شنبه 8 دی 1403
[Archive]
دوره 12، شماره 9 - ( 7-1393 )
جلد 12 شماره 9 صفحات 0-623 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Peyghambari F, Amanpour S, Fayazi M, Haddadi M, Muhammadnejad S, Muhammadnejad A, et al . Expression of α4, αv, β1 and β3 integrins during the implantation window on blastocyst of a mouse model of polycystic ovarian syndromes. IJRM 2014; 12 (9) :623-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-581-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-581-fa.html
پیغمبری فاطمه، امانپور سعید، فیاضی مهری، حدادی مهناز، محمدنژاد صمد، محمدنژاد احد، و همکاران.. بررسی بیان اینتگرین های α4، αv، β3 و β1 در طی پنجره لانه گزینی در بلاستوسیت موش مدل سندرم تخمدان پلی کیستیک. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1393; 12 (9) :623-0
فاطمه پیغمبری1 
، سعید امانپور2 ، مهری فیاضی3 ، مهناز حدادی2 ، صمد محمدنژاد4 ، احد محمدنژاد4 ، مهدی سلیمی5 ، زهره مظاهری* 6
، سعید امانپور2 ، مهری فیاضی3 ، مهناز حدادی2 ، صمد محمدنژاد4 ، احد محمدنژاد4 ، مهدی سلیمی5 ، زهره مظاهری* 6
1- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد یزد، یزد، ایران
2- مرکز تحقیقات بهداشت باروری ولی عصر (عج)، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
3- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
4- مرکز تحقیقات سرطان، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
5- گروه فیزیولوژی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
6- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران ،z_mazaheri@modares.ac.ir
2- مرکز تحقیقات بهداشت باروری ولی عصر (عج)، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
3- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
4- مرکز تحقیقات سرطان، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
5- گروه فیزیولوژی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
6- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران ،
چکیده: (2752 مشاهده)
مقدمه: این فرضیه وجود دارد که تغییر بیان اینتگرین سطح بلاستوسیت میتواند منجر به سقط خودبخودی در مبتلایان به سندرم تخمدان پلیکیستیک گردد.
هدف: در این مطالعه الگوی بیان ژنی و پروتئینی اینتگرینهای سطح بلاستوسیتها موش مدل تخمدان پلیکیستیک مورد بررسی قرار گرفته شده است.
مواد و روشها: در این مطالعه 30 سر موش ماده نژاد NMRI به طور تصادفی به سه گروه کنترل، آزمایش (مدل تخمدان پلیکیستیک تیمار شده با mg/kg 40 استرادیول والریت) و شم (تیمار شده با ml 100 روغن زیتون به عنوان حلال دارو) گروهبندی شدند. بعد از هشت هفته از مطالعه، هر گروه با استفاده از هورمون PMSG به میزان 7 واحد و سپس 48 ساعت بعد با استفاده از هورمون HCG به میزان 7 واحد تحریک تخمکگذاری شدند. موشهای تحریک شده کنار موش نر قرار گرفته و پلاک واژنی صبح روز بعد بررسی شد. سپس در روز 5 پس از بررسی پلاک، موشها کشته و جنینها جمع آوری و به منظور بررسی اینتگرینهای α4، αv، β1 و β3 و با روش Real time PCR و ایمونوهیستوشیمی مورد ارزیابی قرار گرفتند.
نتایج: سطح سرمی استرادیول به صورت معنیداری در گروه PCOS افزایش یافته بود. میزان بیان اینتگرین های α4، αv، β1 و β3 نشان داد که یک اختلاف زیادی در بیان ژنی اینتگرینهای αv، β1 و β3 در گروه PCOS در مقایسه با سایر گروهها وجود دارد. بیان پروتئینهای اینتگرین در همه گروهها بیان شدند ولی شدت بیان αv و β3 در گروه PCOS پائینتر سایر گروهها بود.
نتیجهگیری: به نظر میرسد که الگوی بیان اینتگرینهای αv و β3 تأثیر مهمی در زمان پنجره لانه گزینی دارد. شاید این نتایج بتواند علت سقط خودبخودی در بیماران مبتلا به PCOS را شرح دهد. بنابراین توجه زیادی در خصوص درمان بیماران PCOS از این جنبه مورد نیاز میباشد.
هدف: در این مطالعه الگوی بیان ژنی و پروتئینی اینتگرینهای سطح بلاستوسیتها موش مدل تخمدان پلیکیستیک مورد بررسی قرار گرفته شده است.
مواد و روشها: در این مطالعه 30 سر موش ماده نژاد NMRI به طور تصادفی به سه گروه کنترل، آزمایش (مدل تخمدان پلیکیستیک تیمار شده با mg/kg 40 استرادیول والریت) و شم (تیمار شده با ml 100 روغن زیتون به عنوان حلال دارو) گروهبندی شدند. بعد از هشت هفته از مطالعه، هر گروه با استفاده از هورمون PMSG به میزان 7 واحد و سپس 48 ساعت بعد با استفاده از هورمون HCG به میزان 7 واحد تحریک تخمکگذاری شدند. موشهای تحریک شده کنار موش نر قرار گرفته و پلاک واژنی صبح روز بعد بررسی شد. سپس در روز 5 پس از بررسی پلاک، موشها کشته و جنینها جمع آوری و به منظور بررسی اینتگرینهای α4، αv، β1 و β3 و با روش Real time PCR و ایمونوهیستوشیمی مورد ارزیابی قرار گرفتند.
نتایج: سطح سرمی استرادیول به صورت معنیداری در گروه PCOS افزایش یافته بود. میزان بیان اینتگرین های α4، αv، β1 و β3 نشان داد که یک اختلاف زیادی در بیان ژنی اینتگرینهای αv، β1 و β3 در گروه PCOS در مقایسه با سایر گروهها وجود دارد. بیان پروتئینهای اینتگرین در همه گروهها بیان شدند ولی شدت بیان αv و β3 در گروه PCOS پائینتر سایر گروهها بود.
نتیجهگیری: به نظر میرسد که الگوی بیان اینتگرینهای αv و β3 تأثیر مهمی در زمان پنجره لانه گزینی دارد. شاید این نتایج بتواند علت سقط خودبخودی در بیماران مبتلا به PCOS را شرح دهد. بنابراین توجه زیادی در خصوص درمان بیماران PCOS از این جنبه مورد نیاز میباشد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Speroff L, Fritz MA. Cronic anovulation and the polycystic ovary syndrome. In: Clinical gynecoligic endocrinology and infertility. Philadelphia 2011; 495-531.
2. Qiao J, Wang L, Li R, Zhang X. Microarray evaluation of endometrial receptivity in chinese women with polycystic ovary syndrome. Reprod Biomed Online 2008; 17: 425-435. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60228-3]
3. Cakmak H, Taylor HS. Human implantation failure: molecular mechanisms and clinical treatment. Hum Reprod Update 2011; 17: 242-253. [DOI:10.1093/humupd/dmq037]
4. Donaghay M, Lessey BA. Uterine receptivity: alterations associated with benign gynecological disease. Semin Reprod Med 2007; 25: 461-475. [DOI:10.1055/s-2007-991044]
5. Lopes IM, Baracat MC, Simões Mde J, Simões RS, Baracat EC, Soares Jr JM. Endometrium in women with polycystic ovary syndrome during the window of implantation. Rev Assoc Med Bras 2011; 57: 702-709.
6. Paria BC, Huet-Hudson YM, Dey SK. Blastocyst's state of activity determines ''window'' of implantation in the receptive mouse uterus. Proc Natl Acad Sci USA 1993; 90: 10159-10162. [DOI:10.1073/pnas.90.21.10159]
7. Aplin J. Adhesion molecules in implantation. Rev Reprod 1997; 2: 84-93. [DOI:10.1530/ror.0.0020084]
8. Harvey MB, Leco KJ, Arcellana-Panlilio MY, Zhang X, Edwards GR, Schultz GA. Roles of growth factors during peri- implantation development. Mol Hum Reprod 1995; 10: 712-718. [DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a136021]
9. Saito S. Cytokine network at the fetomaternal interface. J Reprod Immunol 2000; 47: 87-103. [DOI:10.1016/S0165-0378(00)00060-7]
10. Chakraborty I, Das SK, Dey SK. Differential expression of vascular endothelial growth factor and its receptor mRNAs in the mouse uterus around the time of implantation. J Endocrinol 1995; 147: 339-352. [DOI:10.1677/joe.0.1470339]
11. Hynes RO. Integrins: versatility, modulation and signaling in cell adhesion. Cell 1992; 69: 11-25. [DOI:10.1016/0092-8674(92)90115-S]
12. Damsky C, Sutherland A, Fisher S. Extracellular matrix 5: adhesive interactions in early mammalian embryogenesis, implantation and placentation. FASEB J 1993; 7: 1320-1329. [DOI:10.1096/fasebj.7.14.8224605]
13. Yoshimura Y. Integrin: expression, modulation and signaling in fertilization, embryogenesis and implantation. Kieo J Med 1997; 46: 16-24. [DOI:10.2302/kjm.46.16]
14. Sutherland AE, Calarco PG, Damsky CH. Developmental regulation of integrin expression at the time of implantation in the mouse embryo. Development 1993; 119: 1175-1186.
15. Aplin J. Adhesion molecules in implantation. Rev Reprod 1997; 2: 84-93. [DOI:10.1530/ror.0.0020084]
16. Reddy KV, Meherji PK. Integrin cell adhesion molecules in endometrium of fertile and infertile women throughout menstrual cycle. Indian J Exp Biol 1999; 37: 323-331.
17. Gonzalez RR, Palomino A, Boric A, Vega M, Devoto L. A quantitative evaluation of a1, a4, aV and b3 endometrial integrins of fertile and unexplained infertile women during the menstrual cycle. A flow cytometric appraisal. Hum Reprod 1999; 14: 2485-2492. [DOI:10.1093/humrep/14.10.2485]
18. Fayazi M, Beigi Brojeni M, Salehnia M, Khansarinejad B. Ovarian stimulation by Exogenous Gonadotropin Decreases the Implantation Rate and Expression of Mouse Blastocysts Integrins. Iran Biomed J 2014; 18: 8-15.
19. Wood JR, Dumesic DA, Abbott DH, Strauss JF 3rd. Molecular Abnormalities in Oocytes from Women with Polycystic Ovary Syndrome Revealed by Microarray Analysis. J Clin Endocrinol Metab 2007; 92: 705-713. [DOI:10.1210/jc.2006-2123]
20. Hou Q, Paria BC, Mui C, Dey SK, Gorsky J. Immunolocalization of estrogen receptor protein in the mouse blastocyst during normal and delayed implantation. Proc Natl Acad Sci USA 1996; 93: 2376-2381. [DOI:10.1073/pnas.93.6.2376]
21. Norman RJ, Dewailly D, Legro RS, Hickey TE. Polycystic ovary syndrome. Lancet 2007; 370: 685-697. [DOI:10.1016/S0140-6736(07)61345-2]
22. Dikmen A, Ergenoglu AM, Yeniel AO, Dilsiz OY, Ercan G, Yilmaz H. Evaluation of glycemic and oxidative/antioxidative status in the estradiol valerate-induced PCOS model of rats. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2012; 160: 55-59. [DOI:10.1016/j.ejogrb.2011.09.042]
23. Mahood RAH. Effects of Pimpinella anisum oil Extract on Some Biochemical Parameters in Mice experimentally induced for human Polycystic Ovary Syndrome. J Biotec Res Cent 2012; 6: 67-73.
24. Guyer M. Animal microbiology. 5th Ed. The University of Chicago press, Chicago; 1993.
25. Pfaffl MW. A new mathematical model for relative quantification in real-time RT-PCR. Nucleic Acids Res 2001; 29: e45. [DOI:10.1093/nar/29.9.e45]
26. Stener-Victorin E, Kobayashi R, Watanabe O, Lundeberg T, Kurosawa M. Effect of electro-acupuncture stimulation of different frequencies and intensities on ovarian blood flow in anaesthetized rats with steroid-induced polycystic ovaries. Reprod Biol Endocrinol 2004; 2: 16. [DOI:10.1186/1477-7827-2-16]
27. Schulster A, Farookhi R, BrawerJ R. Polycystic ovarian condition in Estradiol Valerate-treated rats: spontaneous changes in characteristic endocrine features. Biol Reprod 1984; 31: 587-593. [DOI:10.1095/biolreprod31.3.587]
28. Shirwalker H, Deepak N M, Anurupa M. Exposure of adult rats to estradiol valerate induces ovarian cyst with early senescence of follicles. Mol Cell Endocrinol 2007; 272: 22-37. [DOI:10.1016/j.mce.2007.04.003]
29. Stener-Victorin E, Lundeberg T, Waldenstrom U, Manni L, Aloe L, Gunnarsson S, et al. Effects of Electro-Acupuncture on Nerve Growth Factor and Ovarian Morphology in Rats with Experimentally Induced Polycystic Ovaries. Biol Reprod 2000; 63: 1497-1503. [DOI:10.1095/biolreprod63.5.1497]
30. Luza SM, LizamA L, Burgos RA, Lara HE. Hypothalamic Changes in norepinephrine Release in Rats with EstradiolValerate-Induced Polycystic Ovaries. Biol Reprod 1995; 52: 398-404. [DOI:10.1095/biolreprod52.2.398]
31. Brawer JR, Naftolin F, Martin J, Sonnenschein C. Effects of a single injection of estradiol valerate on the hypothalamic arcuate nucleus and on reproductive function in the female rat. Endocrinology 1978; 103: 501-512. [DOI:10.1210/endo-103-2-501]
32. Peyghambari F, Salehnia M, Forouzandeh Moghadam M, Rezazadeh Valujerdi M, Hajizadeh E. The correlation between the endometrial integrins and osteopontin expression with pinopodes development in ovariectomized mice in response to exogenous steroids hormones. Iran Biomed J 2010; 14: 109-19.
33. Lessey BA, Damjanovich L, Coutifaris C, Castelbaum A, Albelda SM, Buck CA. Integrin adhesion molecules in the human endometrium. Correlation with the normal and abnormal menstrual cycle. J Clin Invest 1992; 90: 188-195. [DOI:10.1172/JCI115835]
34. Widra EA, Weeraratna A, Stepp MA, Stillman RJ, Patierno SR. Modulation of implantation-associated integrin expression but not uteroglobin by steroid hormones in an endometrial cell line. Mol Hum Reprod 1997; 3: 563-568. [DOI:10.1093/molehr/3.7.563]
35. Basak S, Dhar R, Das C. Steroids modulate the expression of alpha4 integrin in mouse blastocysts and uterus during implantation. Biol Reprod 2002; 66: 1784-1789. [DOI:10.1095/biolreprod66.6.1784]
36. Kimmins S, MacLaren LA. Cyclic Modulation of integrin expression in bovine endometrium. Biol Reprod 1999; 61: 1267-1274. [DOI:10.1095/biolreprod61.5.1267]
37. Lessey BA, Arnold JT. Paracrine signaling in the endometrium: integrins and the establishment of uterine receptivity. J Reprod Immunol 1998; 39: 105-116. [DOI:10.1016/S0165-0378(98)00016-3]
38. Apparao KB, Murray MJ, Fritz MA, Meyer WR,Chambers AF, Truong PR, et al. Osteopontin and its receptor alphavbeta (3) integrin are coexpressed in the human endometrium during the menstrual cycle but regulated differentially. J Clin Endocrinol Metab 2001; 86: 4991-5000.
39. Bowen JA, Bazer FW, Burghardt RC. Spatial and temporal analyses of integrin and Muc-1 expression in porcine uterine epithelium and trophectoderm in vivo. Biol Reprod 1996; 55: 1098-1110. [DOI:10.1095/biolreprod55.5.1098]
40. Lin H, Wang X, Liu G, Fu J, Wang A. Expression of alpha V and beta 3 integrin subunits during implantation in pig. Mol Reprod Dev 2007; 74: 1379-1385. [DOI:10.1002/mrd.20732]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
