دوره 15، شماره 7 - ( 5-1396 )                   جلد 15 شماره 7 صفحات 422-413 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Mohammadzadeh E, Amjadi F, Movahedin M, Zandieh Z, Nazmara Z, Eslahi N, et al . In vitro development of embryos from experimentally Kerack-addicted Mice. IJRM 2017; 15 (7) :413-422
URL: http://ijrm.ir/article-1-843-fa.html
محمدزاده الهام، امجدی فاطمه سادات، موحدین منصوره، زندیه زهرا، نظم آرا زهره، اصلاحی ندا، و همکاران. و همکاران.. مطالعه آزمایشگاهی تکوین جنین های مورولای موش حاصل از مادران معتاد . International Journal of Reproductive BioMedicine. 1396; 15 (7) :413-422

URL: http://ijrm.ir/article-1-843-fa.html


1- مرکز تحقیقات علوم اعصاب شفا، بیمارستان خاتم الانبیا، تهران، ایران
2- مرکز تحقیقات سلولی و مولکولی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران
3- گروه علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
4- گروه آناتومی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران
5- مرکز تحقیقات توانبخشی اعصاب اطفال، دانشگاه علوم بهزیستی و توانبخشی، تهران، ایران
6- گروه بیولوژی و علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران
7- مرکز تحقیقات سلولی و مولکولی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران ، koruji.m@iums.ac.ir
چکیده:   (3277 مشاهده)
مقدمه:. مصرف داروها توسط مادر در دوران قبل از تولد، به عنوان یک نگرانی عمده در حوزه سلامت عمومی، با افزایش ریسک عوارض جانبی در تکوین اولیه جنین همراه است.
هدف: هدف از انجام مطالعه بررسی آزمایشگاهی تکوین جنین­های مورولای موش حاصل از مادران معتاد بود.
موارد و روش­ها: در این مطالعه 25 موش ماده در پنج گروه (کنترل، شم و سه گروه آزمایش معتاد به کراک) مطالعه شدند. گروه­های آزمایش دوزهای مختلف کراک را دریافت کردند. بعد از ایجاد مدل اعتیاد (در طی هفت روز اول)، گروه آزمایش I)  mg/kg5، گروه آزمایش II)  mg/kg35 و گروه آزمایش III)  mg/kg70، کراک (محلول در سرم فیزیولوژی بعلاوه آب لیمو) را بصورت درون‌صفاقی و روزانه دو نوبت، به مدت7 روز دیگر دریافت کردند. گروه شم محلول سرم فیزیولوژی به علاوه آب لیمو و گروه کنترل فقط آب و غذا دریافت کرد. جنین­های مورولا با فلاشینگ لوله رحمی از اویداکت جمع­آوری شد و در محیط کشت (T6+5 mg/ml BSA) قرار گرفتند. وضعیت تکوین جنین­ها تا مرحله خروج از زونا به طور روزانه بررسی شد. همچنین کیفیت جنین­ها (رنگ­آمیزی افتراقی و رنگ آمیزی TUNEL) انجام بررسی گردید.
نتایج: مقایسه گروه­های معتاد نسبت به گروه کنترل نشان داد که پتانسیل تکوین جنین­ها حاصل از مادران معتاد کاهش می­یابد. میزان تشکیل بلاستوسیست به طور معنی­داری در گروه­های معتاد با دوز بالا پایین­تر از گروه کنترل بود. همچنین تعداد بلاستومرها (92/40% در برابر 08/65% در گروه کنترل) و درصد توده سلول داخلی (1/17% در برابر 15/26% گروه کنترل) در مورلای حاصل از موش­های معتاد به طور معنی­داری کاهش یافت در حالی که درصد سلول­های آپاپتوزی افزایش یافت (17/7 در برابر 46/1 گروه کنترل) (05/0p).
نتیجه ­گیری: در این مطالعه یافته­های ما نشان داد که مصرف کراک در طی بارداری تکوین جنین­ها را در مرحله پیش از لانه گزینی به تعویق انداخته و باعث القا آپاپتوز می­گردد.
نوع مطالعه: Original Article |

فهرست منابع
1. Narkowicz S, Plotka J, Polkowska Z, Biziuk M, Namiesnik J. Prenatal exposure to substance of abuse: a worldwide problem. Environ Int 2013; 54: 141-163. [DOI:10.1016/j.envint.2013.01.011]
2. Khoradmehr A, Danafar A, Halvaei I, Golzadeh J, Hosseini M, Mirjalili T, et al. Effect of prenatal methamphetamine administration during gestational days on mice. Iran J Reprod Med 2015; 13: 41-48.
3. National Institutes of Health. ational institute on drug abuse. Medical consequences of drug abuse: mortality. Available at: http://www.drugabuse.gov/ consequences/mortality/2012.
4. Schoenwolf GC. Larsen's human embryology Philadelphia, Churchill Livingstone/Elsevier; 2009.
5. Floyd RL, Jack BW, Cefalo R, Atrash H, Mahoney J, Herron A, et al. The clinical content of preconception care: alcohol, tobacco, and illicit drug exposures. Am J Obstet Gynecol 2008; 199 (Suppl.): S333-339. [DOI:10.1016/j.ajog.2008.09.018]
6. Shirinbayan P, Rafiey H, Vejdani Roshan A, Narenjiha H, Farhoudian A. Predictors of retention in methadone maintenance therapy: a prospective multi-center study. Sci Res Essay 2010; 5: 3231-3236.
7. Razzaghi EM, Movaghar AR, Green TC, Khoshnood K. Profiles of risk: a qualitative study of injecting drug users in Tehran, Iran. Harm Reduct J 2006; 3: 12. [DOI:10.1186/1477-7517-3-12]
8. Mokri A. Brief overview of the status of drug abuse in Iran. Arch Iran Med 2002; 5: 184-190.
9. Karbakhsh M, Salehian Zandi N. Acute opiate overdose in Tehran: the forgotten role of opium. Addict Behav 2007; 32: 1835-1842. [DOI:10.1016/j.addbeh.2006.12.014]
10. Narenjiha H, Rafiey H, Jahani MR, Assari S, Moharamzad Y, Roshanpazooh M. Substance-dependent professional drivers in Iran: a descriptive study. Traffic Inj Prev 2009; 10: 227-230. [DOI:10.1080/15389580902849017]
11. Farhoudian A, Sadeghi M, Khoddami Vishteh HR, Moazen B, Fekri M, Rahimi Movaghar A. Component Analysis of Iranian Crack (Kerack); A Newly Abused Narcotic Substance in Iran (2014-1). Iran J Pharm Res 2014; 1: 1-16.
12. Akhgari M, Jokar F, Bahmanabadi L, Aleagha AE. Street-level heroin seizures in Iran: a survey of components. J Substance Use 2012; 17: 348-355. [DOI:10.3109/14659891.2011.592898]
13. Razani N, Mohraz M, Kheirandish P, Malekinejad M, Malekafzali H, Mokri A, et al. HIV risk behavior among injection drug users in Tehran, Iran. Addiction 2007; 102: 1472-1482. [DOI:10.1111/j.1360-0443.2007.01914.x]
14. Malekinejad M, Vazirian M. Transition to injection amongst opioid users in Iran: implications for harm reduction. Int J Drug Policy 2012; 23: 333- 337. [DOI:10.1016/j.drugpo.2011.09.001]
15. Amini M, Shirinbayan P, Behnam B, Roghani M, Farhoudian A, Joghataei MT, et al. Correlation between expression of CatSper family and sperm profiles in the adult mouse testis following Iranian Kerack abuse. Andrology 2014; 2: 386-393. [DOI:10.1111/j.2047-2927.2014.00195.x]
16. Richardson GA, Hamel SC, Goldschmidt L, Day NL. Growth of infants prenatally exposed to cocaine/crack: comparison of a prenatal care and a no prenatal care sample. Pediatrics 1999; 104: e18. [DOI:10.1542/peds.104.2.e18]
17. Kaufmann RA, Armant DR. In vitro exposure of preimplantation mouse embryos to cocaine and benzoylecgonine inhibits subsequent development. Teratology 1992; 46: 85-89. [DOI:10.1002/tera.1420460112]
18. Takzare N, Samizadeh E, Shoar S, Zolbin MM, Naderan M, Lashkari A, et al. Impacts of morphine addiction on spermatogenesis in rats. Int J Reprod BioMed 2016; 14: 303.
19. Rasmussen K, Kendrick WT, Kogan JH, Aghajanian GK. A selective AMPA antagonist, LY293558, suppresses morphine withdrawal-induced activation of locus coeruleus neurons and behavioral signs of morphine withdrawal. Neuropsychopharmacology 1996; 15: 497-505. [DOI:10.1016/S0893-133X(96)00094-2]
20. Packman PM, Rothchild JA. Morphine inhibition of ovulation: reversal by naloxone. Endocrinology 1976; 99: 7-10. [DOI:10.1210/endo-99-1-7]
21. Adams ML, Sewing B, Forman JB, Meyer ER, Cicero TJ. Opioid-induced suppression of rat testicular function. J Pharm Exp Ther 1993; 266: 323-328.
22. O'Neal CL, Poklis A, Lichtman AH. Acetylcodeine, an impurity of illicitly manufactured heroin, elicits convulsions, antinociception, and locomotor stimulation in mice. Drug Alcohol Depend 2001; 65: 37-43. [DOI:10.1016/S0376-8716(01)00145-4]
23. Yousif WB, Kalifa S, Kitta S. Effect of Prolonged Acetaminophen (Panadol) Ingestion On The Mouse Liver, Kidney and Testis Histology. Saudi J Biol Sci 1999; 6: 168-178.
24. Safian F, Khalili MA, Khoradmehr A, Anbari F, Soltani S, Halvaei I. Survival assessment of mouse preimplantation embryos after exposure to cell phone radiation. J Reprod Infertil 2016; 17: 138.
25. Kidson A, Rubio-Pomar FJ, Van Knegsel A, Van Tol HT, Hazeleger W, Ducro-Steverink DW, et al. Quality of porcine blastocysts produced in vitro in the presence or absence of GH. Reproduction 2004; 127: 165-177. [DOI:10.1530/rep.1.00086]
26. Koruji SM, Movahedin M, Valojerdi MR. Assessment of Epidermal Growth Factor (EGF) Effects on Development of Vitrified Mouse Morulae to the Blastocyst Stage. Iran Biomed J 2004; 8: 77-82.
27. Oliveira MT, Rego AC, Morgadinho MTT, Macedo RA, Oliveira CR. Toxic effects of opioid and stimulant drugs on undifferentiated PC12 cells. Ann NY Acad Sci 2002; 965: 487-496. [DOI:10.1111/j.1749-6632.2002.tb04190.x]
28. Sharp BM, Keane WF, Suh HJ, Gekker G, Tsukayama D, Peterson PK. Opioid peptides rapidly stimulate superoxide production by human polymorphonuclear leukocytes and macrophages. Endocrinology 1985; 117: 793-795. [DOI:10.1210/endo-117-2-793]
29. Xu B, Wang Z, Li G, Li B, Lin H, Zheng R, et al. Heroin-Administered Mice Involved in Oxidative Stress and Exogenous Antioxidant-Alleviated Withdrawal Syndrome. Pharmacol Toxicol 2006; 99: 153-161. [DOI:10.1111/j.1742-7843.2006.pto_461.x]
30. Fujii J, Iuchi Y, Matsuki S, Ishii T. Cooperative function of antioxidant and redox systems against oxidative stress in male reproductive tissues. Asian J Androl 2003; 5: 231-242.
31. Ozen OA, Akpolat N, Songur A, Kus I, Zararsiz I, Ozacmak VH, et al. Effect of formaldehyde inhalation on Hsp70 in seminiferous tubules of rat testes: an immunohistochemical study. Toxicol Ind Health 2005; 21: 249-254. [DOI:10.1191/0748233705th235oa]
32. Zhou DX, Qiu SD, Zhang J, Tian H, Wang HX. The protective effect of vitamin E against oxidative damage caused by formaldehyde in the testes of adult rats. Asian J Androl 2006; 8: 584-588. [DOI:10.1111/j.1745-7262.2006.00198.x]
33. Doreswamy K, Shrilatha B, Rajeshkumar T, Muralidhara. Nickel-induced oxidative stress in testis of mice: evidence of DNA damage and genotoxic effects. J Androl 2004; 25: 996-1003. [DOI:10.1002/j.1939-4640.2004.tb03173.x]
34. Knobil E, Neill JD. Knobil and Neill's physiology of Reproduction. 3rd Ed., USA, Elsevier Academic Press; 2006.
35. Chen Y, Kong S, Tang X, Fu Y, Wang B, Zhang S, et al. Preimplantation mouse embryo is a target for opioid ligand-receptor signaling. Biol Reprod 2014; 91: 4. [DOI:10.1095/biolreprod.114.118083]

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به International Journal of Reproductive BioMedicine می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2024 CC BY-NC 4.0 | International Journal of Reproductive BioMedicine

Designed & Developed by : Yektaweb