شنبه 8 دی 1403
[Archive]
دوره 9، شماره 1 - ( 4-1390 )
جلد 9 شماره 1 صفحات 0-0 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Barati F, Papahn A A, Afrough M, Barati M. Effects of Tyrode's solution osmolarities and milk on bull sperm storage above zero temperatures. IJRM 2011; 9 (1)
URL: http://ijrm.ir/article-1-207-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-207-fa.html
براتی فرید، پاپهن احمدعلی، افروغ مهسا، براتی محمد. اثر اسمولاریتی های مختلف محلول تیرود و شیر بر ذخیره سازی اسپرم گاو در دماهای بالاتر از صفر درجه سانتی گراد
. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1390; 9 (1)
فرید براتی* 
1، احمدعلی پاپهن2 ، مهسا افروغ2 ، محمد براتی3
1، احمدعلی پاپهن2 ، مهسا افروغ2 ، محمد براتی3
1- گروه علوم بالینی، دانشکده علوم دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، ایران ، fabrtir@yahoo.com, baratif@scu.ac.ir
2- گروه علوم پایه دانشکده دامپزشکی دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، ایران
3- گروه شیمی کاربردی، دانشکده شیمی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
2- گروه علوم پایه دانشکده دامپزشکی دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، ایران
3- گروه شیمی کاربردی، دانشکده شیمی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
چکیده: (2563 مشاهده)
مقدمه: کنترل اسمولاریتی و دمای محیط در طول دستکاری کوتاه مدت و بلند مدت اسپرم ضروری است.
هدف: اهداف مطالعه حاضر، یافتن تاثیر اسمولاریتی های مختلف محلول تیرود و شیر برای انکوباسیون اسپرم گاو در دماهای بالای صفر درجه سانتی گراد می باشد.
مواد و روش کار: جهت انجام آزمایشات از 5 رأس گاو نجدی خوزستان دو بار انزال تهیه گردید. نمونه ها سانتریفیوژ شده و بخش عمده مایع منوی خارج شد. آزمایش اول: انزال های غلیظ شده به 9 حجم مساوی تقسیم شدند و در محیط با سه اسمولاریتی مختلف (200، 300 و 400 میلی اسمول) در سه دما (5، 25 و 39 درجه سانتی گراد) به مدت 15 و 60 دقیقه مورد ارزیابی قرار گرفتند. آزمایش دوم: انزال غلظ شده به حجم های مساوی تقسیم شد و با حجم برابر شیر در دو دمای 5 و 25 درجه سانتی گراد و شیر به همراه 7 % گلیسرول در دمای 5 درجه سانتی گراد مخلوط و پس 15 و 60 دقیقه انکوباسیون مورد بررسی قرار گرفتند.
نتایج: اسمولاریتی کم و به خصوص در دمای پایین تحرک اسپرم را به شدت تحت تأثیر قرار داد (p<0.05). افزایش دمای انکوباسیون اثرات مخرب اسمولاریتی پایین بر زنده مانی اسپرم را کاهش داد (p<0.05). اما کاهش تحرک اسپرم ناشی از اسمولاریتی پایین با افزایش دمای محیط حتی تا ا ساعت انکوباسیون بهبود نیافت (p>0.05). شیر زنده مانی و تحرک اسپرم را در دمای پایین محافظت نمود (p<0.05) و افزودن گلیسرول به شیر اثر بهبود دهنده ای بر انکوباسیون اسپرم در دماهای بالای صفر درجه سانتی گراد نداشت (p>0.05).
نتیجه گیری: محلول های ایزو و هیپر اسموتیک تحرک و زنده مانی اسپرم را دماهای 25 و 39 درجه سانتی گراد حفاظت می کنند و شیر در دمای 5 درجه سانتی گراد از اسپرم محافظت می نماید.
هدف: اهداف مطالعه حاضر، یافتن تاثیر اسمولاریتی های مختلف محلول تیرود و شیر برای انکوباسیون اسپرم گاو در دماهای بالای صفر درجه سانتی گراد می باشد.
مواد و روش کار: جهت انجام آزمایشات از 5 رأس گاو نجدی خوزستان دو بار انزال تهیه گردید. نمونه ها سانتریفیوژ شده و بخش عمده مایع منوی خارج شد. آزمایش اول: انزال های غلیظ شده به 9 حجم مساوی تقسیم شدند و در محیط با سه اسمولاریتی مختلف (200، 300 و 400 میلی اسمول) در سه دما (5، 25 و 39 درجه سانتی گراد) به مدت 15 و 60 دقیقه مورد ارزیابی قرار گرفتند. آزمایش دوم: انزال غلظ شده به حجم های مساوی تقسیم شد و با حجم برابر شیر در دو دمای 5 و 25 درجه سانتی گراد و شیر به همراه 7 % گلیسرول در دمای 5 درجه سانتی گراد مخلوط و پس 15 و 60 دقیقه انکوباسیون مورد بررسی قرار گرفتند.
نتایج: اسمولاریتی کم و به خصوص در دمای پایین تحرک اسپرم را به شدت تحت تأثیر قرار داد (p<0.05). افزایش دمای انکوباسیون اثرات مخرب اسمولاریتی پایین بر زنده مانی اسپرم را کاهش داد (p<0.05). اما کاهش تحرک اسپرم ناشی از اسمولاریتی پایین با افزایش دمای محیط حتی تا ا ساعت انکوباسیون بهبود نیافت (p>0.05). شیر زنده مانی و تحرک اسپرم را در دمای پایین محافظت نمود (p<0.05) و افزودن گلیسرول به شیر اثر بهبود دهنده ای بر انکوباسیون اسپرم در دماهای بالای صفر درجه سانتی گراد نداشت (p>0.05).
نتیجه گیری: محلول های ایزو و هیپر اسموتیک تحرک و زنده مانی اسپرم را دماهای 25 و 39 درجه سانتی گراد حفاظت می کنند و شیر در دمای 5 درجه سانتی گراد از اسپرم محافظت می نماید.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Gao DO, Mazur P, Critser JK. Fundamental cryobiology of mammalian spermatozoa, In: Karow AM, Critser JK. (Eds.). Reproductive tissue banking: scientific priniciples, San Diego, USA: Academic press; 1997: 263-328. [DOI:10.1016/B978-012399770-8/50007-1]
2. Morris GJ, Faszer K, Green JE, Draper D, Grout BWW, Fonseca F. Rapidly cooled horse spermatozoa: Loss of viability is due to osmotic imbalance during thawing, not intracellular ice formation. Theriogenology 2007; 68:804-812. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2007.06.009]
3. Niasari-Naslaji A, Mosaferi S, Bahmani N, Abarghani A, Gharahdaghi AA, Gerami A. Effect of lactose extender with different levels of osmolality and pH on the viability of Bactrian camel (Camelus bactrianus) spermatozoa. IJVR 2006; 7: 14-22.
4. Andrade AFCd, Celeghini ECC, Yonezawa LA, Spers A, Arruda RPd. In vitro efficiency of three extenders for rabbit semen. Braz J Vet Res Anim Sci 2008; 45: 33-39.
5. Rigby SL, Brinsko SP, Cochran M, Blanchard TL, Love CC, Varner DD. Advances in cooled semen technologies: seminal plasma and semen extender. Anim Reprod Sci 2001;68: 171-180. [DOI:10.1016/S0378-4320(01)00154-3]
6. Agca Y, Gilmore J, Byers M, Woods EJ, Liu J, Critser JK. Osmotic characteristics of mouse spermatozoa in the presence of extenders and sugars. Biol Reprod 2002; 67:1493-1501. [DOI:10.1095/biolreprod.102.005579]
7. Liu ZS, Foote RH. Osmotic effects on volume and motility of bull sperm exposed to membrane permeable and nonpermeable agents. Cryobiology 1998; 37:207-218. [DOI:10.1006/cryo.1998.2116]
8. Waterhouse KE, Gjeldnes A, Tverdal A, De Angelis PM, Farstad W, Haard M, Kommisrud E. Alterations of sperm DNA integrity during cryo preservation procedure and in vitro incubation of bull semen. Anim Reprod Sci 2010; 117: 34-42. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2009.04.011]
9. Pommer AC, Rutllant J, Meyers SA. The role of osmotic resistance on equine spermatozoal function. Theriogenology 2002; 58: 1373-1384. [DOI:10.1016/S0093-691X(02)01039-7]
10. Chaveiro A, Liu J, Engel B, Critser JK, Woelders H. Significant variability among bulls in the sperm membrane permeability for water and glycerol: Possible implications for semen freezing protocols for individual males. Cryobiology 2006; 53:349-359. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2006.08.005]
11. Varisli O, Uguz C, Agca C, Agca Y. Motility and acrosomal integrity comparisons between electro-ejaculated and epididymal ram sperm after exposure to a range of anisosmotic solutions, cryoprotective agents and low temperatures. Anim Reprod Sci 2009; 110: 256-268. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2008.01.012]
12. Zhao YY, Buhr MM. Cryopreservation extenders affect calcium flux in bovine spermatozoa during a temperature challenge. J Androl 1995; 16: 278-285.
13. Vishwanath R, Shannon P. Storage of bovine semen in liquid and frozen state. Anim Reprod Sci 2000; 62: 23-53. [DOI:10.1016/S0378-4320(00)00153-6]
14. Cooper TG, Hellenkemper B. Method-Related Estimates of Sperm Vitality. J Androl 2009; 30: 214-218. [DOI:10.2164/jandrol.108.005819]
15. SAS. SAS/STAT User's Guide. Release 6.03 Edn., Statistical Analysis Systems Institute, Inc., Cary, NC.; 1996: 550-641.
16. Brackett BG, Oliphant G. Capacitation of rabbit spermatozoa in vitro. Biol Reprod 1975; 12:260-274. [DOI:10.1095/biolreprod12.2.260]
17. Webb GW, Arns MJ. Influence of modified Tyrode's media on motility of cold-stored stallion spermatozoa. J Equine Vet Sci 1995; 15: 441-444. [DOI:10.1016/S0737-0806(06)81836-8]
18. Parks JE. Hypothermia and mammalian gametes. In: Karow AM, Critser JK. (Eds.). Reproductive tissue banking: scientific principles, San Diego, USA: Academic press; 1997: 229-247. [DOI:10.1016/B978-012399770-8/50006-X]
19. Batellier F, Vidament M, Fauquant J, Duchamp G, Arnaud G, Yvon JM, Magistrini M. Advances in cooled semen technology. Anim Reprod Sci 2001; 68: 181-190. [DOI:10.1016/S0378-4320(01)00155-5]
20. Ball BA. Oxidative stress, osmotic stress and apoptosis: Impacts on sperm function and preservation in the horse. Anim Reprod Sci 2008; 107:257-267. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2008.04.014]
21. Zhang BR, Buhr M, Kroetsch T, Leibo SP. Glycine betaine improves survival of fresh bovine spermatozoa. Reproduction Fertility Dev 2001; 13: 187-192. [DOI:10.1071/RD01006]
22. Zhou JB, Yue KZ, Luo MJ, Chang ZL, Liang H, Wang ZY, Tan JH. Effect of extenders and temperatures on sperm viability and fertilizing capacity of Harbin white boar semen during long-term liquid storage. AJAS 2004; 17: 1501-1508. [DOI:10.5713/ajas.2004.1501]
23. Li G, Saenz J, Godke RA, Devireddy RV. Effect of glycerol and cholesterol-loaded cyclodextrin on freezing-induced water loss in bovine spermatozoa. Reproduction 2006; 131: 875-886. [DOI:10.1530/rep.1.00995]
24. Van Thuan N, Wakayama S, Kishigami S, Wakayama T. New preservation method for mouse spermatozoa without freezing. Biol Reprod 2005; 72: 444-450. [DOI:10.1095/biolreprod.104.034678]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
