovary vitrification. Fertil Steril 2009; 91: 2697-2706. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.03.012]
28. Chen SU, Chien CL, Wu MY, Chen TH, Lai SM, Lin CW, et al. Novel direct cover vitrification for cryopreservation of ovarian tissues increases follicle viability and pregnancy capability in mice. Hum Reprod 2006; 21: 2794-2800. [DOI:10.1093/humrep/del210]
29. Salehnia M, Abbasian Moghadam E, Rezazadeh Velojerdi M. Ultrastructure of follicles after vitrification of mouse ovarian tissue. Fertil Steril 2002; 78: 644-645. [DOI:10.1016/S0015-0282(02)03287-9]
30. Nagai S, Mabuchi T, Hirata S, Shoda T, Kasai T, Yokota S, et al. Correlation of abnormal mitochondrial distribution in mouse oocytes with reduced developmental competence. Tohoku J Exp Med 2006; 210: 137-144. [DOI:10.1620/tjem.210.137]
31. Combelles CM, Gupta S, Agarwal A. Could oxidative stress influence the in-vitro maturation of oocytes? Reprod Biomed Online 2009; 18: 864-880. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60038-7]
32. Cakatay U. Pro-oxidant actions of alpha-lipoic acid and dihydrolipoic acid. Med Hypotheses 2006; 66: 110-117. [DOI:10.1016/j.mehy.2005.07.020]
33. Byun CH, Koh JM, Kim DK, Park SI, Lee KU, Kim GS. Alpha-lipoic acid inhibits TNF-alpha-induced apoptosis in human bone marrow stromal cells. J Bone Miner Res 2005; 20: 1125-1135. [DOI:10.1359/JBMR.050302]
34. Fujita H, Shiosaka M, Ogino T, Okimura Y, Utsumi T, Sato EF, et al. Alpha-lipoic acid suppresses 6-hydroxydopamine-induced ROS generation and apoptosis through the stimulation of glutathione synthesis but not by the expression of heme oxygenase-1. Brain Res 2008; 1206: 1-12. [DOI:10.1016/j.brainres.2008.01.081]
35. Johnson MT, Freeman EA, Gardner DK, Hunt PA. Oxidative metabolism of pyruvate is required for meiotic maturation of murine oocytes in vivo. Biol Reprod 2007; 77: 2-8. [DOI:10.1095/biolreprod.106.059899]
36. Voloboueva LA, Liu J, Suh JH, Ames BN, Miller SS. (R)-alpha-lipoic acid protects retinal pigment epithelial cells from oxidative damage. Invest Ophthalmol Vis Sci 2005; 46: 4302-4310. [DOI:10.1167/iovs.04-1098]
37. Akpinar D, Yargicoglu P, Derin N, Aliciguzel Y, Agar A. The effect of lipoic acid on antioxidant status and lipid peroxidation in rats exposed to chronic restraint stress. Physiol Res 2008; 57: 893-901.
38. Luberda Z. The role of glutathione in mammalian gametes. Reprod Biol 2005; 5: 5-17.
39. Paszkowski T, Traub AI, Robinson SY, McMaster D. Selenium dependent glutathione peroxidase activity in human follicular fluid. Int J Clin Chem 1995; 236: 173-180. [DOI:10.1016/0009-8981(95)98130-9]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
