یکشنبه 2 دی 1403
[Archive]
دوره 13، شماره 9 - ( 7-1394 )
جلد 13 شماره 9 صفحات 540-533 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Kazemi A, Ramezanzadeh F, Nasr-Esfahani M H. The relations between dietary antioxidant vitamins intake and oxidative stress in follicular fluid and ART outcomes. IJRM 2015; 13 (9) :533-540
URL: http://ijrm.ir/article-1-682-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-682-fa.html
کاظمی اشرف، رمضان زاده فاطمه، نصر اصفهانی محمد حسین. ارتباط بین دریافت ویتامین های آنتی اکسیدانت غذایی و استرس اکسیداتیو مایع فولیکولی و نتایج درمان های کمک باروری. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1394; 13 (9) :533-540
1- گروه بهداشت باروری، مرکز تحقیقات مراقبت های پرستاری و مامایی، دانشکده پرستاری و مامایی، دانشگاه علوم پزشکی اصفهان، اصفهان، ایران ، kazemi@nm.mui.ac.ir
2- مرکز تحقیقات بهداشت باروری ولی عصر، مجموعه بیمارستان امام خمینی، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
3- مرکز زیست پزشکی تولید مثل، پژوهشکده رویان بیوتکنولوژی حیوانات، گروه باروری و تکامل، اصفهان، ایران
2- مرکز تحقیقات بهداشت باروری ولی عصر، مجموعه بیمارستان امام خمینی، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
3- مرکز زیست پزشکی تولید مثل، پژوهشکده رویان بیوتکنولوژی حیوانات، گروه باروری و تکامل، اصفهان، ایران
چکیده: (3074 مشاهده)
مقدمه: استرس اکسیداتیو در محیط فولیکولی ممکن است بر قابلیت اووسیت تاثیر بگذارد و ویتامین های با خاصیت آنتی اکسیدانت ممکن است این اثرات را اصلاح کنند.
هدف: هدف تحقیق حاضر ارزیابی اثرات دریافت ویتامین های A، C و E غذایی بر روی استرس اکسیداتیو محیط فولیکولی و سرانجام درمان های کمک باروری بود.
مواد و روش ها: در این مطالعه آینده نگر مشاهده ای سطح دریافت ویتامن هایA ، C و E با استفاده از پرسشنامه معتبر بسامد غذایی و سطح مالون- دی آلدئید (MDA) و ظرفیت تام آنتی اکسیدانت (MDA) در مایع فولیکولی در 219 زن تحت درمان های کمک باروری ارزیابی شد. تعداد اووسیت، درصد اووسیت در مرحله متافاز دو، میزان لقاح و کیفیت رویان تعیین شد.
نتایج: همبستگی معنی داری بین سطح دریافت ویتامین ها و نشانگرهای استرس اکسیداتیو یافت نشد، اما میانگین سطح TAC در مایع فولیکولی در زنانی که بیش از 75 میلیگرم در روز یا بیشتر ویتامین C دریافت کرده بودند بیش از مایع فولیکولی زنانی بود که کمتر از این مقدار دریافت داشتند (p < 0.05). پارامتر های درمان های کمک باروری وابسته به سطح دریافت ویتامین E نبود، اما میزان رویان با کلیواژ سریع به شکل مثبت وابسته به سطح دریافت ویتامین A (p<0.05) و ویتامین C (p= 0.02) بود. همچنین درصد اووسیت در مرحله متافاز دو (p= 0.02) و میزان لقاح (p <0.05) با سطح دریافت ویتامین C در ارتباط بودند. ارتباط بین سطح TAC در مایع فولیکولی و نتایج درمان کمک باروری معنی دار نبود.
نتیجه گیری: نتایج این مطالعه نشان می دهد دریافت ویتامین C به مقدار زیاد ممکن است با افزایش سطح TAC مایع فولیکولی و اصلاح قابلیت های اووسیت همراه شود، اما تاثیراین ویتامین به دنبال افزایش دفاع انتی اکسیدانتی محیط فولیکولی نیست.
هدف: هدف تحقیق حاضر ارزیابی اثرات دریافت ویتامین های A، C و E غذایی بر روی استرس اکسیداتیو محیط فولیکولی و سرانجام درمان های کمک باروری بود.
مواد و روش ها: در این مطالعه آینده نگر مشاهده ای سطح دریافت ویتامن هایA ، C و E با استفاده از پرسشنامه معتبر بسامد غذایی و سطح مالون- دی آلدئید (MDA) و ظرفیت تام آنتی اکسیدانت (MDA) در مایع فولیکولی در 219 زن تحت درمان های کمک باروری ارزیابی شد. تعداد اووسیت، درصد اووسیت در مرحله متافاز دو، میزان لقاح و کیفیت رویان تعیین شد.
نتایج: همبستگی معنی داری بین سطح دریافت ویتامین ها و نشانگرهای استرس اکسیداتیو یافت نشد، اما میانگین سطح TAC در مایع فولیکولی در زنانی که بیش از 75 میلیگرم در روز یا بیشتر ویتامین C دریافت کرده بودند بیش از مایع فولیکولی زنانی بود که کمتر از این مقدار دریافت داشتند (p < 0.05). پارامتر های درمان های کمک باروری وابسته به سطح دریافت ویتامین E نبود، اما میزان رویان با کلیواژ سریع به شکل مثبت وابسته به سطح دریافت ویتامین A (p<0.05) و ویتامین C (p= 0.02) بود. همچنین درصد اووسیت در مرحله متافاز دو (p= 0.02) و میزان لقاح (p <0.05) با سطح دریافت ویتامین C در ارتباط بودند. ارتباط بین سطح TAC در مایع فولیکولی و نتایج درمان کمک باروری معنی دار نبود.
نتیجه گیری: نتایج این مطالعه نشان می دهد دریافت ویتامین C به مقدار زیاد ممکن است با افزایش سطح TAC مایع فولیکولی و اصلاح قابلیت های اووسیت همراه شود، اما تاثیراین ویتامین به دنبال افزایش دفاع انتی اکسیدانتی محیط فولیکولی نیست.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Combelles CM, Carabatsos MJ, Kumar TR, Matzuk MM, Albertini DF. Hormonal control of somatic cell oocyte interactions during ovarian follicle development. Mol Reprod Dev 2004; 69:347-355. [DOI:10.1002/mrd.20128]
2. Sirard MA, Richard F, Blondin P, Robert C. Contribution of the oocyte to embryo quality. Theriogenology 2006; 65:126–136. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2005.09.020]
3. Hendriksen PJ, Vos PL, Steenweg WN, Bevers MM, Dieleman SJ. Bovine follicular development and its effect on the in vitro competence of oocytes. Theriogenology 2000; 53:11–20. [DOI:10.1016/S0093-691X(99)00236-8]
4. Bertout J, Mahutte NG, Preston SL, Behrman HR. Reactive oxygen species and ovarian function. In: Leung P; Adashi EY. The Ovary. San Diego: Elsevier Academic Press; 2004; 353-368. [DOI:10.1016/B978-012444562-8/50021-5]
5. Guerin P, El Mouatassim S, Menezo Y. Oxidative stress and protection against reactive oxygen species in the pre-implantation embryo and its surroundings. Hum Reprod Update 2001; 7:175–189. [DOI:10.1093/humupd/7.2.175]
6. Matos L, Stevenson D, Gomes F, Silva-Carvalho JL, Almeida H. Superoxide dismutase expression in human cumulus oophorus cells. Mol Hum Reprod 2009;15:411-419. [DOI:10.1093/molehr/gap034]
7. Hanukoglu I. Antioxidant protective mechanisms against reactive oxygen species (ROS) generated by mitochondrial P450 systems in steroidogenic cells. Drug Metab Rev 2006; 38:171–196. [DOI:10.1080/03602530600570040]
8. Zhang X, Li XH, Ma X, Wang ZH, Lu S, Guo YL. Redox-induced apoptosis of human oocytes in resting follicles in vitro. J Soc Gynecol Investig 2006; 13:451–458. [DOI:10.1016/j.jsgi.2006.05.005]
9. Valdez KE, Cuneo SP, Turzillo AM. Regulation of apoptosis in the atresia of dominant bovine follicles of the first follicular wave following ovulation. Reproduction 2005; 130: 71–81. [DOI:10.1530/rep.1.00430]
10. Benyamini Y, Gozlan M, Kokia E. Women's and men's perceptions of infertility and their associations with psychological adjustment: a dyadic approach. Br J Health Psychol 2009; 14:1-16. [DOI:10.1348/135910708X279288]
11. Das S, Chattopadhyay R, Ghosh S, Goswami SK, Chakravarty BN, Chaudhury K. Reactive oxygen species level in follicular fluid embryo quality marker in IVF? Hum Reprod 2006; 21:2403–2407. [DOI:10.1093/humrep/del156]
12. Oyawoye O, Abdel Gadir A, Garner A, Constantinovici N, Perrett C, Hardiman P. Antioxidants and reactive oxygen species in follicular fluid of women undergoing IVF: relationship to outcome. Hum Reprod 2003; 18: 2270-2274. [DOI:10.1093/humrep/deg450]
13. Song YL, Quan S, Tian JW, Li H, Chen SM, Xing FQ. Relationship between protein oxidation levels in the follicular fluid and the outcome parameters of in vitro fertilization-embryo transplantation. Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao 2009; 29:160-163.
14. Sefi M, Ben Amara I, Troudi A, Soudani N, Hakim A, Zeghal KM, et al. Effect of selenium on methimazole-induced liver damage and oxidative stress in adult rats and their offspring. Toxicol Ind Health 2012; 30:653-669. [DOI:10.1177/0748233712462445]
15. Amin KA, Kamel HH, Abd Eltawab MA. Protective effect of Garcinia against renal oxidative stress and biomarkers induced by high fat and sucrose diet. Lipids Health Dis 2011; 10:6. [DOI:10.1186/1476-511X-10-6]
16. Sugino N. Reactive oxygen species in ovarian physiology. Reprod Med Biol 2005; 4: 31-44.
17. Tola EN, Mungan MT, Uğuz AC, Naziroğlu M. Intracellular Ca2+ and antioxidant values induced positive effect on fertilisation ratio and oocyte quality of granulosa cells in patients undergoing in vitro fertilisation. Reprod Fertil Dev 2013; 25:746-752. [DOI:10.1071/RD12144]
18. Ozkaya MO, Nazıroglu M. Multivitamin and mineral supplementation modulates oxidative stress and antioxidant vitamin levels in serum and follicular fluid of women undergoing in vitro fertilization. Fertil Steril 2010; 94: 2465-2466. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2010.01.066]
19. Arrigoni O, De Tullio MC. Ascorbic acid: much more than just an antioxidant. Biochim Biophys Acta 2002;1569:1-9. [DOI:10.1016/S0304-4165(01)00235-5]
20. Nadri B, Zeinoaldini S, Kohram H. Ascorbic acid effects on in vitro maturation of mouse oocyte with or without cumulus cell. African Journal of Biotechnology 2009; 8:5627-5631.
21. Thomas FH, Leask R, Srsen V, Riley SC, Spears N, Telfer EE. Effect of ascorbic acid on health and morphology of bovine preantral follicles during long-term culture. Reproduction 2001; 122: 487–495. [DOI:10.1530/rep.0.1220487]
22. Dalvit G, Llanes SP, Descalzo A, Insani M, Beconi M, Cetica P. Effect of alpha-tocopherol and ascorbic acid on bovine oocyte in-vitro maturation. Reprod Domest Anim 2005; 40:93–97. [DOI:10.1111/j.1439-0531.2004.00522.x]
23. Duque P, Diez C, Royo L, Lorenzo PL, Carneiro G, Hidalgo CO, et al. Enhancement of developmental capacity of meiotically inhibited bovine oocytes by retinoic acid. Hum Reprod 2002; 17: 2706–2714. [DOI:10.1093/humrep/17.10.2706]
24. Ikeda S, Kitagawa M, Imai H, Yamada M. The roles of vitamin A for cytoplasmic maturation of Bovine oocytes. J Reprod Dev 2005; 51: 23-35. [DOI:10.1262/jrd.51.23]
25. Laboratory manual of the WHO for the examination of human semen and sperm-cervical mucus interaction). Ann Ist Super Sanita 2001;37: 1-123.
26. Mirmiran P, Esfahani FH, Mehrabi Y, Hedayati M, Azizi F. Reliability and relative validity of an FFQ for nutrients in the Tehran lipid and glucose study. Public Health Nutr 2010; 13: 654-662. [DOI:10.1017/S1368980009991698]
27. Veeck LL. Oocyte assessment and biological performance. Ann N Y Acad Sci 1988; 541: 259-274. [DOI:10.1111/j.1749-6632.1988.tb22263.x]
28. Oral O, Kutlu T, Aksoy E, Fccolu C, Uslu H, Turul S. The effects of oxidative stress on outcomes of assisted reproductive techniques. J Assist Reprod Genet 2006; 23:81-85. [DOI:10.1007/s10815-005-9010-4]
29. Attaran M, Pasqualotto E, Falcone T, Goldberg JM, Miller KF, Agarwal A, et al. The effect of follicular fluid reactive oxygen species on the outcome of in vitro fertilization. Int J Fertil Women's Med 2000;45:314-320.
30. Choi WJ, Banerjee J, Falcone T, Bena J, Agarwal A, Sharma RK. Oxidative stress and tumor necrosis factor-alpha-induced alterations in metaphase II mouse oocyte spindle structure. Fertil Steril 2007; 88:1220– 1231. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.02.067]
31. Tatemoto H, Ootaki K, Shigeta K, Muto N. Enhancement of developmental competence after in vitro fertilization of porcine oocytes by treatment with ascorbic acid 2-O-a-glucoside during in vitro maturation. Biol Reprod 2001; 65:1800–1806. [DOI:10.1095/biolreprod65.6.1800]
32. Eppig JJ, Hosoe M, OBrien MJ, Pendola FM, Requena A, Watanabe S. Conditions that affect acquisition of developmental competence by mouse oocytes in vitro: FSH, insulin, glucose and ascorbic acid. Mol Cell Endocrinol 2000; 163:109–116. [DOI:10.1016/S0303-7207(99)00247-6]
33. Botero D, Ebbeling CB, Blumberg JB, Ribaya-Mercado JD, Creager MA, Swain JF, et al. Acute effects of dietary glycemic index on antioxidant capacity in a nutrient-controlled feeding study. Obesity 2009;17:1664-1670. [DOI:10.1038/oby.2009.203]
34. Combelles CMH, Gupta S, Agarwal A. Could oxidative stress influence the in-vitro maturation of oocytes? Reprod Biomed Online 2009; 18: 864–880. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60038-7]
35. Ong DE, Page DL. Quantitation of cellular retinol-binding protein in human organs. Am J Clin Nutr 1986; 44: 425–430. [DOI:10.1093/ajcn/44.3.425]
36. Schweigert FJ, Steinhagen B, Raila J, Siemann A, Peet D, Buscher U. Concentrations of carotenoids, retinol and alpha-tocopherol in plasma and follicular fluid of women undergoing IVF. Hum Reprod 2003; 18:1259–1264. [DOI:10.1093/humrep/deg249]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
